MÉTODOS DE ASSEPSIA DE VIDEIRA VISANDO A
MICROPROPAGAÇÃO DE VIDEIRAS
Thayse Cardoso Calescura1
Marlova Benedetti2
RESUMO
A micropropagação é um método de propagação vegetativa, capaz de produzir
plantas saudáveis em menor espaço de tempo. Porém, um dos maiores problemas
encontrado no cultivo in vitro, se deve à suscetibilidade de contaminação do material
vegetativo. Por isso a importância do estudo e da aplicação de métodos efetivos
para assepsia dos explantes a serem inoculados. Para isso, o projeto, constituido
por dois experimentos, tem como objetivo utilizar explantes de brotações de estacas
de videiras do tipo Cabernet Sauvignon utilizando diferentes produtos e métodos
para assepsia. No experimento 1, já em andamento, utilizaram-se estacas lenhosas
de videira submetidas a nove tratamentos: controle (T1); água a 50°C por 30 minutos
antes do armazenamento (T2); 2g L-1 de Tiofanato Metílico (TM) antes do
armazenamento e 2g L-1 de TM antes da brotação (T3); 2g L-1 de TM antes do
armazenamento e 2g L-1 de TM após crescimento de parte aérea (T4); 2g L-1 de TM
antes do armazenamento e 2g L-1 de TM antes da brotação + 2g L-1 de TM após
crescimento de parte aérea (T5); 2g L-1 de TM antes do armazenamento (T6); 2g L-1
de TM antes da brotação (T7); 2g L-1 de TM após crescimento de parte aérea (T8);
2g L-1 de TM antes da brotação + 2g L-1 de TM após crescimento de parte aérea
(T9). Após a aplicação dos tratamentos, realizados durante o armazenamento, as
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Acadêmica do Curso Superior de Tecnologia em Horticultura do Instituto Federal de Educação, Ciência e
Tecnologia do Rio Grande do Sul - Campus Bento Gonçalves. E-mail: [email protected]
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Engenheira Agrônoma, Msc., do Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia do Rio Grande do Sul Campus Bento Gonçalves. E-mail: [email protected]
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estacas foram envoltas em papel umedecido e acondicionadas em sacos plásticos e
levadas ao armazenamento em câmara fria a uma temperatura de X°C.
Posteriormente, as estacas serão colocadas em tubetes plásticos com substrato
comercial e mantidas em casa de vegetação, quando receberão os tratamentos
correspondentes ao inicio da brotação e do crescimento de parte aérea. Na
avaliação realizada 40 dias após o plantio, será mensurado o nº de folhas,
comprimento de brotações, massa seca de brotações e incidência de doenças de
tronco. A partir das brotações do experimento 1 será conduzido o experimento 2
utilizando os entrenós, advindos do crescimento de parte aérea das estacas
utilizadas no Experimento 1, como explantes. Serão aplicados aos tratamentos mais
eficientes do experimento 1, os tratamentos: controle (T1); (álcool 70% + 2 ml L-1 de
Tween 20 por um período de 20 segundos + hipoclorito de sódio 2,5% + Tween 20 a
0,1% por um período de 20 minutos (T2); 2g L-1 de Cercobin® em aspersão + álcool
70% + 2 ml L-1 de Tween 20 por um período de 20 segundos (T3); hipoclorito de
sódio 2,5% + Tween 20 a 0,1% por um período de 20 minutos (T4); 2g L-1 de
Cercobin® em aspersão (T5); 10 ml de solução comercial antibiótica e antimicótica
(T6). Todos, os tratamentos, com exceção ao 6, serão submetidos a tríplice lavagem
no fluxo laminar com água destilada autoclavada. Em seguida, os explantes serão
inoculados em meio MS. As avaliações serão realizadas semanalmente, consistindo
de contagem das contaminações fúngicas e bacterianas e desenvolvimento do
explante determinadas por avaliação visual. Os dados serão analisados pelo Teste
de Tukey ao nível de 5% de probabilidade. Como o trabalho ainda está em
andamento, não temos resultados parciais ou finais.
Palavras-chaves: micropropagação, videira, fungo, assepsia.
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