A Genética Molecular
em Análises Clínicas
2001/2002
Prof.Doutor José Cabeda
Genética
A Genética Molecular no
Laboratório de Análises Clínicas



Hematologia
 Factores genéticos de Risco em doenças da coagulação
 Mutações associadas a doenças hereditárias do eritrócito
 Alterações genéticas associadas a patologias onco-hematológicas
Imunologia
 Imunogenética
 Genética das imunodeficiências primárias
 Factores genéticos de risco em algumas doenças autoimunoes
Microbiologia e virologia
 Ajuda ao diagnóstico com a identificação de genes virais ou
bacterianos em amostras clínicas
 Detecção de genes/mutações/polimorfismos no genoma bacteriano
ou viral associados a resistência a farmacos
 Estudos epidemiológicos por métodos genéticos no apoio ao
controlo da infecção nosocomial
Factores genéticos de Risco em doenças
da coagulação
Factor-V-Leiden
 Protrombina
 MTHFR
 PAI (4G/5G)
 HPA-1a/1b

Anomalias Genéticas
da Hemostase

Estados de Hipocoagulação




Hemofilia A (anomalias do gene do FVIII)
Hemofilia B (anomalias do gene do FIX)
Doença de von Wilebrand
(anomalias do gene do vWF)
Estados de Hipercoagulação




Deficiência de Antitrombina III
Deficiência de Proteína C
Deficiência de Proteína S
Resistência à Proteína C Activada (FV-Leiden)
Mutações associadas a doenças
hereditárias do eritrócito






Deficiência em G6PG
Deficiência em Piruvato Kinase
Anemia Sideroblástica
Hemocromatose
Esferocitoses
Talassémias
 Alfa
 beta
Mutações associadas a doenças
hereditárias do eritrócito
Deficiência em
Glicose-6-fosfato-desidrogenase
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Genética
ATP
ADP
NAD
NADH
ADP
ATP
ADP
ATP
NADH
NAD
Glicose
HK
Glicose-6-fosfato
GPI
Frutose-6-fosfato
PFK
frutose-1,6-difosfato
Aldolase
Gliceraldeido-3-fosfato
GA3PD
1,3-Difosfoglicerato
PGK
3-Fosfoglicerato
PGM
2-Fosfoglicerato
Enolase
G6P
Fosfoenolpiruvato
PK
Piruvato
6PG
LDH
Lactato
NADP
G6PD
NADPH
6-Fosfogluconato
NADP
6PGA
Ribose-5-fosfato
NADPH
Via Aeróbica
G6PD
NADP
GSSGR
GSH
GSHPX
H2O2
Catalase
NADPH
GSSG
H2O
Gene da G6PD (Xq)

Homodimero de monomeros c/ 58 Kd (531 aa)
18 Kb de DNA
 13 exons
 12 exons codificantes (12-236 bp cada)
 1 exon na zona 5’ não transcrita
 Elevado numero de polimorfismos.Ex:
 Pvu II (intron 5): Nt 1311 e 1116

Deficiência em G6PD

Essencialmente mutações
missense:
 Afectando a actividade
enzimática, mas de
forma incompleta (ind.
Assintomáticos)
 Inibindo
completamente a
actividade enzimática
(anemia severa)


variantes bioquimicas
diferentes mas uma só
variante genética:
 reagentes
 modificações pós-t.
variantes genéticas
diferentes mas uma só
variante bioquímica
 implicações estruturais
e funcionais iguais
Teoria de Lyon
P
P
M
P
M
P
M
P
M
M
P
M
Mutações associadas a doenças
hereditárias do eritrócito
Deficiência em
Piruvato-quinase
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Genética
Deficiência em
Piruvato-quinase
(PK)
ATP
ADP
NAD
NADH

A piruvato quinase
catalisa o penultimo
passo da via catabólica
da glicose
ADP
AT
P
ADP
ATP
NADH
NAD
Glicose
Hexoquinase
Glicose-6-fosfato
GPI
Frutose-6-fosfato
PFK
frutose-1,6-difosfato
Aldolase
Gliceraldeido-3-fosfato
GA3PD
1,3-Difosfoglicerato
PGK
3-Fosfoglicerato
PGM
2-Fosfoglicerato
Enolase
Fosfoenolpiruvato
Piruvato quinase
Piruvato
LDH
Lactato
Gene da Piruvato-quinase

2 genes da Piruvato-Quinase:
 PKM2 (isoenzimas M1 e M2)
 PK-1 ou PKLR (isoenzimas L e R)
 1q21
 expresso nos RBC e no figado
 1629bp;
• 12 exons
• 543aa;
• 68bp-5’non-coding;
• 734bp-3’noncoding
Gene da Piruvato-quinase


Polimorfismos da PKLR:
 Microssatélite no intron 11
 Polimorfismo CA na posição 1705
Mutações
 300 variantes bioquimicas
 59 mutações diferentes identificadas até 1996
 distribuidas ao longo de quase todo o gene
(exons 4-12 e região promotora)
 mutações tipo missense, nonsense e inserções
Genética das Hemoglobinopatias
HEMOGLOBINA NORMAL
HEMOGLOBINAS ANORMAIS
GENES QUIMERA
DREPANOCITOSE
TALASSÉMIAS
ALFA - TALASSÉMIAS
BETA-TALASSÉMIAS
Persistência Hereditária de Hb
Prof.Doutor José Cabeda
F 2001/2002

Genética
2
As diferentes hemoglobinas
 a2 a
Hemoglobinas
e
a2 a
Gg
Ag

Yb
Hb Gower 1
( 2e2)
Hb Gower 2
(a2e2)
Crom. 16
d
b
Crom. 11
Hb A2
(a2d2)
Hb F
(a2g2)
Hb A
(a2b2)
Hb Portland
( 2g2)
Vida embrionária Vida fetal
Vida adulta
Genética das Hemoglobinopatias


2001/2002
HEMOGLOBINA NORMAL
HEMOGLOBINAS ANORMAIS
 GENES QUIMERA
 DREPANOCITOSE
 TALASSÉMIAS
 ALFA - TALASSÉMIAS
 BETA-TALASSÉMIAS
 Persistência Hereditária de Hb F
Prof.Doutor José Cabeda
Genética
Genética das Hemoglobinopatias


2001/2002
HEMOGLOBINA NORMAL
HEMOGLOBINAS ANORMAIS
 GENES QUIMERA
 DREPANOCITOSE
 TALASSÉMIAS
 ALFA - TALASSÉMIAS
 BETA-TALASSÉMIAS
 DELTA-TALASSÉMIAS
 Persistência
Hereditária
de Hb F
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José Cabeda
Genética
Genética das Hemoglobinopatias


2001/2002
HEMOGLOBINA NORMAL
HEMOGLOBINAS ANORMAIS
 GENES QUIMERA
 DREPANOCITOSE
 TALASSÉMIAS
 ALFA - TALASSÉMIAS
 BETA-TALASSÉMIAS
 DELTA-TALASSÉMIAS
 Persistência
Hereditária
de Hb F
Prof.Doutor
José Cabeda
Genética
A genética das a-talassémias
a2 a
a2 a
a2 a
a2
aa/aa
Normal
a2
a2
a-/aheterozigótico
aa/aheterozigótico
a2 a
aa/- heterozigótico
a2
a-/- Doença da
Hb H
--/-Hydrops
fetalis
Genética das Hemoglobinopatias


2001/2002
HEMOGLOBINA NORMAL
HEMOGLOBINAS ANORMAIS
 GENES QUIMERA
 DREPANOCITOSE
 TALASSÉMIAS
 ALFA - TALASSÉMIAS
 BETA-TALASSÉMIAS
 DELTA-TALASSÉMIAS
 Persistência
Hereditária
de Hb F
Prof.Doutor
José Cabeda
Genética
Genética das Hemoglobinopatias


2001/2002
HEMOGLOBINA NORMAL
HEMOGLOBINAS ANORMAIS
 GENES QUIMERA
 DREPANOCITOSE
 TALASSÉMIAS
 ALFA - TALASSÉMIAS
 BETA-TALASSÉMIAS
 DELTA-TALASSÉMIAS
 Persistência
Hereditária
de Hb
Prof.Doutor
José Cabeda
Genética
Persistência Hereditária de Hb F
Delecções db
Formas
delecionais
Formas Primárias
Delecções Agdb
Delecções LCR
Talassémias eGgAgdb
Hb Kenya
Formas
não delecionais
Formas Secundárias
ß-talassémia
drepanocitose
Autossómicas não ß-globina
Locus ß-globina (promotor g-globina, e
Ligadas ao cromossoma X
Anemias Hemoliticas Esferociticas
2001/2002
Prof.Doutor José Cabeda
Genética
O GENE DA ANQUIRINA DO
RBC (ANK1)





8p
43 exons
2 formas por splicing alternativo
Mutações:
 14 variantes causadoras de esferocitose
 4 missense
 3 splicing
 7 delecções
5 polimorfismos informativos
a-espectrina
ß3
ß4 ß5
ß6
ß7 ß8
ß9 ß10
ß11 ß12 ß13 ß14 ß15 ß16 ß17
ß1
C
N
ß-espectrina
a-espectrina
ß1
C
ß1
C
N
N
ß1
ß1
C
N
N
C
ß1

Cromossoma 1
Existe habitualmente um excesso 3-4X
de a-espectrina relativamente à bespectrina, pelo que def. neste gene só
são habitualmente sentidas na forma
homozigótica
ß1 ß2
C
N
C

a-spt20 segmentos homólogos+
2 não homólogos
b-spt17 segmentos homólogos
ß1

Unidade de repetição c/ 106a.ª
estrutura alongada que
emparelha (cabeça-a-cabeça)
com a a-espectrina formando
dímeros, os quais associam
cabeça-a-cabeça formando
tetrâmeros
N

b-espectrina




17 segmentos homólogos
segmento N-terminal não homólogo que liga actina
segmento C-terminal não homólogo que possui um local
de fosforilação
Devido à relativa falta de b-espectrina, a sua deficiência é
habitualmente dominante
Gene da a-espectrina




8,001 bp com um ORF de 7,287 originando 2429 a.ª
53 exons
1q21
Polimorfismos
 dominio aII(africa):
 tipo I - 701R/809I/853T
 tipo II- 701H/809V/853R
 tipo III-701H/809I/853T
 tipo IV-701R/809V/853R
 Polimorfismos na zona não codificante:

Xba I; Pvu II; Msp I
Gene da a-espectrina

Mutações
 21 variantes causadoras de eliptocitose
 1 inserção
 1 mut. Splicing
 19 missense
 4 variantes causadoras de esferocitose
 2 splicing
 2 missense
 1 variante causadora de piropoiquilocitose
 splicing
Gene da b-espectrina




6,773bp com ORF de 6,411bp e 2,137a.a.
32 exons
14q
Polimorfismos:
 2 variantes não patogénicas do dominio ßIV:
 soectrin saint-Chamond
 Spectrin Tlemcen
 Hind iii; stu I, Pst I, PvuII, Taq I
Gene da b-espectrina

Mutações:
 6 variantes causadoras de esferocitose
 1 inserção
 5 missense
 21 variantes causadoras de heliptocitose
 8 missense
 6 splicing
 4 delecção
 3 inserção
 1 variante causadora de hidropsia fetal
 1 missense
Banda 3
Transportador aniónico
 proteína integral da membrana
 gene com 20 exons
 cDNA com 3637bp originando 911 a.a.

Banda 3

Mutações:
 37 variantes causadoras de esferocitose
 22 missense
 2 splicing
 1 regulador
 8 delecções
 4 inserções
Banda 4.1

A banda 4.1 faz a ponte entre a malha de espectrina e
várias proteínas integrais da membrana:
glicoforina A e C
 banda 3
 fosfatidilserina





numero de exons desconhecido
cDNA com 2867 bp originando 589 a.a.
Polimorfismos: não foram identificados
Mutações:

4 variantes causadoras de eliptocitose

2 missense; 1 inserção; 1 delecção
Banda 4.2




Função não completamente esclarecida
Estabiliza a ligação anquirina-banda 3 (?)
Essencial à estabilidade da membrana (mut. Originam HS)
Gene:
 13 exons
 2 isoformas por splicing alternativo
 cDNA com 2652bp (721 a.a) ou 2565bp (691a.a. )
 Mutações:
 6 variantes causadoras de esferocitose (5 missense;
1 splicing)
Hemocromatose Hereditária
20 anos à procura de um gene
2001/2002
Prof.Doutor José Cabeda
Genética
Hereditary Hemochromatosis


HLA-linked primary disorder of iron overload
One of the most common autosomic recessive disorders in
Caucasians. Possible frequency of:
homozygotes 1/200
 heterozygotes 1/10


Clinically Heterogeneous. Increased iron absorption leads to
accumulation of iron in tissues:
• Liver
• Pancreas
• Hypophysis
• Unknown Pathogenesis.



Heart
Joints
Skin
Search for Hemochromatosis gene



1976: HLA-A3 frequency in Patients
 physical linkage to HLA-A
 gene within 1-2cM of HLA-A
Families with recombinations in the HLA locus
 1986: Gene between HLA-A and HLA-B
 1993: Gene centromeric to HLA-F
Microsatelite markers
 1995: gene telomeric to HLA-F
 1995-1996: gene more than 1Mb telomeric to MHC
THE HEMOCHROMATOSIS
GENE: HLA-H ?
Linkage disequilibrium mapping with a
combination of maximum allelic association and
analysis of probable historic recombination events
 identification of an area with 250Kb
 identification of 15 genes in the area
 12 histone genes
 1 HLA gene (HLA-H)
 2 other genes

THE HEMOCHROMATOSIS
GENE: HLA-H ?
Linkage disequilibrium mapping with a
combination of maximum allelic association and
analysis of probable historic recombination events
 identification of an area with 250Kb
 identification of 15 genes in the area
 12 histone genes
 1 HLA gene (HLA-H)
 2 other genes

His63Asp
Cys282Tyr
THE HEMOCHROMATOSIS
GENE: HLA-H ?


C282Y HLA-H mutation:
 present in 85% of the patient’s chromossomes
 present in 3.2% of the control chromossomes
 predicted to abolish ligation to ß2-Microglobulin
H63D HLA-H mutation
 present in 8 of the 9 C282Y heterozygotes
 present in 17% of control chromossomes
 predicted to lye in the putative peptide binding pocket
Alterações genéticas associadas a
patologias onco-hematológicas
Translocações envolvendo os genes do TCR
e Ig
 Genes hibridos resultantes de translocções
 Delecções
 Inversões
 Mutações pontuais
 Alterações do padrão de metilação

Translocações envolvendo os
genes TCR e Ig
Translocações envolvendo os genes do TCR e das Ig
IgH
IgK
Ig
TCR-ad
TCR-ß
Translocação
Doença
Gene afectado
t(8;14)(q24;q32)
t(11;14)(q13;q32)
t(14;18)(q32;q21)
t(14;19)(q32;q13)
t(3;14)(p27;q32)
t(5;14)(q31;q32)
t(2;8)(p12;q24)
t(2;3)(p12;q27)
t(8;22)(q24;q11)
t(3;22)(q27;q11)
t(1;14)(p32;q11)
t(10;14)(q24;q11)
t(11;14)(p14;q11)
t(11;14)(p13;q11)
t(8;14)(q24;q11)
t(1;7)(p32;q35)
t(7;9)(p34;q32)
t(7;11)(p35;p13)
t(7;9)(q34;q34.3)
t(;7)(q34;q34)
t(7;19)(q34;p13)
Burkitt
LNH-manto
LNH-foliculares
LLC-B
C-Myc
bcl-1 (CCND1/PRAD1)
bcl-2 (apoptose)
bcl-3 (ciclina?)
LLA-pre B
Burkitt
LNH-célula grande
Burkitt
IL-3 (citocina)
LLA-T
LLA-T
LLA-T
LLA-T
LLA-T
LLA-T
LLA-T & LNH
LLA-T
LLA-T
bcl-6 (zinc-finger)
Tal-1
TCL-3 (Hox11)
Rhombotin 1
Rhombotin 2 (TCL-2)
C-Myc
Tal-2
dominio LIM
TAN-1
lck
LYL1
Translocação
Doença
Genes afectados
t(9;22)(q34;q11) LMC;LLA adulto/LMA
abl
bcra
t(15;17) (q22;q21) LMA-M3
PMLb RARad
t(11;17)(q35;q21) LMA-M3
PLZFc RARad
t(5;17)(q35;q21)
NPMe RARad
t(8;21)(q22;q22) LMA-M2
ETOc AML1
Inv(16)(p13;q22) LMA-M4Eo
MYHf CBFBg
t(6;9)(p23;q34) LMA,LMA-TdT+
DEK CAN
inv(3)(q21;q26) LMA-M1
EVI1c
t(3;3)(q21;q26)
t(1;9)(q23;q13) LLA-pre B
PBX1h E2A
t(12;21)(p13;q22) LLA-prec.B infantis
TEL
AML1
a
t(2;5)(p23;q35) LNH-anaplásico
ALK NPMe
t(4;11)(q21;q23) LLA-pre B
ALLc AF4i
t(1;11)(q32;q23) LAM
AF1Pe
t(6;11)(q27)(q23) LAM
AF6i
t(9;11)(p21;q23) LAM-M5,prec.B
AF9i
t(11;17)(q23;q21) LAM
AF19
t(11;19)(q23;p13) LAM,LLA-prec. B
ENLi
t(8;13)(p11;q12) sindrome mieloproliferativo ZNF198 FGFR-1
a) tirosina cinase
b) guanosina trifosfatase
c) zinc finger
d) receptor acido retinoico
e) fosfoproteina
f) gene da miosina
g) factor de transcrição
h) gene homeótico
i) transdução de sinal
Genes hibridos
resultantes de
translocções
Bcr/abl
Os genes BCR e ABL normais, e as
translocações que originam as
proteínas p190 e p210 do gene quimera
BCR-ABL.
A proteína p210 é característica da
CML, sendo a p190 a proteína BCRABL encontrada na maioria dos casos
de ALL
pml/rar
A localização cromossómica e estrutura
normal dos genes PML e RARa, e a
translocação t(15;17)(q22;21) que origina
o gene quimera PML-RARA.
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