UNIVERSIDADE FEDERAL DA BAHIA
FACULDADE DE FARMÁCIA
PROGRAMA DE PÓS-GRADUAÇÃO EM CIÊNCIA DE ALIMENTOS
LETICIA CARIBÉ BATISTA REIS
FORMULAÇÃO E CARACTERIZAÇÃO DE FILMES
BIODEGRADÁVEIS DE FÉCULA DE MANDIOCA
INCORPORADOS COM POLPA DE MANGA E EXTRATO DE
ERVA-MATE, E SEU EFEITO NA PRESERVAÇÃO DE
ALIMENTOS
Salvador -BA
2011
Sistema de Bibliotecas - UFBA
Reis, Letícia Caribé Batista.
Formulação e caracterização de filmes biodegradáveis de fécula de mandioca incorporados
com polpa de manga e extrato de erva-mate, e seu efeito na preservação de alimentos / Letícia
Caribé Batista Reis. - 2011.
151 f. : il.
Inclui anexos.
Orientadora: Profª. Drª. Janice Izabel Druzian.
Co-orientadora: Profª. Drª. Itaciara Larroza Nunes.
Dissertação (mestrado) - Universidade Federal da Bahia, Faculdade de Farmácia, Salvador,
2011.
1. Antioxidantes. 2. Filme biodegradável. 3. Embalagens. 4. Manga. 5. Erva-mate.
I. Druzian, Janice Izabel. II. Nunes, Itaciara Larroza. III. Universidade Federal da Bahia.
Faculdade de Farmácia. IV. Título.
CDD - 613.286
CDU - 678.048
Universidade Federal da Bahia
Faculdade de Farmácia
Programa de Pós-Graduação em Ciência de Alimentos
Mestrado em Ciência de Alimentos
FORMULAÇÃO E CARACTERIZAÇÃO DE FILMES
BIODEGRADÁVEIS DE FÉCULA DE MANDIOCA INCORPORADOS
COM POLPA DE MANGA E EXTRATO DE ERVA-MATE, E SEU
EFEITO NA PRESERVAÇÃO DE ALIMENTOS
LETÍCIA CARIBÉ BATISTA REIS
Salvador
2011
1
LETÍCIA CARIBÉ BATISTA REIS
FORMULAÇÃO E CARACTERIZAÇÃO DE FILMES
BIODEGRADÁVEIS DE FÉCULA DE MANDIOCA INCORPORADOS
COM POLPA DE MANGA E EXTRATO DE ERVA-MATE, E SEU
EFEITO NA PRESERVAÇÃO DE ALIMENTOS
Dissertação apresentada ao Programa
de Pós-graduação em Ciência de
Alimentos, Faculdade de Farmácia,
Universidade Federal da Bahia, como
requisito para a obtenção do grau de
Mestre em Ciência de Alimentos.
Orientadora: Professora Dra. Janice Izabel Druzian
Co-orientadora: Professora Dra. Itaciara Larroza Nunes
Salvador
2011
2
TERMO DE APROVAÇÃO
LETÍCIA CARIBÉ BATISTA REIS
FORMULAÇÃO E CARACTERIZAÇÃO DE FILMES BIODEGRADÁVEIS DE
FÉCULA DE MANDIOCA INCORPORADOS COM POLPA DE MANGA E
EXTRATO DE ERVA-MATE, E SEU EFEITO NA PRESERVAÇÃO DE
ALIMENTOS
DISSERTAÇÃO APROVADA COMO REQUISITO PARCIAL PARA OBTENÇÃO
DO GRAU DE MESTRE EM CIÊNCIA DE ALIMENTOS, UNIVERSIDADE
FEDERAL DA BAHIA, PELA SEGUINTE BANCA EXAMINADORA:
Prof. Dr. Alessandro de Oliveira Rios _________________________________
Doutor em Ciência dos Alimentos (UNICAMP)
Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS)
Profa. Dra. Lígia Regina Radomille de Santana____________________________
Doutora em Engenharia Agrícola (UNICAMP)
Universidade do Estado da Bahia (UNEB)
Profa. Dra. Janice Izabel Druzian – Orientadora __________________________
Doutora em Ciências de Alimentos (UNICAMP)
Universidade Federal da Bahia (UFBA)
Salvador, 31 de março de 2011.
3
“Há homens que lutam um dia e são bons.
Há outros que lutam um ano e são melhores.
Há os que lutam muitos anos e são muito bons.
Porém há os que lutam toda vida. Esses sim são
os imprescindíveis.”
Bertolt Brecht
4
AGRADECIMENTOS
A Deus, por me dar oportunidade e força para lutar pelos meus ideais.
Aos meus pais, irmão, e a toda minha família que, com muito carinho e apoio, não
mediram esforços para que eu chegasse até esta etapa de minha vida.
Às professoras Janice e Itaciara pelo apoio, incentivo e paciência durante a
realização deste trabalho.
Aos amigos mais do que especiais Carolina Oliveira, Danielle Ribeiro, Katya
Karine, Luciane Sousa, Larissa Costa, Jaff Ribeiro, Marcio Inomata, Natana Sá e
Jânia Betânia, pela amizade e apoio prestado. Muito obrigada!!! Vocês foram
motivos de grande felicidade e que compartilharam da magia do companheirismo,
nas quais sempre me recordarei com carinho.
Aos estagiários, Anderson, Lívia, Aline e Emily, pela grande ajuda nas análises,
vocês foram fundamentais nesse trabalho.
A toda a equipe LAPESCA, que de forma direta ou indireta contribuiu para o
desenvolvimento do trabalho.
Aos colegas de mestrado pelo compartilhamento de dificuldades e alegrias
durante toda essa jornada.
Ao CNPq pela concessão da bolsa de mestrado.
A todas as pessoas que direta ou indiretamente contribuíram para a realização
desse trabalho.
Obrigada!!!
5
SUMÁRIO
Introdução ............................................................................................................. 15 Referências .......................................................................................................... 18 Objetivos Gerais.................................................................................................... 20 Objetivos Específicos ............................................................................................ 20 CAPÍTULO I .......................................................................................................... 21 Revisão Bibliográfica............................................................................................. 21 1 Embalagens ....................................................................................................... 22 2 Composição de Embalagens.............................................................................. 23 2.1 Amido.......................................................................................................... 26
2.2 Aditivos à Matriz Polimérica........................................................................ 29
2.2.1 Plastificantes ........................................................................................ 29
2.2.1.1 Glicerol como Plastificante ........................................................... 30
2.2.2 Agentes Ativos ..................................................................................... 31
3 Oxidação Lipídica............................................................................................... 33 3.1 Azeite de Dendê .....................................................................................................37
4 Antioxidantes...................................................................................................... 39 4.1 Carotenóides .............................................................................................. 41
4.2 Compostos Fenólicos ................................................................................. 43
5 Fontes Naturais de Compostos Ativos ............................................................... 46 5.1 Manga......................................................................................................... 46
5.2 Erva-Mate ................................................................................................... 48
6 Caracterização de Filmes Flexíveis.................................................................... 50 6.1 Espessura................................................................................................... 51
6.2 Propriedades de Barreira............................................................................ 53
6
6.3 Propriedades Mecânicas ............................................................................ 53
Referências .......................................................................................................... 55 CAPÍTULO II ......................................................................................................... 68 Incorporação de Polpa de Manga e Extrato de Erva-mate como Aditivos
Antioxidantes em Filmes Biodegradáveis a Base de Fécula de Mandioca e sua
Influência na Estabilidade do Azeite de Dendê Embalado. ................................... 68
1 Introdução .......................................................................................................... 71 2 Materiais e Métodos ......................................................................................... 733 2.1 Materiais ..................................................................................................... 73
2.2 Preparação dos Biofilmes ........................................................................... 73
2.3 Moldagem dos Biofilmes............................................................................. 74
2.4 Monitoramento da Estabilidade do Produto Embalado nos Biofilmes e nos
Controles Durante Armazenamento ................................................................. 74
2.4.1 Índice de Peróxidos (IP) .................................................................. 74
2.4.2 Teor de Hexanal (HE) ..................................................................... 75
2.4.3 Teor de Dienos Conjugados (DC) .................................................... 75
2.4.4 Teor de Carotenóides Totais (CT).................................................... 76
2.5 Monitoramento da Estabilidade dos Aditivos Incorporados nas Diferentes
Formulações de Biofilmes Durante Armazenamento do Produto Embalado .... 77
2.5.1 Teor de Carotenóides Totais ............................................................ 77
2.5.2 Teor de Polifenóis Totais (PT).......................................................... 77
2.5.3 Teor de Flavonóides Totais (FT) ...................................................... 78
2.6 Análise Estatística ..................................................................................... 78
3 Resultados e Discussão ..................................................................................... 80 3.1 Monitoramento da Estabilidade dos Aditivos Incorporados nas Diferentes
Formulações dos Filmes Durante Armazenamento do Produto Embalado ...... 80
3.2 Monitoramento da Estabilidade do Produto Embalado nos Biofilmes e nos
Controles Durante Armazenamento ................................................................. 89
7
3.3 Correlações Entre os Parâmetros das Formulações de Biofilmes e do
Produto Embalado Durante o Armazenamento ................................................ 95
4 Conclusões......................................................................................................... 98 Referências ........................................................................................................ 989 CAPÍTULO III ...................................................................................................... 103 Caracterização de Filmes Biodegradáveis a Base de Fécula de Mandioca e
Incorporados com Polpa de Manga e Extrato de Erva-Mate. .............................. 103 1 Introdução ........................................................................................................ 106 2 Material e Métodos........................................................................................... 108 2.1 Material ......................................................................................................108
2.2 Preparação dos Biofilmes ..........................................................................108
2.3 Caracterização Mecânica dos Biofilmes ....................................................108
2.3.1 Espessura ...........................................................................................109
2.3.2 Propriedades Mecânicas.....................................................................109
2.3.3 Permeabilidade ao Vapor de Água......................................................109
2.3.4 Teor de Sólidos Totais ........................................................................110
2.4 Análise Estatística .....................................................................................110
3 Resultados e Discussão ................................................................................... 111 4 Conclusões....................................................................................................... 120 Referências ........................................................................................................ 121 Conclusões Gerais .............................................................................................. 125 ANEXO I.............................................................................................................. 127 ANEXO II............................................................................................................. 136 ANEXO III............................................................................................................ 139 ANEXO IV ........................................................................................................... 143 ANEXO V ............................................................................................................ 145 8
LISTA DE FIGURAS
Capítulo I
Figura 1: Composição percentual em massa dos materiais que compõem os
resíduos sólidos urbanos........................................................................................23
Figura 2. Estrutura da amilose e respectiva conformação helicoidal..................26
Figura 3. Estrutura da amilopectina e seu formato de ramificações.....................26
Figura 4: Esquema do processo de autoxidação de óleos e gorduras...............35
Figura 5: Estrutura química dos flavonóides........................................................44
Figura
6:
Estrutura
química
do
ácido
hidroxibenzóico
(A),
do
ácido
hidroxicinâmico (B) e resveratrol (C)....................................................................44
Capítulo II
Figura 1: Reduções nos teores de Carotenóides Totais (CT)(µg/g), Polifenóis
Totais (PT)(mg/g) e de Flavonóides Totais (FT)(mg/g) dos biofilmes, após 45 dias
de estocagem.......................................................................................................81
Figura 2: Comportamento das reduções nos teores de Polifenóis Totais
(PT)(mg/g), Flavonóides Totais (FT)(mg/g) e Carotenóides Totais (CT)(µg/g) dos
biofilmes durante os 45 dias de armazenamento.................................................85
Figura 3: Superfícies de resposta da redução de Polifenóis Totais (PT)(mg/g),
Flavonóides Totais (FT)(mg/g) e Carotenóides Totais (CT)(µg/g) dos biofilmes
após 45 dias de estocagem do azeite de dendê..................................................88
9
Figura 4: Comportamento do aumento do Índice de Peróxido (IP)(meq/kg) do
azeite de dendê embalados nos biofilmes (F1 a F11) e nos controles, C1 (PEBD),
C2 (produto sem embalagem) e C3 (filmes sem aditivos) após 90 dias de
armazenamento......................................................................................................91
Figura 5: Superfície de resposta do aumento do Índice de Peróxido (IP)(meq/kg)
após 45 dias de armazenamento............................................ ..............................93
Figura 6: Teor de Carotenóides Totais (CT)(µg/g), Índice de Peróxido
(IP)(meq/kg), Hexanal (HE)( µg/mL) e Dienos Conjugados (DC)(mg/100g) do
azeite de dendê embalado nas formulações de biofilmes e nos controles, após 45
dias de armazenamento.........................................................................................94
Figura 7: Correlações lineares entre percentuais dos parâmetros dos biofilmes:
Polifenóis Totais (PT)(mg/g), Flavonóides Totais (FT)(mg/g) e Carotenóides Totais
(CT)(µg/g) vs os dos produtos embalados nas diferentes formulações, após 45
dias de armazenamento.........................................................................................96
Figura 8: Interação dos percentuais de redução dos parâmetros analisados nas
formulações dos biofilmes: Polifenóis Totais (PT), Flavonóides Totais (FT) e
Carotenóides Totais (CT) com a porcentagem de aumento no teor do Indice de
Peróxido (IP) do produto embalado nas diferentes formulações, após 45 dias de
armazenamento.....................................................................................................97
Capítulo III
Figura 1: Comportamento da deformação (%) e de resistência à tração (MPa) do
controle (C) e das formulações para 7 medidas..................................................116
10
LISTA DE TABELAS
Capítulo I
Tabela 1: Tempo de degradação de materiais quando descartados....................23
Tabela 2: Temperaturas de gelatinização do amido de diferentes fontes.............27
Tabela 3: Componentes minoritários de azeite de dendê.....................................38
Tabela 4: Atividade de pró-vitamínica A de azeite de dendê................................38
Tabela 5: Concentração de carotenóides totais (µg/g) em diferentes estádios de
maturação de manga da variedade “Keitt” e “Tommy Atkins”...............................47
Capítulo II
Tabela 1. Valores codificados e reais das variáveis independentes (teores de
antioxidantes) do delineamento estatístico das diferentes formulações de biofilmes
de fécula de mandioca..........................................................................................79
Tabela 2: Concentrações de Carotenóides Totais (CT)(µg/g), Polifenóis Totais
(PT)(mg/g) e Flavonóides Totais (FT)(mg/g) na Polpa de Manga e no Extrato
aquoso de Erva-Mate.............................................................................................81
Tabela 3: Redução nos dos teores de Polifenóis Totais (PT) em mg/g (em
percentual), de Flavonóides Totais (FT) em mg/g (em percentual) e de
Carotenóides Totais (CT) em µg/g (em percentual)
das 11 formulações de
biofilmes durante armazenamento do produto embalado nos intervalos 0 - 7, 0 15, 0 - 30 e 0 - 45 dias..........................................................................................85
11
Tabela 4: Equações do modelo e R2 (coeficiente de determinação) para a redução
de Polifenóis totais (PT)(mg/g), Flavonóides Totais (FT)(mg/g) e Carotenóides
totais (CT)(µg/g) dos filmes e do Índice de peróxido (IP, meq / kg) do produto
embalado após 45 dias de armazenamento.........................................................86
Tabela 5: Aumentos nos teores de Índice de Peróxido (IP) em meq/kg (em
percentual), Hexanal (HE) em mg/mL (em percentual) e de Dienos Conjugados
(DC) em mg/100g (em percentual); e redução de Carotenóides Totais (CT) em
µg/g (em percentual), do azeite de dendê embalado nas diferentes formulações
de biofilmes durante armazenamento nos intervalos 0 - 7, 0 - 15, 0 - 30 e 0 - 45
dias........................................................................................................................90
Capítulo III
Tabela 1. Valores codificados e reais do delineamento estatístico das variáveis
independentes (teores de aditivos) incorporados às formulações de biofilmes de
fécula de mandioca, (4 % m/m) e Glicerol, (1 % m/m).........................................111
Tabela 2: Médias (± desvio padrão) das análises de caracterização das
formulações de biofilmes e controle (C). E (espessura - mm); ST (sólidos totais %);
Umidade
(%)
e
TPVA,
(permeabilidade
ao
vapor
de
água
-
gH2O.µm/m2.h.mmHg)............................................................................................113
Tabela 3: Teores de Umidade (%) e Sólidos Totais (%) da polpa industrializada
de manga e do extrato de erva-mate incorporados aos biofilmes.......................114
Tabela 4: Parâmetros mecânicos das formulações dos biofilmes e do controle:
resistência à tração e porcentagem de alongamento..........................................119
12
Resumo
O grande interesse no desenvolvimento de filmes biodegradáveis ocorre devido à
sua contribuição para a preservação do meio ambiente e por serem
desenvolvidos a partir de fontes renováveis. Dentre os biopolímeros, o amido de
mandioca tem sido considerado como um dos biomateriais mais promissores para
este fim, por ser de baixo custo e disponível em todo o mundo. O objetivo do
trabalho foi avaliar o uso de polpa de manga e extrato de erva-mate como fontes
de compostos ativos quando incorporados como aditivos em embalagens
biodegradáveis de fécula de mandioca e plastificante glicerol, utilizando um
delineamento estatístico de superfície de resposta 22 x estrela, totalizando 11
formulações. As alterações das propriedades físico-químicas e mecânicas dos
biofilmes devido à incorporação dos aditivos também foram avaliadas. O
armazenamento do azeite de dendê embalado nos biofilmes contendo os aditivos
(0-20% m/m de polpa de manga e/ou 0-30% m/m extrato de erva-mate) foi
monitorado por 45 dias sob condições de oxidação acelerada (63%UR/30ºC). Os
polifenóis totais (PT), flavonóides totais (FT) e carotenóides totais (CT) dos filmes
e o teor de carotenóides totais (CT), índice de peróxido (IP), dienos conjugados
(DC) e conteúdo de hexanal (HE) do produto embalado (azeite de dendê) foram
monitorados periodicamente, durante o armazenamento. Azeite de dendê
embalado em polietileno de baixa densidade (C1), sem embalagem (C2) e em
biofilmes sem os aditivos antioxidantes (C3), foram utilizados como controles. Os
sólidos totais, espessura, umidade, permeabilidade ao vapor de água, elongação
e resistência a tração das 11 formulações também foram avaliados. A partir do
estudo, pode-se constatar que o desenvolvimento de filmes flexíveis com os
aditivos naturais na matriz de amido de mandioca apresentou uma ótima atividade
antioxidante, sendo mais eficaz o uso do extrato de erva-mate, uma vez que o
ponto de aumento mínimo do índice de peróxido no gráfico da superfície de
resposta corresponde à máxima concentração deste aditivo incorporado à matriz.
A incorporação dos aditivos também provocou mudanças nas características
físico-químicas e mecânicas dos filmes, com variações na espessura (de -1,77 a
+10,62%), nos sólidos totais (de -0,33 a -4,12%), na umidade (de +2,59 a
+32,68%), na permeabilidade ao vapor de água (de -33,26 até +11,05%), na
elongação (de -1,31 até -21,53%) e na resistência à tração (de -25,09 até 74,72%). Portanto, a incorporação de polpa de manga e de extrato de erva-mate
nos biofilmes de fécula de mandioca conferiu um pronunciado efeito protetor
contra a oxidação lipídica, alterando as propriedades físico-químicas e mecânicas,
com ênfase nas reduções da permeabilidade ao vapor de água e da resistência à
tração dos biofilmes.
Palavras – chaves: Antioxidante, filmes comestíveis, filme biodegradável, manga
e erva-mate.
13
Abstract
The great interest in developing biodegradable films is motivated by its
contribution to environmental preservation, apart from being possible to produce
them from renewable sources. Among the biopolymers, cassava starch have been
considered as one of the most promising material for this purpose because it is
inexpensive and available worldwide. The objective of this study was to evaluate
the incorporation the mango pulp and yerba mate aqueous extract as a source of
antioxidants compounds and plasticizer glycerol in cassava starch based edibles
films using a response surface methodology design experiment. The storage of
palm oil packed in films containing additives rich in active compounds (0-20% m/m
of mango pulp and/or 0-30% m/m extract of yerba mate) was monitored for 45
days under accelerated oxidation (63% UR/30 º C). The total polyphenols (TP),
total flavonoids (TF) and total carotenoids (TC) of films and total carotenoids (TC),
peroxide index (PI), conjugated diene (CD) and hexanal (HE) content of the
packaged product (palm oil) were periodically monitored. The same analysis also
evaluated palm oil packed in low density polyethylene films (C1), palm oil with no
package (C2), and palm oil packed in bio-based films without antioxidants
additives (C3), all used as controls. The total solids, thickness, moisture, water
vapor permeability, elongation and tensile strength of 11 formulations were also
evaluated. From the study, it can be concluded that the flexible films developed
with naturals additives in cassava starch matrix has a great antioxidant activity.
However, those results were more expressive with the use of yerba mate extract,
because the response surface graph indicates that the point of minimum increase
of peroxide index corresponds to the maximum concentration of yerba mate. The
incorporation of additives also caused changes in the physico-chemical and
mechanical properties of films with variations in thickness (from -1.77 to +10.62%)
in total solids (from -0.33 to -4.12%), moisture (from +2.59 to +32.68%),
permeability to water vapor (from -33.26 to +11.05%), elongation (from -1.31 to 21, 53%) and tensile strength (from -25.09 to -74.72%). Therefore, the
incorporation of the mango pulp and yerba mate extract in biofilms of cassava
starch resulted a pronounced protective effect against lipid oxidation, altering the
physico-chemical and mechanical properties, with enphasis in permeability to
water vapor and tensile strength reductions of biofilms.
Key-words: Antioxidant, bio-based film, edibles films, mango, yerba mate.
14
Introdução
Embalagens são utilizadas para prolongar a vida de prateleira de alimentos
protegendo-os mecanicamente e evitando contaminações biológicas e químicas.
Entretanto, na tentativa de satisfazer consumidores cada vez mais exigentes,
surgem as embalagens ativas, ou inteligentes, que além de proteger, interagem
com o produto, proporcionando benefícios extras em relação às embalagens
convencionais (ROONEY, 1995; BRODY, 2001; BRAGA & PERES, 2010).
As embalagens ativas são, em geral, produzidas com material polimérico
convencional derivado de petróleo, gerando problemas ambientais quando
descartados. Como alternativa existe o crescente interesse no uso de
embalagens biodegradáveis obtidas a partir de fontes renováveis como, por
exemplo, os filmes produzidos a partir do amido.
Filmes flexíveis obtidos a partir de amido de mandioca tem sido
desenvolvidos com sucesso (VEIGA-SANTOS et al., 2007; HENRIQUE et. al.,
2008; GRISI et al., 2008; SILVA, 2009; SOUZA et al., 2011), podendo ser
investigados como matriz para a incorporação de novos compostos antioxidantes
e antimicrobianos naturais, mantendo sua biodegradabilidade. A utilização de
matrizes oriundas de matérias-primas nacionais como a mandioca, é uma forma
de valorizar os produtos da agroindústria brasileira. Segundo dados da ABAM
(2009), entre 2007 e 2008 a produção brasileira de amido de mandioca aumentou
de 545,01 toneladas para 565,11 mil toneladas.
Filmes biodegradáveis à base de amido apresentam baixa permeabilidade
a gases (CO2 e O2), entretanto, sua limitação está nas propriedades mecânicas
inferiores aos dos filmes convencionais e à alta permeabilidade ao vapor de água.
Uma alternativa para viabilizar o uso deste biopolímero em embalagens consiste
na incorporação de outros materiais que melhorem suas propriedades (YU et al.,
2006).
O uso do plastificante glicerol em filmes de amido possibilita uma maior
porcentagem de alongamento aos biofilmes (VEIGA-SANTOS et al., 2005 a,b),
melhorando a viabilidade do material, além de representar um grande impacto
científico devido à capacidade atual de produção global e do Brasil de glicerina
vegetal.
15
Uma das tecnologias mais promissoras para preservar alimentos sensíveis
à oxidação é o emprego das embalagens ativas antioxidantes (HAYASHI, 2006;
GRISI et al., 2008; SILVA, 2009; SOUZA et al., 2011). Esse sistema consiste na
incorporação de substâncias antioxidantes em filmes plásticos, papéis ou sachês,
de onde serão liberadas para proteger os alimentos da degradação oxidativa,
inibindo as reações de oxidação ao interagirem com radicais livres e peróxidos. A
oxidação constitui um dos mecanismos mais freqüentes de deterioração e
redução da vida útil dos alimentos, já que além de alterar o gosto (rancificação) e
a qualidade nutritiva (perda de vitaminas e ácidos graxos essenciais), geram
compostos reativos e tóxicos que representam um perigo para os consumidores
(CAETANO et al., 2009)
Os biofilmes ativos normalmente utilizam como aditivos antioxidantes,
compostos sintéticos como BHA (butil-hidroxianisol) e BHT (butil-hidroxitolueno),
porém seu uso tem sido questionado, uma vez que diversos estudos alegam que
estes
antioxidantes
podem
promover
efeitos
tóxicos
e
carcinogênicos
(BERNARDO-GIL et al., 2002). Devido à preocupação com a segurança alimentar
da população, tem crescido a busca por produtos naturais que possam servir
como fontes de antioxidantes para serem utilizados em substituição aos
antioxidantes sintéticos (GRISI et al., 2008).
Portanto, compostos antioxidantes naturais com ação comprovada têm sido
isolados de diferentes partes de plantas tais como sementes, frutas, folhas e
raízes. Esses compostos incluem flavonóides, ácidos fenólicos, terpenos,
tocoferóis mixados, fosfolipídios, ácidos orgânicos polifuncionais, carotenóides e
ácido ascórbico (KAUR & KAPOOR, 2001; RIBEIRO et al., 2001; SILVA et al.,
2010).
Dentre as frutas a manga constitui uma importante fonte de fitoquímicos
antioxidantes, destacando-se os polifenóis e os carotenóides (MELO et al., 2008).
O Brasil é o sétimo produtor mundial de manga, tendo como maior região
produtora o Nordeste, com destaque para o polo Petrolina-Juazeiro, cuja
produção, de 1990 até 2008, sempre representou pelo menos 47% da produção
nacional da fruta, direcionada majoritariamente para o consumo interno, já que em
média apenas 12% da produção é exportada (FAOSTAT, 2009; IBGE, 2010;
FAVERO, 2008).
16
Dentre as plantas a erva-mate apresenta em sua composição química sais
minerais,
vitaminas,
aminoácidos,
saponinas
triterpênicas,
alcalóides
(metilxantinas como cafeína, teobromina e teofilina), açúcares e compostos
fenólicos como flavonóides (quercetina e rutina), ácido clorogênico e taninos
(NEWALL et al., 1996; FILIP et al., 2000), sendo que sua propriedade antioxidante
se deve, principalmente, a seus compostos fenólicos. O Brasil está entre os
principais países produtores mundiais de erva-mate do mundo, com produção de
434.483 toneladas em 2008 (IBGE, 2010). A região Sul é a maior produtora,
sendo explorada por pequenos produtores que se reúnem em cooperativas para
processá-la ou comercializá-la (HECK & MEJIA, 2007).
A utilização desses aditivos na elaboração de um filme que além de
biodegradável pode também apresentar ação antioxidante, pode agregar valor a
matérias-primas produzidas em alta escala no Brasil.
Outra vantagem adicional é o fato de que todos os componentes do novo
biomaterial proposto são considerados GRASS (reconhecidos como seguros para
a alimentação) e, portanto não oferecem riscos ao consumidor de alimentos ou
fármacos, caso sejam acidentalmente ingeridos.
Este trabalho teve por objetivo desenvolver filmes biodegradáveis
formulados com fécula de mandioca, glicerol, polpa de manga e extrato de ervamate, e avaliar sua ação antioxidante sobre um produto embalado, assim como,
caracterizá-los quanto à permeabilidade ao vapor de água e propriedades
mecânicas.
17
Referências
ABAM – Associação Brasileira dos Produtores de Amido de Mandioca. Produção
Brasileira de Fécula de Mandioca. Disponível em <www.abam.com.br>. Acesso
em 23/03/2009.
BERNARDO-GIL, M. G.; RIBEIRO, M. A.; ESQUÍVEL, M. M. Produção de
extractos para a indústria alimentar: uso de fluidos supercríticos. Boletim de
Biotecnologia, v. 73, n. 3, p. 14-21, 2002.
BRAGA, R. L; PERES, L. Novas tendências em embalagens para alimentos:
revisão. B.CEPPA, Curitiba, v. 28, n. 1, p. 69-84, 2010.
BRODY, A. L. What´s active in Active Packaging. Food Technology, v. 55, n. 9,
2001.
CAETANO, A. C. S.; MELO, E. A.; LIMA, V. L. A. G.; MACIEL, M. I. S.; ARAÚJO,
C. R. Extração de antioxidantes de residues agroindustriais de acerola. Brazilian
Journal of Food Technology, v. 12, n. 2, p. 155-160, 2009.
FAOSTAT, 2009. Food and Agriculture Organization of the United nations
statistics. Disponível em: <http://faostat.fao.org>. Acessado em: 20/01/2008.
FAVERO, L. A. A Cultura da Manga no São Francisco: Posicionamento,
Limites, Oportunidades e Ações Estratégicas. Banco do Nordeste do Brasil.
Fortaleza – CE, p. 232, 2008.
FILIP, R.; LOLITO, S. B.; FERRARO, G.; FRAGA, C. G. Antioxidant activity of Ilex
paraguariensis and related species. Nutrition Research, v. 20, n. 10, p. 14371446, 2000.
FOOD AGRICULTURAL ORGANIZATION – FAO (2010). Statistical – database.
Disponível em: <http://faostat.fao.org>. Acesso em: 29/01/2011.
GRISI, C. V. B.; SILVA, L. T.; CABRAL-ALBUQUERQUE, E. C.; DRUZIAN, J. I.
Evaluation of the viability of incorporating natural antioxidants in bio-based
packagings. Nova Science Publishers - Food Chemistry Research
Developments, v. 1, p. 1-11, 2008.
HAYASHI, A.; VEIGA-SANTOS, P.; DITCHFIELD, C.; TADINI, C. C. Investigation
of Antioxidant Activity of Cassava Starch Biobased Materials. VI International
Symposium on Future of Food Engineering, Warsaw, Poland, in CD. 2006.
HECK, I.; MEJIA, E. G. Yerba Mate Tea (Ilex paraguariensis): A
Comprehensive Review on Chemistry, Health Implications and Technological
Considerations. Journal of Food Science, v. 9, n. 72, p. 51-138, 2007.
HENRIQUE, C. M.; CEREDA, M. P.; SARMENTO, S. B. S. Características físicas
de filmes biodegradáveis produzidos a partir de amidos modificados de mandioca.
Ciência e Tecnologia de Alimentos, Campinas, v. 28, n. 1, p. 66-77, 2008.
18
IBGE, 2010. Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística. Disponível em:
<htpp://www.ibge.com.br>. Acessado em: 20/01/2011.
KAUR, C.; KAPOOR, H. C. Antioxidants in fruits and vegetables - the
millennium´s health. International. Journal of Food Science and Technology, v.
36, n. 7, p. 703-725, 2001.
MELO, E. A.; MACIEL, M. I. S.; LIMA, V. L. A. G.; ARAÚJO, C. R. Teor de
fenólicos totais e capacidade atioxidante de polpas congeladas de frutas.
Brazilian Journal of Food and Nutrition, v. 19, n. 1, p. 67-72, 2008.
NEWALL, C. A.; ANDERSON, L. A.; PHILLIPSON, J. D. Herbal medicines.
London: The Pharmaceutical Press, p. 296, 1996.
RIBEIRO, M. A.; BERNARDO-GIL, M. G.; ESQUÍVEL, M. M. Melissa officinalis, L.:
study of antioxidant activity in supercritical residues. Journal of Supercritical
Fluids, v. 21, n. 1, p. 51-60, 2001.
ROONEY, M. L. Overview of active food packaging. Active Food Packaging.
London: Blackie Academic & Professional. London, UK, p. 1-37, 1995.
SILVA, L. T. Desenvolvimento e avaliação de embalagens biodegradáveis com
ação antioxidante contendo café e cacau. 2009. 148p. Dissertação (Mestrado em
Ciência de Alimento) – Faculdade de Farmácia, UFBA, Salvador – BA.
SILVA, C. l. M; COSTA, S. R; SANTANA, S. A. KOBLITZ, B. G. M. Compostos
fenólicos, carotenóides e atividade antioxidante em produtos vegetais. Semina:
Ciências Agrárias, Londrina, v. 31, n. 3, p. 669-682, 2010.
SOUZA, C. O; SILVA, L. T.; SILVA, J. R.; LOPEZ, J. A.; VEIGA-SANTOS, P.;
DRUZIAN, J. I. Mango and Acerola Pulps as Antioxidant Additives in Cassava
Starch Bio-based Film. Journal Agriculture Food Chemistry, v. 1, n. 1, 2011.
VEIGA-SANTOS, P.; OLIVEIRA, L. M.; CEREDA, M. P.; ALVES, A. J.;
SCAMPARINI, A. R. P. Mechanical properties, hydrophilicity and water activity of
starch-gum films: Effect of additives and deacetylated xanthan gum. Food
Hydrocolloids, v. 19, p. 341-349, 2005a.
VEIGA-SANTOS, P.; SUZUKI, C. K.; CEREDA, M. P.; SCAMPARINI, A. R. P.
Microstructure and color of starch-gum films: Effect of additives and deacetylated
xanthan gum. Part 2. Food Hydrocolloids, v. 19, n. 6, p. 1064-1073, 2005b.
VEIGA-SANTOS, P.; OLIVEIRA, L. M.; CEREDA, M. P.; SCAMPARINI, A. R. P.
Sucrose and inverted sugar as plasticizer: Effect on cassava starch–gelatin film
mechanical properties, hydrophilicity and water activity. Food Chemistry, v. 103,
p. 255-262, 2007.
YU, L.; DEAN, K.; LI, L.; Polymer blends and composites from renewable
resources. Program Polymers Science, v. 31; p. 576-602, 2006.
19
Objetivos gerais
Desenvolver e caracterizar filmes ativos antioxidantes pela incorporação de
extrato de erva-mate e de polpa de manga à matriz de amido de mandioca
plastificada com glicerol, além de avaliar a ação do filme ativo através do
monitoramento
da
estabilidade
de
um
produto
embalado
durante
o
armazenamento.
Objetivos específicos
-Desenvolver metodologia para a elaboração de biofilmes comestíveis
ncorporados com aditivos naturais;
- Definir as concentrações dos aditivos naturais a serem utilizados na
elaboração dos biofilmes;
-Avaliar a estabilidade do produto embalado (azeite de dendê) nos
biofilmes durante 45 dias de armazenamento, através das análises de índice de
peróxidos, do teor de dienos conjugados, do teor de carotenóides totais e do teor
de hexanal;
-Avaliar a degradação dos compostos antioxidantes incorporados ao
biomaterial e durante a armazenagem do produto embalado pelo monitoramento
do teor de carotenóides totais, flavonóides e fenóis totais;
-Definir formulações dos biofilmes com maior atividade antioxidante;
- Caracterizar os biofilmes quanto à permeabilidade ao vapor de água,
espessura, umidade, sólidos totais e às propriedades mecânicas.
20
Capítulo I
Revisão Bibliográfica
21
1 Embalagens
As primeiras "embalagens" surgiram há mais de 10.000 anos e serviam
como simples recipientes para beber ou estocar. Esses primeiros recipientes,
como cascas de coco ou conchas do mar, usados em estado natural, sem
qualquer beneficiamento, passaram com o tempo a ser obtidos a partir da
habilidade manual do homem. Tigelas de madeira, cestas de fibras naturais,
bolsas de peles de animais e potes de barro, entre outros ancestrais dos
modernos invólucros e vasilhames, fizeram parte de uma segunda geração de
formas e técnicas de embalagem (ABRE, 2009).
Atualmente o setor de embalagem apresenta-se como prioritário e vem
adquirindo importância significativa na produção, distribuição e comercialização
de produtos industrializados e in natura, destinados tanto ao mercado nacional
como às exportações. Visualiza-se a embalagem como um excelente mecanismo
que auxilia na mudança de hábitos e costumes da sociedade, sendo cada vez
mais um facilitador na vida do consumidor (ITAL, 2002).
Ao longo do tempo, à medida que novas necessidades vão surgindo, novas
tecnologias e novos produtos passam a ser utilizados no desenvolvimento de
embalagens (COLES, 2003). A crescente preocupação com a segurança
alimentar, a extensão da vida de prateleira, a relação custo-eficiência, a
conveniência para o consumidor e problemas ambientais, têm impulsionado o
desenvolvimento de novas embalagens bem como de novas matérias-primas para
a sua elaboração (AHVENAINEN, 2003; COLES, 2003).
A embalagem desempenha um papel fundamental na indústria alimentar
graças às suas múltiplas funções. Além de conter o produto, a embalagem é
muito importante na conservação do produto, mantendo a sua qualidade e
segurança, atuando como barreira contra fatores responsáveis pela deterioração
química, física e microbiológica dos produtos. Além disso, o setor de embalagens
constitui um alvo nas políticas de gestão de resíduos sólidos, pois representam
aproximadamente cerca de 30% em peso do consumo total de acordo com dados
de mercado nos Estados Unidos e Brasil (ABRE, 2009).
22
2 Composição de Embalagens
Dentre os produtos mais utilizados como embalagens, destacam-se o
papel, papelão e os polímeros sintéticos, conhecidos comercialmente como
plásticos. O sucesso dos plásticos sintéticos pode ser explicado principalmente
pelo baixo custo, fácil processamento, alta aplicabilidade e durabilidade, sendo
esta última característica o ponto de maior desvantagem da sua aplicação na
fabricação de embalagens descartáveis (FEIL, 1995; NAYAK, 1999; YOSHIGA,
2004). Tal fato pode ser verificado pela quantidade desses materiais descartados
nos lixões e aterros municipais (Figura 1).
Figura 1: Composição percentual em massa dos materiais que compõem os
resíduos sólidos urbanos (YOSHIGA, 2004).
A contribuição do plástico no resíduo sólido municipal é pequena se
comparada a resíduos com material orgânico ou papel e papelão, entretanto o
aspecto negativo é o seu volume aparente e o tempo que este tipo de resíduo
necessita para se decompor (MALI et al., 2010). A Tabela 1 apresenta o tempo de
degradação de alguns materiais.
Tabela 1: Tempo de degradação de materiais quando descartados
Material
Aço (latas)
Alumínio
Madeira
Papel
Plásticos
Vidro
Fonte: SCHLEMMER, 2007.
Tempo de degradação
10 anos
200 a 500 anos
6 meses
1 a 6 meses
450 anos
Indeterminado
23
Estima-se que existam atualmente cerca de 120 produtores de polietileno
no mundo, com uma capacidade média de 70 milhões de toneladas/ano; em 2010
esta capacidade deverá chegar a 88 milhões de toneladas. O crescimento médio
anual desta produção, entre 1990 e 2005, foi de 3,5% nos países desenvolvidos e
9% nos países em desenvolvimento (ABRE, 2009). No Brasil, do total de plásticos
rígidos e filmes flexíveis produzidos, 16,5% é reciclado, o que equivale a 200 mil
toneladas por ano. A maior limitação para a reciclagem é a diversidade das
resinas empregadas, o que cria dificuldades para a separação e reaproveitamento
das mesmas (ABIEF, 2008). A dificuldade de reciclagem da maioria das
embalagens sintéticas disponíveis tem incentivado pesquisas nacionais e
internacionais
no
sentido
de
incrementar
e/ou
desenvolver
materiais
biodegradáveis com características que permitam a sua utilização em
embalagens.
A biodegradação é um processo natural cuja degradação do material é
resultante da ação de microrganismos da natureza, e convertido em compostos
mais simples, redistribuídos através de ciclos elementares como o do carbono,
nitrogênio e enxofre (ROSA & FILHO, 2003).
Os polímeros biodegradáveis são atacados e desintegrados por enzimas
que ocorrem naturalmente em microrganismos (bactérias e fungos) encontrados
no solo. A biodegradação começa quando os microrganismos se desenvolvem na
superfície do polímero e secretam enzimas que quebram o polímero,
transformando a macromolécula em pequenos fragmentos. O processo de
biodegradação depende de diversos fatores, como a atividade microbiana no
ambiente, temperatura, pH, peso molecular e cristalinidade do polímero (AVELLA
et al., 2005).
A biodegradação pode ocorrer em condições aeróbias ou anaeróbias, e em
ambos os casos há a liberação de substâncias atóxicas e que não deixam resíduo
no ambiente (DAVIS & SONG, 2006):
Biodegradação aeróbia: polímero + O2
Biodegradação anaeróbia: polímero
CO2 + H2O
CO2 + CH4 + H2O
Os polímeros sintéticos não são biodegradáveis, pois as enzimas dos
microrganismos não são capazes de degradar tais polímeros.
24
De acordo com YU et al., (2006), os polímeros biodegradáveis são
classificados em diferentes tipos:
 Polímeros naturais de origem agrícola, ex.: amido, proteínas;
 Polímeros produzidos a partir de microrganismos, ex.: poli (hidroxi)
butirato (PHB);
 Polímeros
produzidos
sinteticamente,
obtidos
da
indústria
petroquímica, ex.: poli (capro) lactona (PCL);
 Polímeros sintéticos de monômeros naturais, ex.: poli (acido) lático
(PLA).
Entre os insumos que podem ser utilizados como matérias-primas para a
produção de embalagens biodegradáveis, os materiais de origem agrícola são os
mais utilizados, pois apresentam baixo custo, estão disponíveis o ano todo e
provêm de fonte renovável. Dentre os produtos desse segmento, o amido recebe
especial atenção, pois é um polímero natural que possui a propriedade de formar
filmes e espumas quando gelatinizado e seco, dependendo do processo utilizado.
Dos produtos agrícolas nacionais, a mandioca se destaca por ser uma boa fonte
de amido, possuindo uma grande quantidade desse polissacarídeo em sua
composição e apresenta disponibilidade associado a um baixo custo (MALI et al.,
2010).
A utilização de filmes e revestimentos comestíveis para a proteção de
alimentos foi empregada inicilamente de forma empírica. De acordo com
GONTARD & GUILBERT (1996), dentre as primeiras embalagens plásticas
biodegradáveis
estudadas,
estavam
àquelas
desenvolvidas
a
partir
da
combinação de amido (5-20%) e polímeros sintéticos, porém, estes materiais
apenas
se
fragmentavam
em
moléculas
menores
no
meio
ambiente,
apresentando biodegradabilidade questionável. Atualmente, há o interesse no
desenvolvimento de materiais termoplásticos compostos essencialmente por
amido que, ao contrário dos polímeros usados em embalagens convencionais, é
biodegradável e obtido a partir de fontes renováveis.
25
2.1 Amido
Polissacarídeos são polímeros naturais de carboidratos, formados pela
união de inúmeros monossacarídeos de fórmula estrutural Cn (H2On), como a
glicose C6(H12O6). O amido é um dos polissacarídeos mais abundantes na
natureza, podendo ser encontrados no milho, trigo, mandioca, arroz, inhame,
batata e aveia (FEIL, 1995; ARVANITOYANNIS & BILIADERIS, 1998;
THARANATHAN, 2003).
O amido tem como características originar filmes e revestimentos
resistentes e apresenta possibilidades de modificação química, física ou genética.
Estas propriedades se devem a sua composição por dois tipos de glicose: a
amilose (Figura 2) e a amilopectina (Figura 3), que está na natureza em diferentes
proporções em função da sua origem botânica (KIM et al., 2000).
Figura 2. Estrutura da amilose e respectiva conformação helicoidal (MAIA
et al., 2000).
Figura 3. Estrutura da amilopectina e seu formato de ramificações (MAIA et
al., 2000).
26
Segundo SHIMAZU et al., (2007), a aplicação do amido na preparação de
filmes biodegradáveis se baseia nas propriedades químicas, físicas e funcionais
da amilose para formar géis e filmes. As moléculas de amilose em solução,
tendem a se orientar paralelamente devido à sua linearidade, aproximando-se o
suficiente para que se formem ligações de hidrogênio entre hidroxilas de cadeias
poliméricas adjacentes. Como resultado, a afinidade do polímero por água é
reduzida, favorecendo a formação de pastas opacas e filmes resistentes. Isto
ocorre quando o amido é submetido ao aquecimento em solução aquosa, onde as
ligações de hidrogênio da região amorfa são rompidas, provocando destruição da
ordem molecular e mudanças irreversíveis nas suas propriedades, como a
cristalização. Tal processo é conhecido como gelatinização e na tabela 2 estão
apresentadas as temperaturas na qual ocorre este tipo de transformação para
alguns amidos.
Tabela 2: Temperaturas de gelatinização do amido de diferentes fontes.
Amido
Arroz
Batata
68-78
59-68
T Gel (ºC)
Fonte: SHIMAZU et al., 2007.
Mandioca
49-70
Milho
62-72
Trigo
58-64
Segundo LAWTON (1996), dependendo da fonte do amido, os filmes
apresentam diferentes propriedades atribuídas ao conteúdo de amilose, que varia
entre 18 a 30%. Quanto maior o teor de amilose, melhor será o filme formado. No
entanto, devido ao caráter hidrofílico, estes filmes possuem baixas propriedades
de barreira a vapores de água, porém, apresentam baixa permeabilidade a gases
como CO2 e O2. A propriedade mecânica também é um fator limitante, tendo em
vista que comparada a filmes sintéticos, possuem flexibilidade limitada, pois o
amido gelatinizado apresenta fortes ligações polares que os tornam quebradiços.
A microestrutura e as propriedades dos filmes de amido dependem do
tipo de material utilizado para a sua produção (CUQ et al., 1995). Quando
produzidos em escala laboratorial, a obtenção de filmes biodegradáveis a partir da
fécula de mandioca é baseada na sua gelificação, que ocorre com aquecimento a
70C, seguido de resfriamento. Ocorre então a retrogradação, com conseqüente
formação de um filme transparente, de alto brilho, atóxico e de baixo custo
(HENRIQUE et. al, 2008).
27
Nesta técnica conhecida como casting, após a gelatinização térmica
dos grânulos com excesso de água, a amilose e a amilopectina se dispersam na
solução aquosa e, durante a secagem, se reorganizam, formando uma matriz
contínua que dá origem aos filmes. De acordo com WOLLERDORFER & BADER
(1998), a estrutura cristalina dos filmes de amido, e conseqüentemente, as
propriedades mecânicas e de barreira, são fortemente influenciadas pelas
condições de secagem. Em filmes secos sob temperaturas superiores a 60ºC, o
processo é mais rápido que a retrogradação ou recristalização (processo que
conduz ao envelhecimento dos filmes), gerando materiais mais estáveis ao
armazenamento que filmes secos sob menores temperaturas.
A umidade relativa durante a secagem dos filmes também é um fator
importante, filmes secos sob maiores umidades relativas apresentam estruturas
com maior grau de cristalinidade e maior teor de umidade residual. Tal parâmetro
torna os filmes mais susceptíveis a alterações durante o seu o armazenamento e
utilização. Além disso, os filmes de amido são insolúveis e impermeáveis a
lipídios, ou seja, podem ser empregados para embalar alimentos com altos teores
de lipídios sem alteração de sua estrutura (RYU et al., 2002).
As principais fontes comerciais de amido são o milho (Zea maiz), a batata
(Solanum tuberosum), o arroz (Oriza sativa L.), o trigo (Triticum aestivum L.) e a
mandioca (Manihot esculenta Crantz) (ELLIS et al., 1998), porém, dentre outras
fontes promissoras para a obtenção de amido estão os tubérculos de inhame
(Dioscorea alata) e os grãos de aveia (Avena sativa).
O amido de mandioca vem sendo bastante estudado por pesquisadores
brasileiros para a produção de embalagens biodegradáveis (VEIGA-SANTOS et
al., 2007; ALVES, 2007; ALVES et al., 2007; HENRIQUE et. al., 2008; GRISI,
2008; SILVA, 2009; MALI et al., 2010; SOUZA et al.,2011), uma vez que a
mandioca é cultivada em todos os estados brasileiros, situando-se entre os nove
primeiros produtos agrícolas do País, em termos de área cultivada, e o sexto em
valor de produção (EMBRAPA, 2011). Segundo dados da ABAM (2009), entre
2007 e 2008, a produção brasileira de amido de mandioca aumentou de 545,01
toneladas para 565,11 mil toneladas.
Apesar das diversas vantagens, as propriedades obtidas nos filmes de
biopolímeros limitam sua produção em larga escala. Assim, torna-se importante a
realização de pesquisas no âmbito de melhorar suas propriedades, com
28
incorporação de diferentes compostos à matriz polimérica, visando torná-los
competitivos frente aos polímeros sintéticos convencionais que prejudicam o meio
ambiente.
2.2 Aditivos à Matriz Polimérica
A introdução de aditivos à matriz polimérica tem o intuito de melhorar
determinadas características dos filmes uma vez que estes podem modificar
propriedades físicas e/ou mecânicas, gerando também a possibilidade de
produção de embalagens ativas, se o aditivo apresenta alguma propriedade
específica.
2.2.1 Plastificantes
Filmes biodegradáveis obtidos a partir de proteínas e polissacarídeos
apresentam geralmente baixa elasticidade e são quebradiços, sendo que a
introdução de plastificantes tem sido uma ótima alternativa para resolver este
problema.
Os plastificantes são substâncias de alto ponto de fusão e baixa
volatilidade, que devem ser compatíveis com o biopolímero para garantir sua
eficiência.
Estes
compostos
interagem
com
a
interface
do
polímero,
enfraquecendo as forças intermoleculares, dando maior mobilidade às cadeias
formadoras da matriz polimérica e consequentemente, aumentando a flexibilidade
dos filmes (VEIGA-SANTOS et al., 2005). Características como: resistência à luz,
ausência de cor, gosto ou odor, são desejáveis aos plastificantes.
Os plastificantes mais empregados na produção de filmes a base de
proteínas e polissacarídeos são os polióis, tais como o glicerol e o sorbitol, que
possuem boa interação com o polímero devido a sua estrutura e seu caráter
hidrofílico.
O aumento do teor de plastificantes pode levar também ao aumento da
permeabilidade aos gases de filmes hidrofílicos, pois diminui a densidade entre as
suas moléculas, facilitando a difusão dos gases através do material (VEIGASANTOS et al., 2007). Os plastificantes adicionados aos polímeros atuam como
29
solventes, umavez que suas moléculas começam a penetrar na fase polimérica,
modificando seu arranjo conformacional. Se o plastificante for compatível com o
polímero, toda a estrutura deste se desintegra gradualmente no decorrer da
diluição, com as moléculas de plastificante se posicionando entre as
macromoléculas, provocando a separação entre elas, aumentando a mobilidade
das cadeias e unidades. Os grupos polares do plastificante interagem com os
grupos polares do polímero, enquanto que os grupos apolares atuam como
espaçadores entre os dipolos, resultando em liberdade molecular e mantendo-se
a coesão global da estrutura (MALI et al., 2010).
Quanto menor a molécula do plastificante, maior sua inserção na matriz
polimérica e maiores seus efeitos. O amido é um polímero com três grupos
hidroxilas
por monômero, com diversas pontes de hidrogênio inter e
intramoleculares.
Quando o plastificante forma pontes de hidrogênio com o
amido, as pontes de hidrogênio originais dos grupos hidroxilas da molécula de
amido são destruídas, dando o efeito de plastificação (VEIGA-SANTOS et al.,
1994).
2.2.1.1 Glicerol como Plastificante
Depois de fortes oscilações na década de 90, o mercado do glicerol voltou
a crescer a partir do ano 2000. Uma grande fonte atual é o glicerol proveniente do
biodiesel (BIODIESEL, 2007). A implantação de uma recente lei federal no Brasil
obrigou em 2008, o acréscimo de 2% de biodiesel no diesel comum (B2), e
posteriormente,
esta
proporção
aumentará
para
5%
(LDB,
2004).
Conseqüentemente isto acarretará um aumento na oferta nacional de glicerol, que
é cerca de 10% dos produtos formados na reação de obtenção deste
biocombustível. A previsão é que a mistura de 2% de biodiesel (B2), resultará na
disponibilidade de 80.000 t. de glicerol bruto por ano.
No Brasil, a produção de glicerol em 2008 foi superior a 80 mil toneladas,
sendo mais da metade oriunda de plantas de biodiesel. Esta produção já é muito
superior ao que pode absorver o mercado tradicional do glicerol, que não passa
das 30 mil toneladas/ano (ABIQUIM, 2007).
A cada litro de biodiesel produzido é gerado de 100 a 200 mL de glicerol,
sendo 20% dele usado em síntese de resinas e ésteres, tabaco, papéis,
30
aplicações farmacêuticas, cosméticos, alimentos e a outra parte é descartada.
Uma vez que existe uma oferta maior que a demanda, este desbalanço pode se
tornar ainda maior à medida que for sendo aumentada a produção de Biodiesel
para atender a necessidade de adição ao diesel, de acordo com o previsto pelo
plano do governo (PURIFICAÇÃO et al., 2008).
Portanto, grande parte do sucesso do projeto Biodiesel está condicionada à
glicerina deixar de ser um resíduo para tornar-se fonte de renda real. A dificuldade
de acomodação de uma oferta de glicerol quase três vezes maior que a demanda,
ocorre principalmente porque tal glicerol tem características diferentes da que é
utilizada na indústria de higiene. Outra questão a ser considerada, é que ela não
pode ser descartada no meio ambiente, e não pode ser queimada porque libera
para a atmosfera a cloreína, composto com atividade carcinogênica. Portanto, o
Brasil está diante de um impasse ambiental gerado a partir do biodiesel
(CERQUEIRA & LEAL, 2007).
As previsões para 2013 serão de um excedente de 150 mil toneladas ao
ano de glicerol. Desse modo, é necessário se buscar novos usos para esse
subproduto do biodiesel (ROCHA et al., 2008). A plastificação do amido é uma
alternativa no caminho de produzir materiais biodegradáveis e mais favoráveis ao
ambiente.
2.2.2 Agentes Ativos
Com a busca de se obter plásticos biodegradáveis, vieram também
inovações para produzir embalagens ativas como forma de preservar a qualidade
e a segurança dos alimentos. Essa idéia tem como base o princípio de interação
embalagem-produto, com a observação da necessidade de cada alimento
(CESAR, 2010).
Com a incorporação de diversos agentes ativos, são encontradas também
pesquisas referentes à aplicação de biosensores, polímeros condutores,
propriedades
com
efeitos
antimicrobianos,
antioxidantes,
aromatizantes,
pigmentos, vitaminas, dentre outros. Uma das tecnologias mais promissoras para
preservar alimentos sensíveis à oxidação são as embalagens ativas antioxidantes
(AZEREDO et al., 2000; LEE, 2005; BRAGA & PERES, 2010). Esses sistemas
consistem na incorporação de substâncias antioxidantes em filmes plásticos,
31
papéis ou sachês, de onde serão liberadas para proteger os alimentos da
degradação oxidativa, inibindo as reações de oxidação ao interagirem com
radicais livres e peróxidos (VERMEIREN et al., 1999; BRODY et al., 2001; LEE et
al., 2003; RODRIGUES, 2008; WU et al., 2010).
Pesquisas sobre a aplicação de embalagens ativas antioxidantes e o seu
efeito sobre a oxidação em alimentos estão disponíveis na literatura (GRISI et al.,
2008; SILVA, 2009; MALI et al., 2010; SOUZA et al., 2011).
HERALD et al., (1996) avaliaram o grau de oxidação lipídica de peru cozido
embalado em filmes à base de proteína de milho incorporados com butil
hidroxianisol (BHA), tendo relatado menores teores deste produto secundário da
oxidação (peróxidos) nas amostras acondicionadas em presença do antioxidante.
Filmes comestíveis à base de proteínas do leite que continham aditivos
naturais, incluindo 1,0% de orégano, 1,0%, pimenta, ou um 1,0% da mistura dos
óleos essenciais de orégano-pimenta (1:1), foram aplicadas no músculo da carne
em fatias para aumentar a vida útil durante o armazenamento a 4°C. Os filmes a
base de orégano estabilizou oxidação lipídica em amostras de músculo bovino,
enquanto que os filmes a base de pimenta apresentou a maior atividade
antioxidante (OUSSALAH et al., 2004).
Filme biodegradável a base de amido e álcool polivinílico (PVA) foi
desenvolvido para uso como um revestimento incorporado por aditivos com
propriedades antioxidantes. Os filmes foram impregnados com catequinas
extraídas do chá verde. Em um estudo modelo, a capacidade antioxidante em
óleo de cozinha foi claramente alcançada quando catequinas a 500 ppm foram
incorporadas ao filme. Já um nível de 1.000 ppm foi considerado suficiente para a
maior atividade antioxidante na carne crua em temperaturas de refrigeração (WU
et al., 2010).
SALMIERI & LACROIX (2006) desenvolveram filmes à base de alginato e
policaprolactona incorporados com óleos essenciais de orégano, segurelha e
canela e avaliaram as suas propriedades antioxidantes por meio do teste
colorimétrico do N, N-dietil-p-fenilenediamina (DPD). Os resultados demonstraram
que os filmes a base de orégano exibiram as maiores propriedades antioxidantes.
SOUZA et al., (2011) avaliaram o uso de polpas de manga e de acerola
como fontes de compostos ativos quando incorporados como aditivos em
embalagens biodegradáveis de fécula de mandioca e plastificantes. A partir do
32
estudo foi verificado que os filmes flexíveis com os aditivos naturais na matriz teve
uma ótima atividade antioxidante, pois reduziu os aumentos do índice de
peróxido, dienos conjugados e teores de hexanal, do azeite de dendê embalado.
SILVA (2009) avaliou o uso de fontes de compostos fenólicos derivados de
cacau e café como aditivos em embalagens biodegradáveis ativas de amido de
mandioca e plastificantes. A partir do estudo foi verificado que a incorporação de
cacau e café nos biofilmes conferiu um pronunciado efeito protetor contra a
oxidação lipídica do azeite de dendê embalado, alterando as propriedades
mecânicas e térmicas.
Resultados semelhantes são relatados por GRISI et al., (2008), ao embalar
óleo de soja em biofilmes de fécula de mandioca contendo teores máximos de
azeite de dendê e fruto do dendê, resultaram em menores perdas no teor de
carotenóides totais do produto embalado, indicando que as amostras contendo
maiores teores de antioxidantes apresentam também maior estabilidade contra a
oxidação.
Além de estudos científicos, atualmente também existem patentes sobre o
potencial das embalagens antioxidantes (SOARES et al., 2009).
3 Oxidação Lipídica
A oxidação constitui um dos mecanismos mais freqüentes de deterioração
e redução da vida útil dos alimentos (VERMEIREN et al., 1999). Além de alterar o
gosto (rancificação) e a qualidade nutritiva (perda de vitaminas e ácidos graxos
essenciais) dos alimentos, a oxidação resulta em compostos reativos e tóxicos
que representam um perigo para os consumidores (SOARES et al., 2009).
Os principais substratos da reação de oxidação lipídica são os ácidos
graxos insaturados, pois as ligações duplas são os centros ativos que podem
reagir com o oxigênio. Os ácidos graxos insaturados oxidam-se mais facilmente
quando estão livres e o grau de insaturação também influi na velocidade da
reação (ANDREO & JORGE, 2006).
O principal componente do óleo e da fração lipídica do alimento é o
triacilglicerídeo, que é composto de uma molécula de glicerina e três moléculas de
ácidos graxos. As propriedades físicas e químicas da fração lipídica estão
relacionadas principalmente com o comprimento da cadeia carbônica e o seu grau
33
de insaturação. Normalmente, quanto menor a cadeia carbônica, menor seu ponto
de fusão, e quanto maior o número de insaturações dos ácidos graxos, menor
será o seu ponto de fusão e sua estabilidade para a oxidação. Os ácidos graxos
poliinsaturados com duplas ligações conjugadas são oxidados mais rapidamente
que aqueles com duplas ligações não conjugadas (LIN, 1991). Os óleos vegetais
são bastante suscetíveis a processos oxidativos, que os deterioram, e diminuem
seu armazenamento. Tais processos também causam alterações organolépticas e
nutricionais nos óleos (ROVELLINI et al., 1997).
Os lipídios podem ser oxidados por diferentes caminhos: Reações
hidrolíticas, Oxidação enzimática, Fotoxidação e Autoxidação (SILVA et al., 1999;
ANDREO & JORGE, 2006; RAMALHO & JORGE, 2006).
As reações hidrolíticas são catalisadas pelas enzimas lipase ou pela ação
de calor e umidade, com formação de ácidos graxos livres. A oxidação enzimática
ocorre pela ação das enzimas lipoxigenases que atuam sobre os ácidos graxos
poliinsaturados, catalisando a adição de oxigênio à cadeia hidrocarbonada
poliinsaturada. O resultado é a formação de peróxidos e hidroperóxidos com
duplas ligações conjugadas que podem envolver-se em diferentes reações
degradativas (SILVA et al., 1999).
A fotoxidação é promovida essencialmente pela radiação UV em presença
de fotossensibilizadores (clorofila, mioglobina, riboflavina e outros) que absorvem
a energia luminosa de comprimento de onda na faixa do visível e a transferem
para o oxigênio triplete (3O2), gerando o estado singlete (1O2) (CHORILLIM, et al.,
2007).
A autoxidação é o principal mecanismo de oxidação dos óleos e gorduras,
e está associada à reação do oxigênio com ácidos graxos insaturados, ocorrendo
em três etapas (Figura 4):
• Iniciação – ocorre a formação dos radicais livres do ácido graxo devido à
retirada de um hidrogênio do carbono alílico na molécula do ácido graxo, em
condições favorecidas por luz e calor.
34
Figura 4: Esquema do processo de autoxidação de óleos e gorduras
(SILVA et al., 1999).
• Propagação – os radicais livres que são prontamente susceptíveis ao
ataque do oxigênio atmosférico, são convertidos em outros radicais, aparecendo
os produtos primários de oxidação (peróxidos e hidroperóxidos) cuja estrutura
depende da natureza dos ácidos graxos presentes. Os radicais livres formados
atuam como propagadores da reação, resultando em um processo autocatalítico.
• Término
– os radicais se combinam, com a formação de produtos
estáveis (produtos secundários de oxidação) obtidos por cisão e rearranjo dos
peróxidos (epóxidos, compostos voláteis e não voláteis) (RAMALHO & JORGE,
2006).
Um dos principais problemas na conservação dos alimentos lipídicos é o
desencadeamento do processo oxidativo, que resulta na produção de odores e
sabores desagradáveis, tornando os alimentos inadequados para o consumo.
Como resultado da reação entre o oxigênio e os ácidos graxos insaturados ocorre
a formação de compostos de baixo peso molecular, que são os principais
responsáveis pelo desenvolvimento de odores indesejáveis (PASSOTO et. al.,
1998).
Para se avaliar o estado de oxidação de óleos e gorduras, alguns métodos
monitoram as alterações ocorridas na amostra mediante análises como: índice de
peróxidos, análise sensorial, determinação de dienos conjugados, valor de
carbonila, análise de voláteis, entre outras (ANTONIASSI, 2001).
35
Dentre estes, o índice de peróxidos é um dos métodos mais utilizados para
medir o estado de oxidação de óleos e gorduras. Como os peróxidos são os
primeiros compostos formados quando ocorre a deterioração de óleos e gorduras,
toda gordura oxidada dá resultado positivo em tais.
A oxidação dos ácidos graxos poliinsaturados ocorre com formação de
hidroperóxidos e deslocamento das duplas ligações, com conseqüente formação
de dienos conjugados. Os dienos conjugados absorvem a 233 nm. Os produtos
secundários da sua oxidação, em particular as a-dicetonas ou as cetonas
insaturadas, apresentam um máximo de absorção a 272 nm. Esta diferença
permite diferenciar estados de evolução oxidativa com base na relação A272
nm/A233 nm: quanto maior o valor da absorbância a 233 nm, mais elevado será o
conteúdo em peróxidos, correspondendo, portanto, ao início do processo de
oxidação; pelo contrário, quanto maior for o valor de absorbância a 272 nm, maior
será o teor de produtos secundários presentes (AOCS, 1993; SILVA et al., 1999).
O hexanal, assim como outros compostos voláteis é um hidrocarboneto
que resulta da decomposição dos produtos primários do processo oxidativo
(peróxidos). Aparecem numa fase bastante precoce do ciclo degradativo e estão
na origem do ranço. O hexanal é comumente analisado por cromatografia gasosa
(CG) por headspace (MIRANDA & EL-DASH, 2002; GOODRIDGE et al., 2003;
MARINI et al., 2005).
Para evitar a autoxidação de óleos e gorduras há a necessidade de
diminuir a incidência de todos os fatores que a favorecem, mantendo ao mínimo
os níveis de energia (temperatura e luz) que são responsáveis pelo
desencadeamento do processo de formação de radicais livres, também é
importante evitar a presença de traços de metais no óleo, o máximo contato com
o oxigênio e bloquear a formação de radicais livres por meio de antioxidantes, os
quais, em pequenas quantidades, atuam interferindo nos processos de oxidação
de lipídios (JORGE & GONÇALVES, 1998).
A estabilidade oxidativa, parâmetro global para avaliação de qualidade de
óleos, gorduras e produtos que os contém, não depende apenas da composição
química, mas também da qualidade da matéria-prima, das condições de
processamento e de estocagem (SILVA et al., 1999; ANTONIASSI, 2001).
Os óleos, gorduras e alimentos gordurosos, normalmente são acrescidos
de substâncias capazes de retardar ou inibir a oxidação do substrato quando
36
submetidos a altas temperaturas e, eventualmente, prolongar o armazenamento
(RAMALHO & JORGE, 2006).
3.1 Azeite de Dendê
O óleo da palmeira Elaeis quineensis, é conhecido no Brasil como óleo ou
azeite de dendê, o qual é extraido da polpa do fruto do dendenzeiro e se
caracteriza por uma coloração que vai do amarelo ao vermelho, devido à
presença de grandes quantidades de carotenóides. O produto apresenta
consistência semi-sólida a temperatura ambiente, devido ao alto teor de ácidos
graxos saturados, que por fracionamento fornece duas frações: a oleína e a
estearina (TRIGUEIRO & PENTEADO, 1993a).
As variedades mais cultivadas no Brasil são a dura, a tenera e psífera, as
quais são diferenciadas pela espessura da casca da semente. A variedade mais
utilizada comercialmente é a tenera, produto do cruzamento das variedades dura
x psífera (TRIGUEIRO & PENTEADO, 1993a).
O óleo extraído consiste principalmente de glicerídeos, sendo a maior parte
composta de triacilglicerídeos, com pequenas porções de diglicerídeos e
monoglicerídeos. Este óleo contém também componentes menores, na proporção
de aproximadamente 1% do total. Esta fração de componentes minoritários
contém:
carotenóides,
tocoferóis,
tocotrienóis,
esteróis,
fosfolipídeos,
glicolipídeos, hidrocarbonetos terpênicos e alifáticos e outros traços não
identificados.
Do conteúdo total de carotenóides contido no óleo de palma, o  caroteno
e o  caroteno representam cerca de 80-90%. As Tabelas 3 e 4 mostram,
respectivamente, a composição desta fração de componentes minoritários e a
atividade
pró-vitamínica
A
dos
principais
carotenóides
(TRIGUEIRO
&
PENTEADO, 1993b).
37
Tabela 3: Componentes minoritários de azeite de dendê.
.
Componentes
ppm
Carotenóides
Tocoferóis e tocotrienóis
Esteróis
Fosfolipídeos
Álcool triterpeno
Metil esteróis
Equaleno
Álcoois Alifáticos
Hidrocarbonetos alifáticos
Fonte: TRIGUEIRO & PENTEADO, 1993b.
500-700
600-1000
326-527
5-130
40-80
40-80
200-500
100-200
50
Tabela 4: Atividade de pró-vitamínica A de azeite de dendê.
.
Carotenóide
Atividade (%)
 caroteno
 caroteno
-caroteno
100
50-54
42-50
Fonte: TRIGUEIRO & PENTEADO, 1993b.
Os carotenóides são mais estáveis em sistemas que contenham um
mínimo de oxigênio. As várias duplas ligações dos carotenóides estão sujeitas à
oxidação podendo ser catalisadas pela luz, temperatura, presença de peróxidos e
metais. A isomeria cis-trans, pode ocorrer especialmente durante os processos
que envolvam aquecimento durante o armazenamento. No entanto, estas
transformações podem ser minimizadas utilizando-se baixas temperaturas ou
diminuindo-se o tempo de armazenamento, que pode levar a perdas
insignificantes (ROSSO & MERCADANTE, 2007).
As características físicas e químicas do óleo de dendê têm sido estudadas
por diversos autores. Com relação à acidez, vários são os fatores que influenciam
o aumento do conteúdo de ácidos graxos livres no óleo, como a colheita, o
armazenamento, o transporte dos frutos, o processamento, quando realizados de
38
maneira inadequada e as enzimas lipolíticas, que podem provocar a hidrólise dos
glicerídeos dos frutos, contribuindo de maneira significativa para este aumento.
Com relação aos teores de peróxido, indicativo de grau de oxidação, a
legislação brasileira estabelece limite de 10 meq/kg (TRIGUEIRO & PENTEADO,
1993b).
Ultimamente, o interesse da indústria de alimentos pelo óleo de dendê tem
aumentado significativamente, uma vez que esse óleo tem se mostrado mais
estável frente aos fatores adversos do processamento. Sua composição química
peculiar com elevado teores de ácidos graxos saturados (AGS) favorece sua
termoestabilidade e o torna ideal para aplicação nos processos de fritura dos
alimentos.
Além disso, a presença de teores significativos de carotenóides que podem
variar de 500 a 1600 mg/kg, de acordo com a variedade do fruto (ROSSO &
MERCADANTE, 2007), são importantes sob o ponto de vista nutricional e na
redução formação dos compostos na termodegradação. No Pará e Bahia, o óleo
de palma da variedade tenera, chega a apresentar de 900 a 1140 mg/kg e de 550
a 650 mg/kg de carotenóides, respectivamente (TRIGUEIRO & PENTEADO,
1993a).
4 Antioxidantes
Um antioxidante pode ser definido como um composto ou substância
química que inibe a oxidação ou, qualquer substância que, quando presente em
baixa concentração comparada a do substrato oxidável diminui ou inibe
significativamente a oxidação do mesmo (FUKUMOTO & MAZZA, 2000).
Segundo decreto nº 50.040, de Janeiro de 1961, que dispõe sobre normas
técnicas reguladoras do emprego de aditivos químicos a alimentos, as
substâncias ou misturas de substâncias, dotadas ou não de poder alimentício,
ajuntadas aos alimentos com a finalidade de lhes conferir ou intensificar o aroma,
cor, o sabor ou modificar seu aspecto físico geral ou ainda prevenir alterações
indesejáveis,
descreve
antioxidante
como
a
substância
que
retarda
o
aparecimento de alterações oxidativas nos alimentos (ANVISA, 2006).
39
Segundo a “Food and Drug Administration” (FDA), antioxidantes são
substâncias usadas para preservar alimentos através do retardo da deterioração,
rancidez e descoloração decorrente da autoxidação (ADEGOKE et al., 1998).
Os antioxidantes mais comumente utilizados são os antioxidantes fenólicos
sintéticos, como o Butil Hidroxianisol (BHA), Butil Hidroxituelo (BHT), ou
substâncias bioativas tais compostos fenólicos (tocoferóis, flavonóides, e ácidos
fenólicos),
compostos
nitrogenados
(alcalóides,
derivados
da
clorofila,
aminoácidos e aminas), ou carotenóides, bem como ácido ascórbico (GENEMA,
2002).
Ainda que a inibição completa da rancificação oxidativa não tenha sido até
agora conseguida, é possível retardar essa transformação, de modo a permitir o
consumo dos lipídios ou dos alimentos que os contêm, mesmo após seu
armazenamento por muitos meses (RAMALHO & JORGE, 2006).
Os antioxidantes podem ser classificados em produtos que atuam sobre a
formação do O2, que reagem com O2, que atuam de forma competitiva em cadeia
ou que atuam sobre os peróxidos, decompondo-os, de forma a produzirem
compostos que não mais participam da reação em cadeia de radicais livres
(RAMALHO & JORGE, 2006).
Os antioxidantes naturais ou sintéticos que reagem, ou interferem na
concentração do O2 ou ainda competem com os radicais livres dos ácidos graxos,
são produtos que obviamente interferem na fase de iniciação da reação, fase em
que devem ser usados (BOBBIO & BOBBIO, 1995; MARTINEZ-TOME, 2001;
BERNARDO-GIL et al., 2002).
Os
sinergistas,
antioxidantes
removedores
também
de
podem
oxigênio,
ser classificados em primários,
biológicos,
agentes
quelantes
e
antioxidantes mistos. Os antioxidantes primários são compostos fenólicos que
promovem a remoção ou inativação dos radicais livres formados durante a
iniciação ou propagação da reação oxidativa. Os principais representantes desse
grupo são os polifenóis, como Butil Hidroxianisol (BHA), Butil Hidroxituelo (BHT),
Terc-Butil-Hidroquinona (TBHQ) e Propil Galato (PG).
Os sinergistas são substâncias com pouca ou nenhuma atividade
antioxidante, mas que podem aumentar a atividade dos antioxidantes primários
quando usados em combinação adequada. Os removedores de oxigênio são
compostos que atuam capturando o oxigênio presente no meio, através de
40
reações químicas estáveis tornando-os, conseqüentemente, indisponíveis para
atuarem como propagadores da autoxidação (RAMALHO & JORGE, 2006). Em
associação com a crescente preocupação dos consumidores quanto à segurança
alimentar relacionada aos aditivos, tem crescido o interesse em se identificar
fontes naturais de compostos antioxidantes para a preservação de alimentos
(PESCHEL et al., 2006; JARDINI & MANCINI-FILHO, 2007).
Os compostos antioxidantes naturais têm sido isolados de diferentes partes
de plantas tais como sementes, frutas, folhas e raízes. Esses compostos incluem
flavonóides, ácidos fenólicos, carotenóides, terpenos, tocoferóis mixados,
fosfolipídios e ácidos orgânicos polifuncionais, (KAUR & KAPOOR, 2001;
RIBEIRO et al., 2001). Considerando alguns compostos naturais com atividade
antioxidante comprovada, destacam-se os carotenóides e os compostos fenólicos.
4.1 Carotenóides
Os carotenóides pertencem a um grupo de pigmentos com mais de 600
compostos já identificados geralmente tetraterpenóides de 40 átomos de carbono,
constituídos inclusive de isômeros, todos polisoprenóides e possuem uma cadeia
poliênica que pode ter de 3 a 15 duplas ligações conjugadas. O comprimento do
cromóforo determina o espectro de absorção e a cor do composto, por esta razão
que estas moléculas são pigmentos que variam entre o amarelo, laranja e
vermelho (FRASER & BRAMLEY, 2004; MERCADANTE & EGELAND, 2004).
Esses
pigmentos
são
componentes
de
plantas,
animais
e
microorganismos, sendo adquiridos somente pela dieta. Dos 600 tipos de
carotenóides existentes, somente uma pequena parte é constituintes de
alimentos. São exemplos de carotenóides encontrados em alimentos: -caroteno,
licopeno, -caroteno, luteína, criptoxantina, fucoxantina, -caroteno, violaxantina e
zeaxantina.
Na presença das insaturações esses pigmentos são sensíveis à luz,
temperatura, acidez e reações de oxidação. São moléculas insolúveis em água e
são compostos hidrofóbicos ou lipofílicos solúveis em solvestes orgânicos, como
acetona, álcool e clorofórmio (BRITTON, 1995; KRINSKY & JOHNSON, 2005).
41
Os carotenóides são classificados segundo sua estrutura química como
carotenos quando constituídos por carbono e hidrogênio, ou como xantofilas
quando constituídos por carbono, hidrogênio e oxigênio. Possuem sistemas de
ligações duplas conjugadas na cadeia poliênica, podem ter ou não anel -ionona
nas extremidades da cadeia e grupos funcionais (carbonila, hidroxila, entre
outros). Estas propriedades influenciam tanto na capacidade de absorver luz no
visível, como na atividade anti-radical livre do carotenóide (GOODWIN, 1993).
A principal e mais antiga função conhecida dos carotenóides é a atividade
pro-vitamínica A, mas esta propriedade não é característica de todos os
carotenóides, pois para que o pigmento apresente esta função, a sua estrutura
molecular deve ser composta, no mínimo, por uma cadeia poliênica de 11
carbonos contendo um anel -ionona. Assim, dentre os mais de 600 carotenóides
conhecidos, somente 50 deles são precursores da vitamina A, como o -caroteno,
o -caroteno, o -caroteno, a -criptoxantina e a -criptoxantina. O β-caroteno é o
mais importante precursor da vitamina A, pois possui na sua estrutura molecular
dois anéis β-ionona que originarão duas moléculas de vitamina A durante a etapa
de conversão no organismo (RODRIGUEZ-AMAYA, 1997).
A transformação dos carotenóides pró-vitamínicos em vitamina A ocorre
por clivagem central (mecanismo principal), onde o carotenóide é dividido ao
meio, formando duas moléculas de retinal no caso do β-caroteno ou uma
molécula no caso dos demais carotenóides próvitamínicos A, que são
posteriormente transformadas em retinol (OLSON, 1999).
Existem
efeitos
benéficos
dos
carotenóides
à
saúde
que
são
independentes da atividade pró-vitamínica A e têm sido relacionados a
propriedade antioxidante, através da desativação de radicais livres e pelo
seqüestro do oxigênio singlete. (RODRIGUEZ-AMAYA, 1999).
Os carotenóides podem desativar o oxigênio singlete através de um
processo químico, com a formação de produtos de oxidação. Pelo processo físico
ocorre dissipação de energia adquirida do oxigênio singlete na forma de calor e,
desta forma, voltam ao estado fundamental. Este segundo mecanismo é o que
ocorre preferencialmente (STRATTON et al., 1993).
A capacidade do carotenóide em seqüestrar oxigênio singlete está ligada
ao sistema de duplas ligações conjugadas. A máxima proteção é demonstrada
42
por carotenóides com nove ou mais duplas ligações (RODRIGUEZ-AMAYA,
1999).
PASSOTTO et al., (1998) relatam que o β-caroteno é um tipo de
carotenóide, com ação supressora dos radicais ativos pelo bloqueio do oxigênio
singlet, quando adicionado em sistema contendo óleo de soja, reduzindo o nível
da oxidação lipídica.
Além da propriedade antioxidante, acredita-se que os carotenóides têm
várias ações celulares que os tornam moduladores fisiológicos. A regulação do
crescimento e da diferenciação celular e a estimulação da comunicação entre
células são mecanismos muito importantes na proteção contra o câncer, uma vez
que a proliferação e crescimento descontrolado de células são características
fundamentais da carcinogênese (MACHADO, 2005). Os carotenóides também
apresentam atividade imunoestimuladora, inibindo assim a progressão de
doenças (KHACHIK et al., 1995; RODRIGUEZ-AMAYA, 1999).
4.2 Compostos Fenólicos
Os compostos fenólicos constituem uma das maiores classes de
substâncias presentes na natureza, (aproximadamente 8000), e encontram-se
amplamente distribuídos no reino vegetal, como em frutos, vegetais, grãos,
sementes e flores. Estes constituintes são um dos principais grupos de
metabólitos secundários com uma gama de diferentes estruturas e funções, mas
geralmente possuem um anel aromático ligado a uma ou mais hidroxilas. Sua
distribuição ocorre em todas as partes da planta, porém de forma quantitativa
desigual, variando nos diferentes órgãos da mesma planta e ainda dentro de
diferentes populações de uma mesma espécie (ROBARDS et al., 1999;
WOLLGAST & ANKLAN, 2000)
Nas plantas os compostos fenólicos, são essenciais no crescimento e
reprodução, além de atuarem como agente antipatogênico e contribuírem na
pigmentação. Em alimentos, são responsáveis pela cor, aroma e estabilidade
oxidativa (BOBBIO & BOBBIO, 1989; SOARES, 2002; ÂNGELO & JORGE,
2007). Além disso, exibem grande quantidade de propriedades fisiológicas
(como
antialergênica,
antiarteriogênica,
antiinflamatória,
antimicrobiana,
43
antitrombótica, cardioprotetiva e vasodilatadora), mas o principal efeito dos
compostos fenólicos tem sido atribuído à sua ação antioxidante (MAJO et al.,
2005; BALASUNDRAM et al., 2006; WORARATPHOKA et al., 2007).
Os compostos fenólicos são classificados em dois grandes grupos, os
flavonóides (Figura 5) e os não flavonóides (Figura 6). Os flavonóides
representam
o
maior
grupo
de
polifenóis
encontrados
em
alimentos
(SCALBERT & WILLIANSON, 2000), além de serem considerados os mais
potentes antioxidantes (SHAHID et al., 1992; SOOBRATTEE et al., 2005).
Os flavonóides são compostos largamente distribuídos no reino vegetal,
encontram-se presentes em frutas, folhas, sementes e em outras partes da
planta apresentam a estrutura química descrita como C6-C3-C6 e são
agrupados em antocianinas e antoxantinas.
Os não flavonóides são classificados como: derivados das estruturas
químicas C6-C1 específicas dos derivados do ácido hidroxibenzóico; derivados
das
estruturas
químicas
C6-C3
específicas
dos
derivados
do
ácido
hidroxicinâmico; e derivados das estruturas químicas C6-C2-C6 específicas do
trans-resveratrol, cis-resveratrol e trans-resveratrol-glucosídio (BURNS et al.,
2001; MANACH et al., 2004; SOUSA et al., 2007).
Figura 5: Estrutura química dos flavonóides (SOUSA et al., 2007).
Figura 6: Estrutura química do ácido hidroxibenzóico (A), do ácido
hidroxicinâmico (B) e resveratrol (C) (SOUSA et al., 2007).
44
Os compostos fenólicos, além de proporcionar atividade antioxidante que
prolongam o armazenamento de produtos, têm demonstrado importante
atividade “in vivo” e podem ser benéficos no controle de diversas doenças
relacionadas à formação excessiva de radicais livres que excedem a
capacidade de defesa antioxidante do corpo humano como aterosclerose,
cataratas e câncer (RAMARATHNAM et. al., 1995).
Atualmente,
é
amplamente
aceito
que
compostos
antioxidantes
desempenhem uma função crucial na prevenção de doenças, cujas causas
estejam relacionadas ao estresse oxidativo celular, devido a sua capacidade de
captura, desativação ou reparo de danos causados pelos radicais livres, que
são implicativos em tais doenças. Frutas, verduras e todos os alimentos e
bebidas derivados, são ricos em compostos polifenóicos, que têm sido
estudados como antioxidantes poderosos. Portanto, os efeitos protetores à
saúde, derivados do consumo de tais alimentos, têm sido atribuídos à
quantidade e qualidade dos polifenóis presentes (SOARES, 2002).
A
capacidade
antioxidante
de
compostos
fenólicos
deve-se
principalmente às suas propriedades redutoras e estrutura química. Estas
características desempenham um papel importante na redução ou seqüestro de
radicais livres (como oxigênio singlete) e quelação de metais de transição,
agindo tanto na etapa de iniciação como na propagação do processo oxidativo
(DEGÁSPARI & WASZCZYNSYJ, 2004).
Os fenólicos antioxidantes interferem na oxidação lipídica pela rápida
doação de átomos de hidrogênio aos radicais lipídicos. Além de excelentes
doadores de elétrons, os radicais intermediários formados pela ação de
antioxidantes fenólicos são relativamente estáveis, devido à ressonância do anel
aromático presente na estrutura destas substâncias (SHAHID et al., 1992;
SOUSA et al., 2007; JEONG, et al., 2004).
Diversos estudos foram desenvolvidos para verificar o potencial
antioxidante dos ácidos fenólicos, visando substituir os antioxidantes sintéticos,
largamente utilizados na conservação de alimentos lipídicos por aumentarem a
vida útil de muitos produtos (ZHENG & WANG, 2001; RAMALHO & JORGE,
2006).
Atualmente os mais importantes antioxidantes naturais são os extratos de
condimentos ou plantas, os tocoferóis, ácido ascórbico, cítrico e seus sais
45
(MELO et al., 2008).
O efeito antioxidante de especiarias e ervas foi
inicialmente evidenciado, em 32 especiarias, das quais o alecrim e a sálvia
foram consideradas as mais eficazes.
Posteriormente, esta ação foi
comprovada no orégano e no tomilho, no gengibre, na pimenta na mostrada, na
canela, no coentro, dentre outros (CHIPAULT et al., 1952; JARDINI & MANCINIFILHO, 2007).
5 Fontes Naturais de Compostos Ativos
5.1 Manga
A manga (Mangifera indica L.) pertence à família Anacardiaceae e está
entre as frutas tropicais de maior expressão econômica nos mercados brasileiro
e internacional. É uma fruta polposa, de aroma e cor muito agradáveis, a qual
faz parte do elenco das frutas tropicais de importância econômica não só pela
aparência exótica, mas também por ser uma rica fonte de carotenóides,
minerais e carboidratos (PINTO, 2002; BRANDÃO et al., 2003; ROJO, 2009).
A polpa da fruta é carnosa, suculenta, fibrosa em algumas variedades,
apresenta uma coloração amarela ou amarelo-alaranjada, e possui semente
achatada de tamanho variável (LIMA, 2009). É uma fruta climatérica, altamente
perecível,
devido
a
atividades
enzimáticas
degradativas
(tais
como
poligalacturonase e celulase), entre outras causas, que são ativadas no período
de maturação, causando redução no conteúdo de fibras dietéticas e
amolecimento da fruta (GIRALDO et al., 2003).
A Índia é o maior produtor mundial de manga com 13,5 milhões de
toneladas em 2007. Atualmente, o Brasil está entre os 10 maiores produtores
ocupando a 7ª colocação produzindo em 2007, 1,27 milhões de toneladas
(FAOSTAT, 2010). No Brasil, o Nordeste concentra a maior parte da produção
de manga, sendo seguido pela região Sudeste, sendo que as duas regiões
juntas concentram 90% da produção nacional que está distribuída também nos
estados de São Paulo (23%), Bahia (22%), Pernambuco (11%), Minas Gerais
(10%), Ceará (7%), Paraíba (7%) e Piauí (4%) (IBGE, 2010).
O valor vitamínico das mangas fica circunscrito principalmente em torno
de seu conteúdo de pró-vitamina A (carotenóides), vitamina C (ácido ascórbico),
46
e pequenas quantidades de vitaminas do complexo B (CARDELLO &
CARDELLO, 1998).
Este fruto contém uma concentração elevada de carotenóides com
valores que variam de 2,1mg/100g a 9,4mg/100g, dependendo da espécie
analisada (CARVALHO et al., 2004). MELEIRO-AZEVEDO (2003), relata que os
principais carotenóides encontrados na manga foram o -caroteno, a
violaxantina e cis-violaxantina. HYMAVATHI & KHADER (2005), descrevem
valores de 3375μg/100g de -caroteno. A quantidade de carotenóides pode
variar devido a vários fatores como: estádio de maturação, diferentes cultivares,
efeitos climáticos e ou geográficos, processamento e condições de estocagem
(Tabela 5).
Tabela 5: Concentração de carotenóides totais (µg/g) em diferentes estádios de
maturação de manga da variedade “Keitt” e “Tommy Atkins”.
Concentração de carotenóides totais
Variedade
verde
parcialmente
maduro
maduro
Keitt
12,3 ± 3,2
23,6 ± 1,8
38,0 ± 7,7
Tommy Atkins
17,0 ± 7,8
45,1 ± 20,7
51,2 ± 16,8
Fonte:
(MERCADANTE & RODRIGUEZ-AMAYA, 1998).
No mercado interno, mesmo a manga sendo geralmente comercializada e
consumida na forma in natura, há um crescente interesse pela polpa congelada.
A manga constitui uma importante fonte de fitoquímicos antioxidantes, dentre os
quais se destacam os polifenóis e os carotenóides.
Embora os carotenóides sejam instáveis na presença de oxigênio,
quando
presentes
em
um
sistema
multicomponente
lipídico,
são
preferencialmente oxidados, atuando como antioxidante (GOODRIDGE et al.,
2003).
Estudos recentes têm demonstrado que muitos flavonóides e polifenóis
contribuem significativamente para a atividade antioxidante de muitos frutos e
47
vegetais. Em manga tem sido relatada a ocorrência de ácido gálico, ácidos mdigálico e m-trigálico, galotanino, quercetina, isoquercetina, mangiferina e ácido
elágico (SCHIEBER et. al., 2000; EINBOND et al., 2004).
AZEVEDO (2006) analisou por CLAE treze padrões de polifenóis, sendo
que sete foram encontrados nas amostras de polpa de manga, entre eles o
ácido gálico, metil galato, catequina, epicatequina, ácido ferúlico, ácido
isoferúlico e propil galato, e o teor de fenóis totais encontrados na variedade
Tommy Atkins em diferentes estádios de maturação variou de 31,68 a 117,44
mg/100g.
Além
da
atividade
antioxidante,
a
manga
possui
quantidades
consideráveis de fibras (BRANDÃO et al., 2003). CARVALHO et al., (2004),
encontraram valores de fibras totais que variaram de 1,71 a 2,80%. A
quantidade apreciável de fibras na polpa da manga poderá melhorar as
propriedades mecânicas das matrizes poliméricas dos filmes a base de fécula
de mandioca, proporcionando uma diminuição da permeabilidade ao vapor
d’água e uma maior resistência mecânica dos materiais.
5.2 Erva-Mate
A Ilex paraguariensis Saint Hílare (Aquifoliaceae), conhecida popularmente
como erva-mate, é uma espécie nativa da América do Sul e tem sua área de
ocorrência natural restrita a 3 países: Brasil, Paraguai e Argentina. O Brasil está
entre os principais países produtores de erva-mate do mundo, com produção de
434.483 toneladas em 2008 (IBGE, 2010).
De acordo com o Projeto Plataforma Tecnológica da Erva-Mate (PADCT
Erva-Mate), a erva-mate, quando comparada com outros tipos de plantas e/ou
produtos industrializados, é um produto centenário que se encontra em fase
embrionária de descobertas, principalmente, em termos dos seus usos industriais,
a nível internacional.
Para CAMPOS (1996) o desenvolvimento tecnológico da erva-mate e
derivados requer investimentos em pesquisa, para modernização e otimização
dos processos de produção, para a busca de uma maior qualidade e
48
diversificação de produtos, para que desta forma, possa ocorrer a busca de novos
mercados nacionais e internacionais.
As partes aéreas de Ilex paraguariensis são usadas para preparar um chá
como bebida, o mate. O mate é consumido como duas infusões diferentes: uma é
preparada pela adição simples de água quente ao material seco da planta (chá) e
a outra é preparada por adições repetidas de água aquecida no mesmo material
(chimarrão). Ambas as preparações permitem a extração quase completa dos
componentes solúveis em água (PARANÁ, 2000).
A erva-mate apresenta em sua composição química sais minerais,
vitaminas, aminoácidos, saponinas triterpênicas, alcalóides (metilxantinas como
cafeína, teobromina e teofilina), açúcares e compostos fenólicos como flavonóides
(quercetina e rutina), ácido clorogênico e taninos (NEWALL et al., 1996; BRAVO
et al., 2007; SILVA et al., 2008).
Os compostos fenólicos (flavonóides, ácido caféico e os ácidos
clorogênicos) são conhecidos pela sua capacidade antioxidante no organismo
humano (SIMÕES et al., 2001; NACZK & SHAHIDI, 2006). Essa capacidade é
atribuída ao poder redutor da hidroxila do grupo aromático, que reduz o radical
livre reativo e produz o radical fenoxila estabilizado por ressonância (NACZK &
SHAHIDI, 2006).
BIXBY et al. (2005), compararam a infusão de I. paraguariensis com o chá
verde
e
vinho,
bebidas
tradicionalmente
consumidas
e
consideradas
antioxidantes. Os resultados mostraram que a erva-mate possui valor de
polifenóis mais elevado, seguido do vinho tinto e chá verde e, conseqüentemente,
apresentou maior capacidade de seqüestro de radicais livres. Segundo BRAVO et
al., (2007), a maior capacidade antioxidante atribuída ao extrato de erva-mate
comparado ao vinho e chás deve-se ao seu maior conteúdo de ácidos mono e
dicafeoilquínico. Os derivados do ácido dicafeoilquínico têm sido relacionados
com vários efeitos biológicos benéficos (redutor do colesterol, anti-mutagênico,
anti-inflamatório e antiviral).
FILIP et al. (2000), avaliaram a presença de compostos fenólicos e
flavonóides em sete espécies sul-americanas de Ilex, e constataram maior teor
destes compostos na espécie I. paraguariensis quando comparados às demais.
DONADUZZI et al. (2003), encontraram um teor de polifenóis totais
variando entre 79 – 110 mg/g para diferentes progênies de erva-mate.
49
A quercetina é um dos flavonóides encontrados na erva-mate e são
responsáveis pela remoção de radicais livres como íon superóxido, oxigênio
singlet e também inibe a oxidação das LDL (BATLOUNI, 1997). A infusão de chá
apresenta concentrações de quercetina que varia de 10 a 25 mg/L (MARTINEZVALVERDE et al., 2000).
Estudos dos efeitos antioxidantes e antimicrobianos dos extratos etanólicos
e metanólicos de chá verde, chá preto e erva-mate na CMS (carne
mecanicamente separada) de frango, não apresentaram proteção antimicrobiana,
no entanto todos demonstraram ação antioxidante quando comparados com as
amostras sem tratamento (TERRA et al., 2008).
Foi demonstrado em estudo comparativo o efeito antioxidante de extratos
hidro-etanólico e metílico de casca de maçã, folhas de alcachofra e erva-mate em
CMS de frango, mantidas sob refrigeração e congelamento. Constatou-se através
do índice de TBARS (substâncias reativas ao ácido tiobarbitúrico) que o extrato
metílico de erva-mate apresentou maior poder antioxidante com determinação de
1,68 mg de malonaldeído/kg amostra, e os demais extratos testados com 7,95 mg
de malonaldeído/kg de amostra (TERRA et al., 2008).
Com o objetivo de inibir a rancificação foram adicionados o antioxidante
sintético BHA e extrato hidro-etanólico de erva-mate nas concentrações de 0,5%
e 1% em salame tipo italiano e os resultados mostraram que houve proteção
contra a oxidação lipídica do extrato de erva-mate comparável ao BHT. Os
tratamentos com o extrato de erva-mate (0,5%) além de inibir a oxidação lipidica
também obtiveram melhora na cor da lingüiça (RAMALHO & JORGE et al., 2006).
6 Caracterização de Filmes Flexíveis
As propriedades físicas dos filmes de amido, assim como de embalagens
sintéticas convencionais, podem mudar significativamente com alterações de
temperatura e umidade relativa durante a realização dos ensaios de
caracterização. Para que se possam comparar diferentes materiais e resultados
de ensaios de diferentes laboratórios, é necessário padronizar tais condições
durante as análises.
O termo condicionamento refere-se à estocagem da amostra em ambiente
com umidade relativa constante, durante um período de tempo, a fim de se obter
50
um estado definido da amostra em relação à atmosfera, para que possam ser
obtidos resultados reprodutíveis e ainda, para se conhecer o comportamento do
material em relação a determinadas condições ambientais.
Filmes biodegradáveis produzidos a base de amido são largamente
estudados por não apresentar sabor, odor ou cor e por apresentar baixa
permeabilidade ao oxigênio, em baixas condições de umidade relativa (PHANTHE et. al., 2009). Porém muitos pesquisadores relatam que o uso do amido
como matriz, não é muito viável, devido a algumas propriedades mecânicas, tais
como, baixa barreira à umidade, baixa resistência mecânica e a água, além do
rápido envelhecimento (retrogradação) (KROCHTA & MULDER-JOHNSTON,
1997; VEIGA - SANTOS et al., 2005).
A adição de plastificantes como os polióis (glicerol, sorbitol, etc.), sacarose,
açúcar invertido dentre outros, melhoram as características dos biofilmes de
amido, deixando-os viáveis para a utilização, pois a adição destes produtos
melhora a resistência ao vapor de água, diminui a resistência à tração, aumenta
o alongamento e altera a temperatura de transição vítrea do material (HAYASHI et
al., 2006; VEIGA-SANTOS et al., 2007; HENRIQUE et. al., 2008; ZULLO &
IANNACE, 2009).
A aplicação de biofilmes depende fortemente de suas características
mecânicas e de barreira. Como a incorporação de aditivos tende a alterar as
características dos biofilmes de amido, torna-se importante a caracterização
físico-química, térmica e mecânica dos novos compostos.
As características físicas mais estudadas em embalagens são: espessura,
sólidos
totais,
porcentagem
de
alongamento,
resistência
à
tração
e
permeabilidade ao vapor de água.
6.1 Espessura
Segundo GENNADIOS et al., (1993) o controle da espessura dos filmes é
importante para manter sua uniformidade, permitindo a repetitividade das
propriedades analisadas e assim validar as comparações entre as propriedades
dos filmes. Quando alíquota da solução filmogênica é depositada em suporte para
secagem, é importante controlar o nível da superfície onde o mesmo é mantido
51
(por exemplo, estufas ou bancadas), para evitar diferenças na espessura dos
filmes, provocadas pelo desnível do suporte.
A espessura deve ser estabelecida levando-se em conta a utilização final
do filme, que dependerá do alimento a ser embalado (SARMENTO, 1999). Esse
controle é difícil, sobretudo nos processos de produção do tipo casting, pois a
solução formadora de filme pode se tornar muito viscosa, dificultando seu
espalhamento e, conseqüentemente, o controle da espessura, além de possibilitar
a formação de bolhas na solução (SOBRAL, 1999). A espessura é um importante
parâmetro de medida, pois é a base para várias propriedades dos filmes,
incluindo as mecânicas e as de permeabilidade (XIE et. al., 2002).
PARK & CHINNAN (1995) observaram em seus estudos que a
permeabilidade ao oxigênio e ao gás carbônico dos filmes protéicos (zeína e
glúten) aumentava conforme a espessura dos filmes diminuía, enquanto que a
permeabilidade ao vapor de água aumentava proporcionalmente a espessura dos
filmes. Segundo esses autores, a permeabilidade pode variar com a espessura
devido às mudanças estruturais causadas pelo inchamento da matriz filmogênica,
que afeta a estrutura dos filmes e provoca tensões internas que podem influenciar
a permeação.
SOBRAL (1999) constatou que o aumento da espessura de biofilmes
elaborados a partir de gelatina (bovina e suína) resultava em um aumento linear
da força de ruptura do filme. O mesmo foi verificado por CUQ et al., (1996) que
atribuíram seus resultados ao aumento da quantidade de matéria seca por
superfície, levando a um aumento superficial do número de cadeias de proteína e,
conseqüentemente, a um aumento do número de interações intermoleculares.
Para a análise de espessura, recomenda-se que as medidas sejam
realizadas em corpos de prova sem irregularidade, a pelo menos 6 mm da borda.
As amostras devem ser previamente acondicionadas em ambiente com umidade
e temperatura controladas. Além disso, as superfícies de medição do micrômetro
devem ser limpas com óleo anticorrosivo, como éter de petróleo e anteriormente à
análise, o micrômetro deve ser sempre zerado. A espessura é mais comumente
expressa em m (SARANTÓPOULOS et al., 2002).
52
6.2 Propriedades de Barreira
A proteção do alimento contra alterações provocadas pelo meio ambiente
desde a sua obtenção até chegar ao consumidor é uma das preocupações mais
importantes nos dias de hoje (MARTIN-POLO et. al., 1992). A migração de vapor
de água é um dos principais fatores de alteração da qualidade sensorial e da
estabilidade na estocagem (GONTARD et al., 1995).
A permeabilidade ao vapor de água é definida pela ASTM E-96-90 como a
taxa de transmissão de vapor de água por unidade de área através do filme, de
espessura conhecida, induzida por um gradiente de pressão entre duas
superfícies específicas, de temperatura e umidade relativa especificada (ASTM,
1990).
Uma das formas mais utilizadas para avaliar a taxa de permeabilidade ao
vapor de água dos filmes biodegradáveis é através de método gravimétrico. Tal
método consiste em pesagens sucessivas de uma cápsula hermeticamente
fechada, contendo o filme na sua superfície e substância dessecante (cloreto de
cálcio ou sílica gel) no seu interior; colocadas em ambientes com umidade
controlada. Caso o filme tenha grande afinidade pela água, é necessária a
utilização de corpos de prova adicionais, preparados sem dessecante (branco)
para que possa ser descontada ou acrescida à variação de peso do material.
Alternativamente, a solução com umidade controlada também pode ser colocada
no
interior
da
cápsula,
e
no
seu
exterior,
o
material
dessecante
(SARANTÓPOULOS et al., 2002).
A propriedade de barreira ao vapor de água é um importante fator para a
seleção de um filme comestível como material a ser aplicado em sistemas
alimentícios (JEON et al., 2002).
6.3 Propriedades Mecânicas
As propriedades mecânicas dos filmes de amido podem ser consideradas
as mais restritivas, pois, em geral, estes materiais devem ser resistentes à ruptura
e à abrasão, para proteger e reforçar a estrutura dos alimentos e, ainda, devem
53
ser flexíveis, para adaptar-se a possíveis deformações sem se romper (SOBRAL,
1999).
As
propriedades
mecânicas
dependem
fortemente
da
formulação
(macromolécula, solvente, plastificante, ajustador de pH) e do processo de
obtenção. Dentro da formulação, o teor de plastificante, como já citado, é um
importante fator capaz de alterar o perfil de propriedades mecânicas de um filme
de amido. Filmes de amido sem plastificantes são resistentes e elásticos e, à
medida que se aumenta o teor de plastificante, estes materiais se tornam mais
flexíveis e deformáveis (MALI et al., 2004).
Os plastificantes atuam diminuindo as forças intermoleculares entre as
cadeias de amido, provocando redução da temperatura de transição vítrea e, de
modo geral, a resistência cai e a flexibilidade aumenta com o incremento da
concentração do plastificante (BILIADERIS, 1991; GONTARD & GUILBERT,
1996; CUQ et al., 1996; SOBRAL, 1999).
As principais propriedades mecânicas dos filmes são a resistência à tração
e a porcentagem de elongação. A primeira é expressa pela tração máxima
desenvolvida pelo filme no teste. A segunda é a habilidade do filme em se
estender. Os filmes obtidos devem ser resistentes à ruptura e à abrasão, fazendo
com que o alimento não perca sua integridade e proteção por manuseio e
transporte. Além disso, ele deve possuir flexibilidade suficiente para adaptar-se a
eventuais deformações no alimento sem dano mecânico (GONTARD et al., 1995).
O teste mais utilizado para medir a força mecânica, é o teste de tração,
onde podem ser derivadas as propriedades de resistência à tração, elongação,
força resultante e módulo de elasticidade. O ensaio de determinação das
propriedades de tração de um filme flexível envolve a separação, em uma
velocidade constante, de duas garras que prendem as extremidades de um corpode-prova, registrando-se ao longo do ensaio a força ou a resistência que o
material oferece à deformação. A deformação é o alongamento relativo do corpode-prova em relação a seu comprimento original. A tensão de ruptura (MPa) é a
resistência oferecida pelo material no ponto da ruptura. O alongamento (%) é a
relação percentual entre o elongamento do corpo-de-prova no teste e seu
comprimento inicial (SARANTÓPOULOS et al., 2002).
A metodologia padrão para os ensaios de resistência mecânica segue as
especificações ASTM D882-00 (ASTM, 2001), onde corpos de prova retangulares
54
(8 x 2,5 cm) obtidos de filmes pré-condicionados (75% UR, 30C) são fixados
entre as garras de tensão do equipamento. A espessura de cada amostra deve
ser medida em quatro pontos, em posições aleatórias. A posição inicial e a
velocidade de separação das garras devem ser fixadas a 50 mm e 12,5 mm/min,
respectivamente, e devem ser realizadas pelo menos cinco medidas para cada
amostra.
Referências
ABAM – Associação Brasileira dos Produtores de Amido de Mandioca (2009).
Dados de produção (2009). Disponível em: <http: www.abam.com.br>. Acesso
em: 12/01/2011.
ABIEF - Associação brasileira da indústria de embalagens plásticas flexíveis.
Dados 2008. Disponível em: <http://www.abief.com.br /flex/flex _0018. asp.>.
Acesso em: 26/02/2010.
ABIQUIM - Anuário da Indústria Química Brasileira, São Paulo, ABIQUIM, 2007.
ABRE - Associação brasileira de embalagem. Apresentação do setor.
Disponível em: <http://www.abre.org.br/index.php>. Acesso em: 11/03/2009.
ADEGOKE, G. O.; KUMAR, M. N.; GOPALAKRISHNA, A. G.; VARDARAJ, M. C.;
SAMBAIAH, K.; LOKESH, B. R. Antioxidants and lipid oxidation in food – a critical
appraisal. Journal of Food Science Technology, v. 35, p. 283-298, 1998.
AHVENAINEN, R. In: Novel Food Packaging Techniques. Published by
Woodhead Publishing Limited. Abington Hall, Abington. Cambridge. England, p.
20-36, 2003.
ALVES, V. D. Produção e caracterização de biomateriais a partir de fibras naturais
e amidos com polibutileno adipato co-tereftalato (PBAT). 2007. Tese (Doutorado
em Ciência de Alimentos) – Universidade Estadual de Londrina. Londrina.
ALVES, V. D.; MALI, S.; BELÉIA, A.; GROSSMANN, M. V. E. Effects of glycerol
and amylose enrichment on cassava starch films properties. Journal of Food
Engineering, Essex, v. 78, n. 2, p. 941-946, 2007.
ANDREO, D.; JORGE, N. Antioxidantes naturais: técnicas de extração. Centro de
Pesquisa e Processamento de Alimentos, Curitiba, v. 24, n. 2, p. 319-336,
2006.
ANGELO, P. M.; JORGE, N. Compostos fenólicos em alimentos – Uma breve
revisão. Revista Instituto Adolfo Lutz, v. 66, n. 1, p. 232-240, 2007.
55
ANTONIASSI, R. Métodos de Avaliação da Estabilidade Oxidativa de Óleos e
Gorduras. Boletim do Centro de Pesquisa de Processamento de Alimentos.
B. CEPPA, v. 19, n. 2, p. 353-380, 2001.
ANVISA. Resíduos de agrotóxicos em alimentos. Revista Saúde Pública, v. 40,
n.2, p. 361-3, 2006.
AOCS - American Oil Chemists Society. Official method of analysis Ti 1a-64.
Spectrophotometric determination of conjugated dienoic acid. 1993.
ARVANITOYANNIS, I.; BILIADERIS, C. G. Physical properties of polyolplasticized edible films made from sodium caseinate and soluble starch blends.
Food Chemistry, v. 62, n. 3, p. 333-342, 1998.
ASTM. American Society for Testing and Materials. Standard Test Method for
tensile properties of thin plastic sheeting ASTM D882-00, n. 1, 2001.
ASTM. Standard test methods for oxygen transmission rate through dry packages
using a coulometric sensor, Designation D 3985-81, ASTM Book of Standards,
ASTM, p. 1177-1182, 1990.
AVELLA, M.; VLIEGER, J. J.; ERRICO, M. E.; FISCHER, S.; VACCA, P.;
VOLPE, M. G. Biodegradable starch/clay nanocomposite films for food
packaging applications. Food Chemistry, v. 93, p. 467-474, 2005.
AZEREDO, H. M. C.; FARIA, J. A. F.; AZEREDO, A. M. C. Embalagens Ativas
para alimentos. Ciência e Tecnologia de Alimentos, v. 20, p. 337-341, 2000.
AZEVEDO, A. C. S. Estudo das enzimas oxidativas e presença de compostos
bioativos em mangas (Mangifera indica L.) produzidas no Brasil. 2006. 178p. Tese
(Doutorado em Engenharia de Alimentos).
Faculdade de Engenharia de
Alimentos, Unicamp, Campinas-SP.
BALASUNDRAM, N.; SUNDRAM, K.; SAMMAN, S. Phenolic compounds in plants
and agri-industrial by-products: antioxidant activity, occurrence, and potential
uses. Food Chemistry, v. 99, n. 1, p. 191-203, 2006.
BATLOUNI M. Hipótese Oxidativa da Aterosclerose e Emprego dos Antioxidantes
Na Doença Arterial Coronária. Arquivos Brasileiros de Cardiologia, 1997.
BERNARDO-GIL, M. G.; RIBEIRO, M. A.; ESQUÍVEL, M. M. Produção de
extractos para a indústria alimentar: uso de fluidos supercríticos. Boletim de
Biotecnologia, v. 73, n. 1, p. 14-21, 2002.
BILIADERIS, C. G. The Structure and Interactions of Starch with Food. Canadian
Journal of Physiology and Pharmacology, v. 69, p. 60 -78, 1991.
BIODIESEL. 2007. Disponível em:<www.biodieselbr.com/biodiesel/glicerina
/biodiesel-glicerina.htm>. Acesso: 08/02/2009.
56
BIXBY, M.; SPIELER, L.; MENINI, T.; GUGLIUCCI, A. Ilex paraguariensis extracts
are potent inhibitors of nitrosative stress: A comparative study with green tea and
wines using a protein nitration model and mammalian cell cytotoxicity. Life
Sciences, v. 77, p. 345-358, 2005.
BOBBIO, F. O.; BOBBIO, P. A. Introdução à química dos alimentos. 2º edição.
Livraria Varela. São Paulo. p. 204-210, 1995.
BRAGA, R. L; PERES, L. Novas tendências em embalagens para alimentos:
revisão. B.CEPPA, Curitiba, v. 28, n. 1, p. 69-84, 2010.
BRANDÃO, M. C. C.; MAIA, G. A.; LIMA, D. P. Análise físico-química,
microbiológica e sensorial de frutos de manga submetidos à desidratação
osmótico-solar. Revista Brasileira de Fruticultura, v. 25, n. 1, p. 38-41, 2003.
BRAVO, L.; GOYA, L.; LECUMBERRI, E. LC/MS characterization of phenolic
constituents of mate (Ilex paraguariensis, St. Hil.) and its antioxidant activity
compared to commonly consumed beverages. Food Research Internacional, n.
40, p. 393-405, 2007.
BRITTON, G. Structure and properties of carotenoids in relation to function. The
FASEB Journal, v. 9, p. 1551-1558, 1995.
BRODY, A. L. What's active in active packaging. Food Technology, v. 55, n. 6, p.
75-78, 2001.
BURNS, J.; GARDNER, P. T.; MATTHEWS, D.; DUTHIE, G. G.; LEAN, M. E. J.;
CROZIER, A. Extraction of phenolics and changes in antioxidant activity of red
wines during vinification. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 49, n.
12, p. 5797-5808, 2001.
CAMPOS A. M. Desenvolvimento de extratos secos nebulizados de Ilex
paraguariensis St. Hill. Aquifoliaceae (erva-mate). Porto Alegre, 1996. 149p.
Dissertação (Mestrado em Ciências Farmacêuticas). Universidade Federal do Rio
Grande do Sul, UFRGS, Porto Alegre-RS.
CARDELLO, H. M. A. B.; CARDELLO, L. Teor de vitamina C, atividade de
ascorbato oxidase e perfil sensorial da manga (Mangífera indica L.) variedade
Hadem, durante o amadurecimento. Ciência e Tecnologia de Alimentos, v. 18,
n. 2, p. 211-217, 1998.
CARVALHO, C. R. L.; ROSSETTO, C. J.; MANTOVANI, D. M. B.; MORGANO, A.
M.; JOSALBA, J. V. C.; BORTOLETTO, N. Avaliação de cultivares de mangueiras
selecionadas pelo instituto agronômico de campinas comparada a outras de
importância comercial. Revista Brasileira de Fruticultura, v. 26, n. 2, p. 264-271,
2004.
CERQUEIRA, L. R. C; LEAL, M. R. L. V. O biocombustível no Brasil. Novos
estudos CEBRAP, São Paulo, n. 78, 2007.
57
CESAR, A. S.; MORI, C.; BATALHA, M. O. Batalha Inovações tecnológicas de
embalagens nas indústrias de alimentos: estudo de caso da adoção de
embalagem ativa em empresas de torrefação de café. RBI - Revista Brasileira
de Inovação, v. 9, n. 2, 2010.
CHIPAULT, J. R.; MIZUN, G. K.; HAWKINS, J. M.; LUNDBERG, W. O. The
antioxidant properties of natural spices. Food Research, v. 17, p. 46-55, 1952.
CHORILLI M, L.; LEONARDI, G. R.; SALGADO, H. R. N. Radicais livres e
antioxidantes: conceitos fundamentais para aplicação em formulações
farmacêuticas e cosméticas. Revista Brasileira de Farmácia, v. 88, p.113-118,
2007.
COLES, R. In: Food packaging technology. Blackwell publishing LTD. Oxford.
p.1-29, 2003.
CUQ, B.; GONTARD, N.; GUILBERT, S. Proteins as agricultural polymers for
packaging production. Cereal Chemistry, v. 75, n. 1, p. 1-9, 1995.
CUQ, B.; GONTARD, N.; CUQ, J.; GUILBERT, S. Functional properties of
myofibrilar protein-based biopackaging as affected by film tickness. Journal of
Food Science, v. 61, n. 3, p. 580-584, 1996.
DAVIS, G.; SONG, J. H. Biodegradable packaging based on raw materials
from crops and their impacto n waste management. Industrial Crops and
Products, v. 23, p. 147-161, 2006.
DEGÁSPARI, C. H.; WASZCZYNSYJ, K. N. Propriedades Antioxidantes de
compostos fenólicos. Visão Acadêmica, v. 5, n. 1, p. 33-40, 2004.
DONADUZZI, C. M.; CARDOZO, E. L.; DONADUZZI, E.; STURION. J. A.;
CORREA, G. Variação nos teores de polifenois e taninos em dezesseis progênies
de erva-mate (Ilex paraguariensis St. Hil.) cultivadas em três municípios do
Paraná. Arquivos Ciências Saúde, Toledo, v. 7, n. 2, p. 129-133, 2003.
EINBOND, L.; REYNERTSON, K. A.; LUO, X. D.; BASILE, M. J.; KENNELLY, E.
J. Anthocyanin antioxidants from edible fruits. Food Chemistry, v. 84, p. 23-28,
2004.
ELLIS, R. P.; COCHRANE, M. P.; DALE, M. F. B.; DUFFUS, C. M.; LYNN, A.;
MORRISON, I. M.; PRENTICE, R. D. M.; SWANSTON, J. S.; TILLER, S. A. Starch
production and industrial use (Review). Journal of Science Food and
Agriculture, London, v. 77, n. 3, p. 289-311, 1998.
EMBRAPA. Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária. Cultura da Mandioca.
Brasilia, 2011.
FAOSTAT. Food and Agriculture Organization of the United Nations Statistical
Databases. Agricultural Data. 2009. Disponível em: <http://faostat.fao.org
/faostat>. Acesso em: 05/01/2010.
58
FEIL, H. Biodegradable plastics from vegetable raw materials. Agro-FoodIndustry Hi Tech, v. 5, p. 25-32, 1995.
FILIP, R.; LOLITO, S. B.; FERRARO, G.; FRAGA, C. G. Antioxidant activity of Ilex
paraguariensis and related species. Nutrition Research, v. 20, n. 10, p. 14371446, 2000.
FRASER, P. D.; BRAMLEY, P. M. The biosynthesis and nutritional uses of
carotenoids. Progress in Lipid Research, v. 43, p. 228-265, 2004.
FUKUMOTO, L. R.; MAZZA, G. Assessing antioxidant and prooxidant activities of
phenolic compounds. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 48, n. 8,
p. 3597-3604, 2000.
GENEMA, A. K. Extração e caracterização do extrato de alecrim (rosmarinus
officinalis L.): Estudo de sua ação antioxidante. 2002. 145p. Dissertação
(Mestrado em Engenharia de Alimentos) Universidade Federal de Santa Catarina,
Florianópolis – SC.
GENNADIOS, A.; WELLER, C. L.; TESTIN, R. F. Property modification of edible
wheat, glúten-based films. Transations of American Society of Agriculture
Engineers, v. 36, p. 465-470, 1993.
GIRALDO, G.; TALENS, P.; FITO, P.; CHIRALT, A. Influence of sucrose solution
concentration on kinetics and yield during osmotic dehydration of mango. Journal
of Food Engineering, Great Yarmouth, v. 58, n. 1, p. 33-43, 2003.
GONTARD, N.; DUCHEZ, C.; CUQ, J-L.; GUILBERT, S. Edible composite films of
wheat and lipids: water vapor permeability and other physical properties.
International Journal of Food Science and Technology, v. 29, p. 39-50, 1995.
GONTARD, N.; GUILBERT, S. Bio-Packaging: Technology and properties of
edible and/or biodegradable material of agricultural origin. Boletim SBCTA, v. 30,
n. 1, p. 3-15, 1996.
GOODRIDGE, C. F.; BEAUDRY, R. M.; PESTKA, J. J.; SMITH, D. M. Solid phase
microextraction-gas chromatography for quantifying headspace hexanal above
freeze-dried chicken myofibrils. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v.
51, n. 15, p. 4185-4190, 2003.
GOODWIN, T. W. Biosynthesis of carotenoids: an overview. Methods in
Enzymology, v. 214, p. 330, 1993.
GRISI, C. V. B.; SILVA, L. T.; CABRAL-ALBUQUERQUE, E. C.; DRUZIAN, J. I.
Evaluation of the viability of incorporating natural antioxidants in bio-based
packagings. Nova Science Publishers - Food Chemistry Research
Developments, v. 1, p. 1-11, 2008.
59
HAYASHI, A.; VEIGA-SANTOS, P.; DITCHFIELD, C.; TADINI, C. C. Investigation
of Antioxidant Activity of Cassava Starch Biobased Materials. VI International
Symposium on Future of Food Engineering, Warsaw, Poland, in CD. 2006.
HENRIQUE, C. M.; CEREDA, M. P.; SARMENTO, S. B. S. Características Físicas
de Filmes Biodegradáveis Produzidos a partir de Amidos Modificados de
Mandioca. Revista Ciência e Tecnologia de Alimentos, v. 28, n. 1, p. 23-240.
2008.
HERALD, T. J.; HACHMEISTER, K. A.; HUANG, S.; Bowers, J. R. Corn zein
packaging materials for cooked turkey. Journal of Food Science, n. 61, p. 415418, 1996.
HYMAVATHI, T. V.; KHADER, V. Carotene, ascorbic acid and sugar content of
vacuum dehydrated ripe mango powders stored in flexible packaging material,
Journal of Food Composition and Analysis, v. 18, p. 181-192, 2005.
IBGE, 2010. Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística. Disponível em:
<htpp://www.ibge.com.br>. Acessado em: 20/01/2011.
ITAL. Instituto De Tecnologia De Alimentos, Embalagens plásticas
flexíveis: principais polímeros e avaliação de propriedades, Apostila, 2002,
267p.
JARDINI, F. A.; MANCINI-FILHO, J. Avaliação da atividade antioxidante em
diferentes extratos da polpa e sementes da romã (Punica granatum, L.). Revista
Brasileira de Ciências Farmacêuticas, v. 43, p. 137-147, 2007.
JEON, Y.; KAMIL, J. Y. V. A.; SHAHIDI, F. Chitosan as an edible invisible film for
quality preservation of herring and atlantic cod. Journal of Agricultural and Food
Chemistry. Whashington, v. 50, n. 18, p. 5167-5178, 2002.
JEONG, S. M.; KIM, S. Y.; KIM, D. R.; JO, S. C.; NAM, K. C.; AHN, D. U.; LEE, S.
C. Effect of heat treatment on the antioxidant activity of extracts from citrus peels.
Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 52, n. 11, p. 3389-3393, 2004.
JORGE, N.; GONÇALVES, L. A. G. Aditivos utilizados em óleos e gorduras de
frituras. Boletim da Sociedade Brasileira de Ciência e Tecnologia de
Alimentos, Campinas, v. 32, n. 1, p. 40-47, 1998.
KAUR, C.; KAPOOR, H. C. Antioxidants in fruits and vegetables - the millennium´s
health. International Journal of Food Science and Technology, v. 36, n. 7, p.
703- 725, 2001.
KHACHIK, F.; BEECHER, G. R.; SMITH, J. C. Jr. Lutein, lycopene and their
oxidative metabolites in chemoprevention of cancer. Journal of Cellular
Biochemistry, v. 22, p. 236-246, 1995.
60
KIM, B. S.; HRKACH, J. S.; LANGER, R. Biodegradable photo-crosslinked poly
(ether-ester) networks for lubricious coatings. Biomaterials, v. 21, p. 259-265,
2000.
KRINSKY, N. I.; JOHNSON, E: J. Carotenoid actions and their relation to health
and disease. Molecular Aspects of Medicine, v. 26, p. 459-516, 2005.
KROCHTA, J. M.; MULDER-JOHNSTON, C. Edible and biodegradable polymer
films: Challenges and opportunities. Food Technology, v. 51, n. 2, p. 61-73,
1997.
LAWTON, J. W. Effect of starch type on the properties of starch containing filmes.
Carbohydrate Polymers, v. 29, p. 203-8, 1996.
LDB. Legislação e Decretos sobre o Biodiesel. Resolução ANP n° 42, de 24 de
novembro
de
2004.
Disponível
em:
<http://www.biodieselbr.com
/biodiesel/legislacao/legislacaobiodiesel.htm>. Acesso em 18/10/2010.
LEE, K. W.; KIM, Y. J.; LEE, H. J.; LEE, C. Y. Cocoa Has More Phenolic
Phytochemicals and a Higher Antioxidant Capacity than Teas and Red Wine.
Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 51, p. 7292-7295, 2003.
LEE, D. S. Packaging containing natural antimicrobial or antioxidant agents. In:
Han JH (Ed.) Innovations in food packaging. Baltimore, Elsevier Science and
Technology Books, p. 108-123, 2005.
LIMA, M. A. C.; SILVA, L.; AZEVEDO, S. S. N. Evolução de indicadores do ponto
de colheita em manga 'Tommy Atkins' durante o crescimento e a maturação, nas
condições do vale do São Francisco, Brasil. Lavras, Ciência e Agrotecnologia, v.
33, n. 2, 2009.
LIN, S. S. Fats and oils oxidantion. In: WAN, P.J. (Ed) Introduction to fats and
oils tehnology. Champaign: AOCS.,v. 12, p. 211-231, 1991.
MACHADO, C. X. Tomate: O papel do licopeno na proteção antioxidante. 2005,
65 p. Monografia conclusão de curso (Graduação em Ciências Biológicas) –
Universidade Federal do Rio Grande do Sul. Porto Alegre.
MAIA, L. H.; PORTE, A.; SOUZA, V. F. Filmes comestíveis: Aspectos gerais,
propriedades de barreira a umidade e oxigênio. Boletim do Centro de Pesquisa
de Processamento de Alimentos – B. CEPPA, v. 18, n. 1, p. 105-128, 2000.
MAJO, D; GIAMMANCO, M.; LA GUARDIÃ, M.; TRÍPOLI, E.; GIAMMANCO, S.;
FINOTTI, E. Flavanones in Citrus fruit: Structure antioxidant activity relationships.
Food Research International, v. 38, p. 1161-1166, 2005.
MALI, S.; GROSSMANN, M. V. E.; GARCÍA, M. A.; MARTINO, M. N.; ZARITZKY,
N. E.; Barrier, mechanical and optical propierties of plasticized yam starch films.
Carbohydrate Polymers, v. 56, p. 129-135, 2004.
61
MALI, S.; GROSSMANN, M. V. E.; GARCÍA, M. A.; MARTINO, M. N.; ZARITZKY,
N. E. Filmes de amido: produção, propriedades e potencial de utilização. Semina:
Ciências Agrárias, Londrina, v. 31, n. 1, p. 137-156, 2010.
MANACH, C.; SCALBERT, A.; MORAND, C.; RÉMÉSY, C.; JIMÉNEZ, L.
Polyphenols: food sources and bioavailability. The American Journal of Clinical
Nutrition, Bethesda, v. 79, n. 5, p. 727-47, 2004.
MARINI, L. J.; GUTKOSKI, L. C.; ELIAS, M. C.; MEZZOMO, N. Efeito da
Secagem Intermitente na Estabilidade de Grãos de Aveia. Brazilian Journal of
Food Technology, v. 8, n. 3, p. 260-267, 2005.
MARTIN-POLO, M.; MAUGUIN, C.; VOILLEY, A Hydrophobic films and their
efficiency against moisture transfer. I. Influence of the preparation technique.
Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 40, n. 3, p. 407-412, 1992.
MARTINEZ-TOME, M. Antioxidant properties of Mediterranean spices compared
with common food additives. Journal of Food Protection, v. 64, n. 9, p. 14121419, 2001.
MARTINEZ-VALVERDE, I.; PERIAGO, M.J.; ROS, G. Significado nutricional de
los compuestos fenólicos de La dieta. Archives Latinoamerican of Nutrition.,
Caracas, v.50, n.1, p.5-18, 2000.
MELEIRO-AZEVEDO, C. H. Análise de carotenóides em alimentos brasileiros por
Cromatografia Líquida de Alta Eficiência – Espectrometria de massa. 2003. p.
267. Tese (Doutorado em Ciencia de Alimentos) - Universidade Estadual de
Campinas, Campinas-SP.
MELO, E. A.; MACIEL, M. I. S.; LIMA, V. L. A. G.; ARAÚJO, C. R. Teor de
fenólicos totais e capacidade atioxidante de polpas congeladas de frutas.
Brazilian Journal of Food and Nutrition, v. 19, n. 1, p. 67-72, 2008.
MERCADANTE, A. Z.; RODRIGUEZ-AMAYA, D. B. Effects of ripening, cultivar
differences, and processing on the carotenoid composition of mango. Journal
Agricultural and Food Chemistry, v. 46, p. 128-130, 1998.
MERCADANTE, A. Z.; ENGELAND, E.S. Carotenoids Handbook, 1st ed.;
Britton, G., Liaaen-jensen, S., Pfander, H., Eds.; Birkhauser: Basel, Switzerland,
2004.
MIRANDA, M. Z.; EL-DASH. A. Farinha Integral de Trigo Geminado:
Características Nutricionais e Estabilidade ao Armazenamento. Ciência e
Tecnologia de Alimentos, v. 22, n. 3, p. 216-223, 2002.
NACZK, M.; SHAIDI, F. Phenolics in cereals, fruits and vegetables: occurrence,
extraction and analysis. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis,
v. 41, p. 1523-1542, 2006.
NAYAK, P. L. Biodegradable polymers: opportunities and challenges.
Macromolecular Chemistry and Physics, v. 39, n. 3, p. 481-505, 1999.
62
NEWALL, C. A.; ANDERSON, L. A.; PHILLIPSON, J. D. Herbal medicines.
London: The Pharmaceutical Press, 1996. 296 p.
OLSON J. A. Carotenoids and human health. Archivos Latinoamericanos de
Nutrición, v. 49, n. 3, p. 7-11, 1999.
OUSSALAH, M.; CAILLET, S.; SALMIÉRI, S.; SAUCIER, L.; LACROIX, M.
Antimicrobial and Antioxidant Effects of Milk Protein-Based Film Containing
Essential Oils for the Preservation of Whole Beef Muscle. Journal of Agriculture
and Food Chemistry, n. 52, p. 5598–5605, 2004.
PARANÁ - Secretaria da Agricultura e do Abastecimento do Paraná. Erva-mate:
prospecção tecnológica da cadeia produtiva. Curitiba: SEAB, p. 121, 2000.
PARK, H. J.; CHINNAN, M. Gas and water vapor barrier properties of edible films
from protein and cellulosic materials. Journal of Food Engeneering, v. 25, n. 4,
p. 497-507, 1995.
PASSOTO, J. A.; PENTEADO, M. V. C.; MANCINI-FILHO, J. Activity of βcarotene and vitamin A. A comparative study with synthetic antioxidant. Food
Science Technology, v. 18, n. 3, p. 624-632, 1998.
PESCHEL, W.; SANCHEZ-RABANEDA, F.; DIEKMANN, W.; PLESCHER, A.;
GARTZIA, I.; JIME´NEZ, D. An industrial approach in the search of natural
antioxidants from vegetable and fruit wastes. Food Chemistry, v. 97, n.1, p. 137150, 2006.
PHAN THE, D.; DEBEAUFORT, F.; VOILLEY, A.; LUU, D. Biopolymer Interactions
Affect the Functional Properties of Edible Films Based on Ágar, Cassava Starch
and Arabinoxylan Blends. Journal of Food Engineering, v. 90, p. 548-558, 2009.
PINTO, A. C. Q. A produção, o consumo e a qualidade da manga no Brasil.
Revista Brasileira de Fruticultura, v. 24, n. 3, 2002.
PURIFICAÇÃO, S. L. C.; MACHADO, A. S.; SANTOS, R. P. J.; RODRIGUES, R.
C.; FERRO, A. A. Utilização de Agente Complexante na Purificação da Glicerina
Bruta Oriunda da Produção de Biodiesel. III Congresso Brasileiro de Mamona,
Salvador, Bahia, 2008.
RAMALHO, V. C.; JORGE, N. Antioxidantes utilizados em óleos, gorduras e
alimentos gordurosos. Química Nova, v. 29, n. 4, p. 755-760, 2006.
RAMARATHNAM, N.; OSAWA. T.; OCHI, H.; KAWAKISHI S. The contribution of
plant food antioxidants to humans health. Food Science & Nutrition, v. 6, n. 3, p.
75-82, 1995.
RIBEIRO, M. A.; BERNARDO-GIL, M. G.; ESQUÍVEL, M. M. Melissa officinalis, L.:
study of antioxidant activity in supercritical residues. Journal of Supercritical
Fluids, v. 21, n. 1, p. 51-60, 2001.
63
ROBARDS, K.; PRENZLER, P. D.; TUCKER, G.; SWATSITANG, P.; GLOVER, W.
Phenolic compounds and their role in oxidative processes in fruit. Food
Chemistry, v. 66, n. 4, p. 401-436, 1999.
ROCHA, J. E. R.; CASTRO, L. B. Y.; DORNELLES L.; KAMT, R. A.;
SCHNEIDER, R. C. S.; FILHO, W. A. S. “Perspectivas, Versatilidade e Tecnologia
Aplicada ao Aproveitamento do Glicerol, Co-produto da Produção de Biodiesel”.
5º Congresso Brasileiro de Plantas Oleaginosas, Óleos, Gorduras e Biodiesel,
2008, Lavras, MG. Anais... Minas Gerais, 2008.
RODRIGUES, T. A. F. Preparação e caracterização de membranas
biodegradáveis. 2008. 105p. Dissertação (Mestre em Engenharia Química e
Bioquímica) - Faculdade de Ciências e Tecnologia da Universidade Nova de
Lisboa, Lisboa.
RODRIGUEZ-AMAYA, B. D. A Guide to Carotenoids Analysis in Foods.
Washington, D.C.: International Life Science Institute Prece, p. 2-14, 1999.
RODRIGUEZ-AMAYA, B. D. Carotenoids and food preparation: the retention
of provitamin A carotenoids in prepared, processed, and stored foods.
Arlington, U.S. Agency for International Development, 1997. 88p.
ROJO, R. H.; SÃO JOSÉ, A. R.; HOJO, E. T. D.; ALVES, J. F. T.; REBOUÇAS, T.
N. H.; DIAS, N. O. Qualidade de manga 'Tommy Atkins' pós-colheita com uso de
cloreto de cálcio na pré-colheita. Revista Brasileira Fruticultura, Jaboticabal, v.
31, n. 1, p. 62-70, 2009.
ROSA, D. S., FILHO, R. P. Biodegradação: um ensaio com polímeros,
Itatiba: Editoras Moara e Universitária São Francisco, 2003.
ROSSO, V. V.; MERCADANTE, A. Z. Identification and Quantification of
Carotenoids, By HPLC-PDA-MS/MS, from Amazonian Fruits. Journal of
Agriculture and Food Chemistry, n. 55, p. 5062-5072, 2007.
ROVELLINI, P.; CORTESI, N.; FEDELI, E. Ossidazione dei lipid. Nota 1. La
Rivista Italiana delle Sostanze Grasse, v. 74, n. 5, p. 181-189, 1997.
RYU, S. Y.; RHIM, J. W.; ROH, H. J.; KIM, S. S. Preparation and Physical
Properties of Zein-Coated High-Amylose Corn Starch Film. Lebensmittel
Wissenchaft und Technologie, London, v. 35, n. 8, p. 680-686, 2002.
SALMIERI, S.; LACROIX, M. Physicochemical properties of alginate/
polycaprolactone-based films containing essential oils. Journal of Agricultural
and Food Chemistry, n. 54, p.10205-10214, 2006.
SARANTÓPOULOS, C. I. G. L.; OLIVEIRA, L. M.; PADULA, M.; COLTRO, L.;
ALVES, R. M. V.; GARCIA, E. E. C. Embalagens plásticas flexíveis: principais
polímeros e avaliação de propriedades. 1. ed. Campinas: CETEA/ITAL, p. 267
2002.
64
SARMENTO, A. L. S. C. Elaboração e caracterização de biofilmes a partir de
gelatina reticulada. 1999, 145 p. Dissertação (Mestrado em Engenharia de
Alimentos), Universidade Estadual de Campinas, FEA, Campinas-SP.
SCALBERT, A.; WILLIAMSON, G. Dietary intake and bioavailability of
polyphenols, Nutrition Journal, v. 130, p. 2073-2085, 2000.
SCHIEBER, A.; ULLRICH, W.; CARLE, R. Characterization of polyphenols in
mango puree concentrate by HPLC with diode arry and mass spectrometric
detection. Innovative Food Science & Emerging Technology, v. 1, p. 161-166,
2000.
SHAHIDI, F.; JANITHA, P. K.; WANASUNDARA, P. D. Phenolic antioxidants.
Food Science and Nutrition, v. 32, n. 1, p. 67-103, 1992.
SCHLEMMER, D. Preparação, caracterização e degradação de blendas de
poliestireno e amido termoplástico usando glicerol e óleo de buriti (Mauritia
flexuosa) como plastificantes. 2007. 94 f. Dissertação (Mestrado em Química)Universidade de Brasília, Brasília, 2007.
SHIMAZU, A. A.; MALI, S.; GROSSMANN, M. V. E. Efeitos plastificante e
antiplastificante do glicerol e do sorbitol em filmes biodegradáveis de amido de
mandioca. Semina: Ciências Agrárias, Londrina, v. 28, n. 1, p. 79-88, 2007.
SILVA, F. A. M.; BORGES, M. F. M.; FERREIRA, M. A.; Métodos para avaliação
do grau de oxidação lipídica e da capacidade antioxidante. Química Nova, v. 22,
p. 94, 1999.
SILVA, E. L.; NEIVA, T. J. C.; SHIRAI, M.; TERAO, J.; ABDALLA, D. S. P. Acute
ingestion of yerba mate infusion (Ilex paraguariensis) inhibits plasma and
lipoprotein oxidation. Food Research International, n. 41, p. 973–979, 2008.
SILVA, L. T. Desenvolvimento e avaliação de embalagens biodegradáveis com
ação antioxidante contendo café e cacau. 2009. 148p. Dissertação (Mestrado em
Ciência de Alimento) – Faculdade de Farmácia, Universidade Federal da Bahia,
Salvador – BA.
SIMÕES, C. A. M.; SCHENKEL, E. P.; GOSMANN, G.; MELLO, J. C. P.; MENTZ,
L. A.; PETROVICK, P. R. Farmacognosia da planta ao medicamento. 3. ed.
Porto Alegre/Florianópolis: UFRGS/UFSC, p. 833, 2001.
SOARES, S. E. Ácidos fenólicos como antioxidantes. Revista de Nutrição, v. 15,
n. 1, p. 71-81, 2002.
SOARES. N. F. F.; SILA, W. A.; PIRES, A. C. S.; CAMILLOTO, G. P.; SILVA, P.
S. Novos desenvolvimentos e aplicações em embalagens de alimentos. Revista
Ceres, n. 4, p. 370-378, 2009.
SOBRAL, P. J. A. Propriedades funcionais de gelatina em função da espessura.
Ciência e Engenharia, Uberlândia, v. 8, n. 1; p. 60-67, 1999.
65
SOOBRATTEE, M. A.; NEERGHEEN, V. S; LUXIMON-RAMMA, A.; ARUOMA, O.
I.; BAHORUN, T. Phenolics as potential antioxidant therapeutic agents:
Mechanism and actions. Mutation Research, v. 579, n. 1, p. 200-213, 2005.
SOUSA, C. M. M.; SILVA, H. R.; VIEIRA-JR, G. M.; AYRES, M. C. C.; COSTA, C.
L. S.; ARAÚJO, D. S.; CAVALCANTE, L. C. D.; BARROS, E. D. S.; ARAÚJO, P.
B. M.; BRÃNDAO, M. S.; CHAVES, M. H. Fenóis totais e atividade antioxidante de
cinco plantas medicinais. Química Nova, v. 30, n. 2, p. 351-355, 2007.
SOUZA, C. O; SILVA, L. T.; SILVA, J. R.; LOPEZ, J. A.; VEIGA-SANTOS, P.;
DRUZIAN, J. I. Mango and Acerola Pulps as Antioxidant Additives in Cassava
Starch Bio-based Film. Journal of Agriculture and Food Chemistry, v. 1, n. 1,
2011.
STRATTON, S.P.; SCHAEFER, W.H.; LIEBLER, D.C. Isolation and identification
of singlet oxygen oxidation products of -carotene. Chemical Research in
Toxicology, v. 6, p. 542-547, 1993.
TERRA, N. N.; MILANI, L. I. G.; FRIES, L. L. M.; URNAU, D.; CIROLINI, A.;
SANTOS, B. A. Extrato de erva-mate (Ilex paraguariensis) como antioxidante, em
carne de peru submetida a tratamento térmico. Higiene Alimentar, n. 22, p. 189193, 2008.
THARANATHAN, R. N. Biodegradable films and composite coatings: past, present
and future. In: Food Science and Technology, v. 14, n. 3, p. 71–78, 2003.
TRIGUEIRO. I. N. S.; PENTEADO, M. V. C. Características físicas, químicas e
estado de oxidação de óleos de dendê brasileiros. Boletim do Centro de
Pesquisa de Processamento de Alimentos, v. 11, n. 2, 1993a.
TRIGUEIRO. I. N. S.; PENTEADO, M. V. C. Mudanças nos teores de alfa e beta
caroteno em óleo de dendê durante o armazenamento a temperatura
ambiente (26ºC). Boletim do Centro de Pesquisa de Processamento de
Alimentos, vol. 11, n. 1, 1993b.
VEIGA-SANTOS, P.; VILPOUX, O.; CEREDA, M. P. Possíveis usos da fécula
de mandioca. Critérios de qualidade. Botucatu: Cerat/Unesp, p. 25, 1994.
VEIGA-SANTOS, P.; OLIVEIRA, L. M.; CEREDA, M. P.; ALVES, A. J.;
SCAMPARINI, A. R. P. Mechanical properties, hydrophilicity and water activity of
starch-gum films: Effect of additives and deacetylated xanthan gum. Food
Hydrocolloids, v. 19, p. 341-349, 2005.
VEIGA-SANTOS, P.; OLIVEIRA, L. M.; CEREDA, M. P.; SCAMPARINI, A. R. P.
Sucrose and inverted sugar as plasticizer: Effect on cassava starch–gelatin film
mechanical properties, hydrophilicity and water activity. Food Chemistry, v. 103,
p. 255-262, 2007.
66
VERMEIREN, L.; DEVLIEGHERE, F.; VAN BEEST, M.; KRUIJF, N.; DEBEVERE,
J. Development in the active packaging of food. Trends in Food Science &
Tecnology, v. 10, n. 3, p. 77-86, 1999.
WOLLERDORFER, M.; BADER, H. Influence of natural fibers on the mechanical
properties of biodegradable polymers. Industrial Crops and Products, v. 8, p.
105-112, 1998.
WOLLGAST, J.; ANKLAM, E. Polyphenols in chocolate: is there a contribution to
human health. Food Research International, v. 33, p. 449-459, 2000.
WORARATPHOKA, J; INTARAPICHET, K.; INDRAPICHET, K. Phenolic
compounds and antioxidative properties of selected wines from the northeast of
Thailand. Food Chemistry, v. 104, n. 4, p. 1485-1490, 2007.
WU, J.; WANG, P.; CHEN, S. C. Antioxidant and antimicrobial effectiveness of
catechin-impregnated pva–starch film on red meat. Journal of Food Quality, v.
33, n. 6, p. 780-801, 2010.
XIE, L.; HETTIARACHCHY, N. S.; JU, Z. Y.; MEULLENET, J.; WANG, H.;
SLAVIK, M.F.; JANES, M. E. Edible film coating to minimize eggshell breakage
and reduce post-wash bacterial contamination measured by dye penetration in
eggs. Journal of Food Science, v. 67, n. 1, p. 280-284, 2002.
YOSHIGA, A. Estudo do composto PVC reciclado/CaCO3 em pastas vinílicas,
2004. 211p. Tese de doutorado em Engenharia - Universidade de São Paulo,
São Paulo, 2004.
YU, L.; DEAN, K.; LI, L. Polymer blends and composites from renewable
resources. Progress in Polymer Science, v. 31, p. 576-602, 2006.
ZHENG, W.; WANG, S. Y. Antioxidant Activity and Phenolic Compounds in
Selected Herbs. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 49, p. 51655170, 2001.
ZULLO, R.; IANNACE, S. The effects of different starch sources and plasticizers
on film blowing of thermoplastic Starch. Correlation among process, elongational
properties and macromolecular structure. Carbohydrate Polymers, v. 77, n. 2, p.
376-383, 2009.
67
Capítulo II
Incorporação de polpa de manga e extrato de erva-mate como aditivos
antioxidantes em filmes biodegradáveis a base de fécula de mandioca.
68
CAPÍTULO II
Incorporação de polpa de manga e extrato de erva-mate como aditivos
antioxidantes em filmes biodegradáveis a base de fécula de mandioca.
Resumo
Filmes e revestimentos comestíveis são desenvolvidos para interagir
favoravelmente com os alimentos, aumentando sua vida de prateleira. Eles têm
potencial para reduzir o uso de polímeros sintéticos tradicionais e melhorar a
qualidade dos alimentos, controlando a transferência de massa, carreando
ingredientes e melhorando a integridade mecânica e as características dos
alimentos. O objetivo do trabalho foi avaliar o uso de polpa de manga e do extrato
de erva-mate como fontes de compostos ativos quando incorporados como
aditivos em filmes biodegradáveis de fécula de mandioca e plastificante glicerol,
utilizando um delineamento estatístico de superfície de resposta 22 x estrela,
totalizando 11 formulações. O armazenamento do azeite de dendê embalado nos
biofilmes contendo os aditivos (0-20% m/m de polpa de manga e/ou 0-30% m/m
extrato de erva-mate) foi monitorado por 45 dias sob condições de oxidação
acelerada (63%UR/30ºC). Os polifenóis totais (PT), flavonóides totais (FT) e
carotenóides totais (CT) dos filmes e os teores de carotenóides totais (CT), índice
de peróxido (IP), dienos conjugados (DC) e conteúdo de hexanal (HE) do produto
embalado (azeite de dendê) foram monitorados periodicamente. Azeite de dendê
embalado em polietileno de baixa densidade (C1), sem embalagem (C2) e em
biofilmes sem os aditivos antioxidantes (C3), foram utilizados como controles.
Avaliando a interação dos percentuais de redução dos CT, PT e FT das
formulações dos filmes com os aumentos no IP, DC e HE do produto embalado,
observou-se que à medida que aumentam as perdas de CT, PT e FT no filme
ocorre uma redução nos aumentos do IP, DC e HE do produto embalado, e que
quanto maior o percentual de redução dos antioxidantes, menor o aumento da
oxidação, demonstrando assim, que ao invés do produto a embalagem é que está
sofrendo oxidação. A partir do estudo, pode-se concluir que o desenvolvimento de
filmes flexíveis com os aditivos naturais na matriz de amido de mandioca tem uma
ótima ação antioxidante. No entanto, esses resultados foram mais expressivos
com o uso do extrato de erva-mate, porque o gráfico de superfície de resposta
indicou que o ponto de menor aumento do índice de peróxido correspondeu à
concentração máxima de erva-mate incorporada à matriz.
Palavras – chaves: Antioxidante, embalagem ativa, filme biodegradável, manga e
erva-mate.
69
Incorporation of mango pulp and yerba mate extract as antioxidant additives
in edible films based on a cassava starch matrix.
Abstract
Edible films and coatings from biopolimers have been developed to be used as
protective layers and to interact favorably with food products increasing their
estability. They have the potencial to reduce the use of tradicional polymeric
packaging, and to improve food quality by providing a barrier to mass transfer,
carrying food ingredients and/or improving the mechanical integrity or handling
characteristics of foods. The objective of this study was to evaluate the
incorporation the mango pulp and yerba mate aqueous extract as a source of
antioxidants compounds and plasticizer glycerol in cassava starch based edibles
films using a response surface methodology design experiment. The storage of
palm oil packed in films containing additives richs in actives compounds (0-20%
m/m of mango pulp and/or 0-30% m/m extract of yerba mate) was monitored for
45 days under accelerated oxidation (63% UR/30 º C). The total polyphenols (TP),
total flavonoids (TF) and total carotenoids (TC) of films were evaluated, while the
total carotenoids (TC), peroxide index (PI), conjugated diene (CD) and hexanal
(HE) content of the packaged product (palm oil) were also monitored. The same
analysis also evaluated palm oil packed in low density polyethylene films (C1),
palm oil with no package (C2), and palm oil packed in bio-based films without
antioxidants additives (C3), all as controls. Assessing the interaction of the
percentage reduction of TC, TP and TF of the formulations of bio-films with the
increases in PV, CD and HE of the packaged product, it is observed that with
increasing loss of CT, PT and FT in the formulations of bio-films is a reduction in
the increases of IP, DC and HE the packaged product, and that the greater the
percentage reduction of antioxidants, smaller the increase in oxidation, thus
demonstrating that instead of the product, the packaging is the one who is
suffering from the oxidation process. From the study, it can be concluded that the
flexible films developed with naturals additives in cassava starch matrix has a
great antioxidant action. However, those results were more expressive with the
use of yerba mate extract, because the response surface graph indicates that the
point of minimum increase of peroxide index corresponds to the maximum
concentration of yerba mate incorporated to matrix.
Key – words: Antioxidant, active package, bio-based film, mango and yerba mate.
70
1 Introdução
As embalagens convencionais lentamente estão perdendo espaço para as
embalagens “ativas” e “inteligentes” que interagem diretamente com o produto.
Por meio dessa interação, essas embalagens podem prolongar a vida-deprateleira dos alimentos, assegurar sua qualidade e proporcionar maiores
informações aos consumidores sobre o estado final do produto quando
comparadas às embalagens convencionais (BRAGA & PERES, 2010).
O crescente interesse em melhorar a qualidade do meio ambiente, aliado
ao acúmulo de lixo não biodegradável, tem incentivado pesquisas em todo o
mundo no sentido de incrementar e desenvolver embalagens biodegradáveis
provenientes de fontes renováveis. As macromoléculas biológicas mais estudadas
para este fim são as proteínas e os polissacarídeos (ex. amido), polímeros
capazes de formar matrizes contínuas e, que através de diversas técnicas de
produção, podem ser transformados em filmes e revestimentos comestíveis e/ou
biodegradáveis (NAIME, 2009; MATTA, 2011).
Filmes flexíveis obtidos a partir de amido de mandioca foram desenvolvidos
com sucesso (VEIGA-SANTOS et al., 2005a,b; VEIGA-SANTOS et al., 2007). O
uso do plastificante glicerol em filmes de amido possibilita uma maior
porcentagem de alongamento aos biofilmes (VEIGA-SANTOS et al., 2005a),
melhorando a viabilidade do material, além de representar um grande impacto
científico devido à capacidade atual de produção mundial e nacional de glicerina
vegetal.
O caráter comestível, biodegradabilidade e o aumento da segurança
alimentar são os três principais benefícios dos filmes comestíveis ativamente
funcionais. Entre os diversos tipos de filmes ativos, um dos principais sistemas, é
o usado como embalagens com ação antioxidante, que retardam ou diminuem o
processo de oxidação do produto embalado (ROONEY, 1995; BRODY, 2001;
OLIVATI, 2006). Esse sistema consiste na incorporação de substâncias
antioxidantes em filmes plásticos, papéis ou sachês, de onde serão liberadas para
proteger os alimentos da degradação oxidativa, inibindo as reações de oxidação
ao interagirem com radicais livres e peróxidos (GRISI et al., 2008; SOUZA et al.,
2011).
71
Tal característica é de grande importância para a indústria, principalmente
as do ramo alimentício, já que a rancificação é um processo que limita o tempo de
conservação de muitos alimentos, implicando no aparecimento de sabores e
odores anômalos e redução no valor nutritivo do alimento (FUKUMOTO &
MAZZA, 2000; LOULI et al., 2004; ATOUI et al., 2005) .
Devido ao potencial efeito toxicológico relacionado ao uso prolongado de
antioxidantes sintéticos, existe um crescente interesse na substituição destes por
antioxidantes naturais para uso tanto na embalagem quanto no alimento.
Compostos antioxidantes naturais têm sido isolados de diferentes partes de
plantas tais como sementes, frutas, folhas e raízes, cujas atividades têm sido
comprovadas. Esses compostos ativos incluem flavonóides, ácidos fenólicos,
terpenos, tocoferóis vitaminas C, E, carotenóides (KAUR & KAPOOR, 2001;
RIBEIRO et al., 2001; ALBU et al., 2004; BROINIZI et al., 2007).
Dentre as frutas a manga constitui uma importante fonte de fitoquímicos
antioxidantes, destacando-se os polifenóis e os carotenóides (MELO et al., 2008).
Dentre as plantas a erva-mate apresenta em sua composição química sais
minerais,
vitaminas,
aminoácidos,
saponinas
triterpênicas,
alcalóides
(metilxantinas como cafeína, teobromina e teofilina), açúcares e compostos
fenólicos como flavonóides (quercetina e rutina), ácido clorogênico e taninos
(NEWALL et al., 1996; FILIP et al., 2000), sendo que sua propriedade antioxidante
se deve, principalmente, aos compostos fenólicos.
A utilização desses aditivos na elaboração de um filme que além de
biodegradável pode, também, apresentar ação antioxidante, agregaria valor a
matérias-primas produzidas em alta escala no Brasil.
O objetivo do trabalho foi avaliar a eficácia da incorporação de polpa de
manga e extrato de erva-mate como aditivos antioxidantes para filmes
biodegradáveis à base de um biopolímero comestível, pelo monitoramento das
alterações químicas da embalagem e do produto embalado durante o
armazenamento.
72
2 Materiais e Métodos
2.1 Materiais
Foram utilizados, fécula da mandioca (doado pela Cargill Agrícola SA),
Glicerol P. A. (Labsynth, Diadema - SP), azeite de dendê (doado por ODELSA
S/A) e polpa de manga e erva-mate adquiridas em supermercados e casas de
produtos naturais, respectivamente, em Salvador-Ba.
2.2 Preparação dos Biofilmes
Os filmes foram desenvolvidos por um delineamento estatístico de
superfície de resposta, com um modelo de ordem (22) contendo 4 pontos axiais
(1,41), 4 pontos ortogonais e 3 pontos centrais, totalizando 11 formulações.
Para preparação da solução filmogênica, inicialmente foi utilizado um
extrato aquoso de erva-mate obtido através da percolação de 2 litros de água
destilada a 70°C sobre o pó de erva-mate (0-30% de pó de erva-mate, g/100 g),
para extração ótima e preservação de compostos antioxidantes (BRAVO et al.,
2007). Os filmes foram preparados segundo a técnica casting, onde inicialmente,
dissolveu-se no extrato aquoso de erva-mate, a polpa de manga (0-20% g/100g), a fécula de mandioca (4%, g/100g) e o agente plastificante Glicerol P. A.
(1%, g/100g) (GRISI et al., 2008; SOUZA et al., 2011).
Posteriormente, a solução foi aquecida até a temperatura de gelatinização
do amido, 70C, sob agitação constante. A solução filmogênica foi pesada em
Placas de Petri de poliestireno e desidratada em estufa com circulação de ar
(35 2C) por 18 a 20 horas. Os biofilmes obtidos foram acondicionados
(60%UR, 23°C) em dessecadores contendo solução saturada de nitrato de
magnésio, por 2 dias, antes de serem caracterizados e utilizados para embalar o
azeite de dendê, conforme adaptação da metodologia proposta por VEIGA SANTOS & SCAMPARINI (2004).
Para evitar, ou ao menos minimizar alterações dos carotenóides oriundos
da polpa de manga que foram incorporados aos biofilmes, durante o
73
armazenamento do produto embalado, as amostras foram mantidas sob
temperatura controlada e ao abrigo da luz.
Foram utilizados como controles: o produto sem embalagem, embalado em
sacos plásticos de polietileno de baixa densidade (PEBD) e o produto embalado
em filmes de fécula de mandioca, sem a adição dos agentes antioxidantes.
2.3 Moldagem dos Biofilmes
As diferentes formulações dos biofilmes foram usadas para embalar azeite
de dendê, na forma de sacos retangulares de dimensões 5 x 2 cm (10cm2), para
investigar o comportamento do antioxidante contido na embalagem durante
armazenamento (0, 7, 15, 30 e 45 dias), sob condições de oxidação acelerada
(63%UR, 30°C) (ANEXO IV). A selagem do azeite de dendê nos biomateriais foi
feita com uma seladora de bancada Sulpack SM 300 Light de temperatura
contínua (40°C por 3 minutos). Os biofilmes foram produzidos, estocados e
analisados, sob o abrigo de luz, para que não houvesse interferência nos
resultados.
2.4 Monitoramento da Estabilidade do Produto Embalado nos
Biofilmes e nos Controles durante Armazenamento
A estabilidade oxidativa do azeite de dendê em resposta a ação
antioxidante dos biofilmes foi monitorada por 45 dias, através de determinações
do índice de peróxido, teor de hexanal, teor de dienos conjugados e teor de
carotenóides totais.
2.4.1 Índice de Peróxidos (IP)
O IP do produto embalado nos biofilmes e dos controles foi determinado
por titulometria de acordo com a metodologia da AOAC Cd 8b-90 (2000) nos dias
0, 7, 15, 30, 45, 60 e 90.
74
2.4.2 Teor de Hexanal (HE)
A determinação do teor de HE do produto embalado nos dias 0 e 45 foi
realizada por cromatografia gasosa (CG) e detecção por espectrometria de
massas (CG – EM, Perkin Elmer, Clarus 500, acoplado a Headspace Perkin
Elmer, Turbomatrix) através de adaptação da metodologia proposta por
AMSTALDEN et al., (2001). Duzentas miligramas de azeite de dendê foram
pesados em um vial de headspace de 15 mL e, em seguida, foram selados
utilizando tampa de alumínio e
septo de teflon. A amostra foi aquecida em
headspace, a 140°C por 30 minutos. A separação foi realizada em coluna WaxFFAP (50m x 0,20mm x 0,30µm) com fluxo de hélio de 1mL/minuto. O injetor
operou a 180°C, e a coluna em uma programação de temperatura que teve início
a 35°C, permanecendo por 1 minuto, subindo 3°C por minuto, até 80°C
aumentando, 7°C por minuto até 160°C, totalizando 50 minutos de corrida. O
espectrômetro de massas operou com ionização de impacto de elétrons e energia
de ionização de 70eV. O Espectro de massas foi coletado em um intervalo de 50
a 300 m/z. O HE foi identificado por comparação dos tempos de retenção dos
picos da amostra e do padrão, e através do espectro de massas obtido em
comparação com espectros da biblioteca NIST. A quantificação foi feita através de
uma curva de calibração obtida com padrão externo, onde o padrão de HE da
marca Vetec, foi dissolvido em óleo de soja isento do analito e injetado nas
mesmas condições das amostras.
2.4.3 Teor de Dienos Conjugados (DC)
A determinação do teor de DC do produto embalado nos dias 0 e 45 foi
realizada por espectrofotometria, de acordo com a metodologia descrita pela
AOCS (1993). Para tal, 0,2 mg de azeite de dendê foram pesados em um balão
volumétrico de 10 mL. Aproximadamente, 5 mL de isooctano P.A foram
adicionados ao balão, que foi agitado até a dissolução completa da amostra. Em
seguida o volume do balão foi aferido com isooctano, repetindo o processo de
agitação. A absorbância foi medida a 233nm em um espectrofotômetro UV/VIS,
75
Perkin Elmer / U-2001. Os resultados foram expressos em percentual (%)
calculados de acordo com a equação 1.
DC ( %) = 0,84 (A/bc) – K0
(Equação 1)
Onde:
DC = Dienos Conjugados
K0 = Absortividade para ácidos graxos (0,03)
A = Absorbância da leitura (233nm)
b = Tamanho da cubeta (cm)
c = concentração (g/L)
2.4.4 Teor de Carotenóides Totais (CT)
Para a determinação do teor de CT do produto embalado, uma amostra de
0,3 g de azeite de dendê foi pesada em balão volumétrico de 10 mL,
posteriormente adicionou-se 5 mL de éter de petróleo para dissolução da
amostra. O volume do balão foi completado com éter de petróleo e agitado
durante 5 minutos. A absorbância foi medida utilizando-se um espectrofotômetro
UV/VIS, Perkin Elmer / U-2001 no comprimento de onda de absorção máxima
(435 nm). O cálculo do teor de CT foi realizado de acordo com a Lei de Beer
como proposto por DAVIES, (1976), conforme equação 2 (PASSOTO et al.,
1998).
Abs .Vol .10 4
CT ( g .g ) 
( A1% .1cm) .Wg
1
(Equação 2)
Onde:
CT = Carotenóides totais;
Abs = Absorbância max. (nm);
Vol = Volume da diluição (mL);
A1% .1 cm = Valor do coeficiente de Absortividade;
Wg = Peso da amostra (g).
76
2.5 Monitoramento da estabilidade dos aditivos incorporados nas
diferentes formulações de biofilmes durante armazenamento do produto
embalado
A estabilidade dos antioxidantes nos biofilmes foi monitorada por 45 dias,
através dos teores de Carotenóides Totais, Polifenóis Totais e Flavonóides Totais.
Foi também avaliado o teor destes compostos na polpa de manga e na erva-mate
usados como aditivos.
2.5.1 Teor de Carotenóides Totais
Utilizou-se o método descrito por SILVA & MERCADANTE (2001), para a
extração dos pigmentos. De aproximadamente 2 g dos aditivos e das diferentes
formulações dos biofilmes armazenados por 0, 7, 15, 30 e 45 dias foi realizada a
extração dos CT com acetona e hyflo-supercel. À medida que os CT foram
extraídos com acetona, essa foi filtrada a vácuo em um funil de buchner, até total
remoção dos pigmentos. Em seguida o extrato filtrado foi transferido para um funil
de separação contendo éter de petróleo onde se realizou a lavagem do extrato
com água. Após a lavagem, ao extrato foi adicionado sulfato de sódio anidro para
remoção de resíduo de água. O extrato lavado foi então concentrado em
evaporador rotativo (34±2ºC) a pressão reduzida (90 rpm).
Em seguida,
transferiu-se o extrato de carotenóides para um balão volumétrico e o volume foi
aferido com éter de petróleo. A leitura da absorbância foi realizada em
espectrofotômetro UV/VIS, Perkin Elmer / U-2001, no comprimento de onda de
absorção máxima (440nm). O cálculo do teor de CT foi realizado de acordo com a
Lei de Beer como proposto por DAVIES, (1976), conforme equação 2.
2.5.2 Teor de Polifenóis Totais (PT)
O teor de PT dos aditivos e dos biofilmes formulados e armazenados por 0,
7, 15, 30 e 45 dias, foi determinado por espectrofotometria, utilizando reagente
Folin-Ciocateu, conforme descrito por SWAIN & HILLIS (1959) e citado por
ROESLER et al., (2007). Para tal, 100 mg das amostras previamente
77
desengorduradas com éter de petróleo, foram extraídas com 10 mL de água
destilada, através de agitação por 5 minutos em vortex. As amostras foram então
centrifugadas por 3 minutos em uma centrífuga Eppendorf, a 5 °C e 4400 rpm. 0,5
mL do sobrenadante foi pipetado para um tubo de 10 mL. Em seguida foi
adicionado 2,5 mL de reagente Folin-Ciocalteu (10%). Após 3 minutos, foram
adicionados 2 mL de solução 7,5% de carbonato de sódio. A mistura foi colocada
em banho-maria a 50°C por 5 minutos, e então foi imediatamente resfriada em
banho de gelo, a fim de interromper a reação. A absorbância foi medida a 760nm
em espectrofotômetro UV/VIS, Perkin Elmer / U-2001 e a quantificação realizada
através de uma curva de padrão externo, obtida de diluições sucessivas de uma
solução padrão de ácido gálico.
2.5.3 Teor de Flavonóides Totais (FT)
Para a determinação do teor de flavonóides totais dos aditivos e dos
biofilmes, foi utilizado o mesmo sobrenadante obtido no método de polifenóis
totais. Na qual, 1 mL da amostra final foi transferida para um balão volumétrico de
10 mL contendo previamente 4 mL de água destilada. Foram adicionados 0,3 mL
de nitrito de sódio 5 %, após exatos 5 minutos, foram adicionados 0,3 mL de
cloreto de alumínio 10% e após 1 minuto foi adicionado 2 mL de hidróxido de
sódio 1M. O volume do balão foi completado com água destilada e agitado
manualmente. A absorbância foi medida a 510nm e espectrofotômetro em Perkin
Elmer e a quantificação feita através de uma curva de calibração construída pela
diluição de uma solução padrão de epicatequina (LEE et al., 2003).
2.6 Análise Estatística
Utilizando um delineamento de superfície de resposta, o polinômio de
segundo grau (Equação 3) foi calculado pelo programa Statistic 7.0 (Stat Inc,
Minneapolis, MN, USA), para estimar o comportamento da variável dependente,
segundo o modelo gerado. Os dados gerados foram tratados pela ANOVA e
Teste de Tukey para identificar se as alterações nos parâmetros avaliados foram
significativas ao nível de 95% de significância.
78
Y  b0  b1 X 1  b2 X 2  b11 X 1  b22 X 2  b12 X 1 X 2
2
(Equação 3)
2
Onde:
Y = Variável dependente;
X1 e X2 = Variáveis independentes;
b0 = Termo de compensação;
b1 e b2 = Termos lineares;
b11 e b22 = Termos quadráticos;
b12 = Termo de interação entre as variáveis independentes.
Tabela 1. Valores codificados e reais das variáveis independentes (teores de
antioxidantes) do delineamento estatístico das diferentes formulações de
biofilmes de fécula de mandioca.
Valores codificados
Formulações
Valores reais (% m/m)
Polpa de
Erva-Mate
Polpa de
Manga (X1)
(X2)
Manga
F1
-1,00
-1,00
2,90
4,4
F2
-1,00
1,00
2,90
25,6
F3
1,00
-1,00
17,10
4,4
F4
1,00
1,00
17,10
25,6
F5
-1,41
0,00
0,00
15,00
F6
1,41
0,00
20,00
15,00
F7
0,00
-1,41
10,00
0,00
F8
0,00
1,41
10,00
30,00
F9 *
0,00
0,00
10,00
15,00
F10 *
0,00
0,00
10,00
15,00
F11 *
0,00
0,00
10,00
15,00
Erva-Mate
* Pontos centrais.
79
3 Resultados e Discussão
Os aditivos (polpa de manga e extrato de erva-mate) incorporados aos
biofilmes de fécula de mandioca como fonte de compostos ativos, contém
concentrações substanciais de Carotenóides Totais (CT), Polifenóis Totais (PT) e
Flavonóides Totais (FT), com teores próximos e/ou dentro dos limites relatados na
literatura para estas frutas (Tabela 2).
Tabela 2: Concentrações de Carotenóides Totais (CT) (µg/g), Polifenóis Totais
(PT) (mg/g) e Flavonóides Totais (FT) (mg/g) na Polpa de Manga e no Extrato
Aquoso de Erva-Mate.
Valores obtidos
Parâmetros
Polpa de
Manga
Extrato de
ErvaMate
Carotenóides
Totais
50,17
8,04
Polifenóis
Totais
35,00
140,2
Flavonóides
Totais
Valores referenciais
Polpa de
Manga
7,90 a 36,5
Extrato de
ErvaMate
Fontes
SILVA (2001);
FONTES (2002);
ROSSO (2006);
9,40 a 30,90
TORQUES
(1997);
LEPREVOST
(1987)
KUSKOSKI et. al.,
0,90 a 40,44 79,00 a 185,1 (2006);CAMPOS
(1996)
3,87
50,00
2,72 a 4,52
66,36
KUSKOSKI et. al.,
(2006);NEWALL
et al., (1996);
BRAVO et al.,
2007
3.1 Monitoramento da estabilidade dos aditivos incorporados nas
diferentes formulações dos filmes durante armazenamento do produto
embalado
Os efeitos da incorporação das quantidades de polpa de manga (0-20%
m/m) e extrato de erva-mate (0-30% m/m) nos filmes à base de amido de
mandioca estão apresentados na Tabela 1 e Figura 1. Os teores de PT, FT e CT
80
incorporados à matriz, variaram de 39,22 a 178,53mg/g, 10,38 a 62,54mg/g e 6,42
a 48,10 µg/g, respectivamente (ANEXO III)
Figura 1: Reduções nos teores de Carotenóides Totais (CT) (µg/g), Polifenóis
Totais (PT) (mg/g) e de Flavonóides Totais (FT) (mg/g) dos biofilmes, após 45
dias de estocagem.
81
Os resultados no dia 0 de armazenamento mostraram que a formulação
F1, que contém as menores concentrações dos aditivos (2,9% de polpa de manga
e 4,4% de extrato de erva-mate), apresentaram baixos teores de PT (43,41 mg/g),
FT (23,24 mg/g) e CT (21,15 µg/g). A formulação F4 que contém as maiores
concentrações de ambos os aditivos (17,10% de polpa de manga e 25,6% de
extrato de erva-mate), apresentou altos teores de PT (145,33 mg / g), FT (59,92
mg/g) e CT (40,56 µg/g) (Figura 1). Cabe salientar que essas formulações
apresentaram os menores (F1) e maiores valores (F4) de PT, FT e CT, quando
comparadas os valores dos três parâmetros em conjunto.
No entanto, a amostra com a maior concentração do aditivo erva-mate (F8)
(10% de polpa de manga e 30 % extrato de erva-mate) apresentou o maior valor
de PT (178,53 mg/g) e de FT (62,54 mg/g), dentre todas as amostras,
provavelmente devido aos valores de TP e TF do extrato de erva-mate ser
superior ao da polpa de manga (Tabela 2).
Comportamento semelhante foi observado quando comparados os valores
de CT, em que a formulação F6 (20% de polpa de manga e erva-mate 15% de
extrato) apresentou a mais alta concentração (48,10 µg/g), seguido pela
formulação F4 (17,1% de polpa de manga e 25,6% de extrato de erva-mate), com
40,56 µg/g (Figura 1, Tabela 1), devido à concentração de carotenóides na polpa
de manga ser superior ao do extrato de erva-mate (Tabela 2).
Quando comparadas as formulações contendo apenas polpa de manga
(F7) e somente extrato de erva-mate (F5), observou-se que a F7 apresentou
maiores concentrações de CT (34,22 µg/g), enquanto F5 apresentou maiores
valores de PT (87,76 mg/g) e de FT (47,91 mg/g) (Figura 1). Esses resultados
sugerem que as formulações com os maiores teores de PT e FT (F8) ou as que
possuem os maiores valores dos três parâmetros em conjunto (F4) também
resultaram nas melhores ações antioxidantes.
As 11 formulações de biofilmes de fécula de mandioca com diferentes
teores dos aditivos foram usadas para armazenar azeite de dendê sendo
monitoradas nos dias 7, 15, 30 e 45 dias de armazenamento a 30ºC e 63%UR
(Tabela 3).
Após 45 dias de armazenamento, as amostras das formulações de
biofilmes apresentaram perdas significativas nos PT, FT e CT (Figura 2, Tabela 3,
82
ANEXO III), demonstrando que mesmo após este período de armazenamento os
compostos ativos dos aditivos permaneceram viáveis nos biofilmes.
A formulação F1 apresentou a menor redução no conteúdo de PT, FT e CT
em conjunto, após 45 dias de armazenamento do produto embalado (22,33 mg/g,
6,62 mg/g e 6,23 µg/g respectivamente). A formulação F8 apresentou a maior
redução de PT e FT (25,55 mg/g e 17,11 mg/g, respectivamente) (Figura 1,
Tabela 3), após 45 dias de armazenamento. A amostra F6 apresentou a maior
redução no conteúdo de CT (11,67 µg/g) após 45 dias (Figura 1, Tabela 3). Estes
resultados indicam que, quanto maiores as concentrações de aditivos, maiores as
perdas de compostos antioxidantes durante armazenamento. Comparando as
formulações F7 e F5 após os 45 dias de armazenamento, observa-se que a
formulação F7 apresentou uma menor redução no conteúdo de PT (22,10 mg/g) e
FT (9,95mg/g) do que F5 (23,92 mg/g e 10,52 mg/g, respectivamente) (Tabela 3).
A formulação F5 apresentou uma menor redução no conteúdo de CT (6,20 µg/g)
quando comparado à formulação F7 (6,51 µg/g), (Figura 1, Tabela 3).
Todos os parâmetros avaliados nos biofilmes (PT, FT e CT) apresentaram
uma diminuição gradual ao longo do armazenamento do produto embalado por 45
dias, e os decréscimos mais acentuados foram constatados entre 0 e 7º dia de
armazenamento do azeite de dendê (Figura 2). A incorporação de aditivos
naturais à embalagem biodegradáveis já foi realizada. GRISI et al., (2008) ao
embalar óleo de soja com biofilmes contendo o fruto do dendê e azeite de dendê
como aditivos antioxidantes, após 90 dias de armazenamento relatam uma perda
no teor de carotenóides dos biofilmes variando de 79,90-99,60%.
SILVA (2009), ao embalar azeite de dendê em biofilmes contendo pó de
cacau e extrato de café, relatou que todas as amostras apresentaram perdas nos
teores de polifenóis e flavonóides totais variando de 15,70-34,98% e de 16,5032,76%, respectivamente, indicando que, mesmo após 45 de estocagem, parte
dos compostos antioxidantes permanecem estáveis nos biofilmes.
SOUZA et al., (2011) avaliaram o comportamento do azeite de dendê
embalado em filmes a base de fécula de mandioca, plastificantes e incorporados
com polpas de manga e de acerola como fontes de compostos ativos. A partir do
estudo foi verificado que após 45 dias de armazenamento, as formulações de
biofilmes apresentaram perdas nos CT, PT e VC variando de 24,53 a 43,60%,
17,80 a 36,12% e 69,50 a 85%, respectivamente.
83
Tabela 3: Redução nos dos teores de Polifenóis Totais (PT) em mg/g e em percentual, de Flavonóides Totais (FT) em mg/g (em
percentual) e de Carotenóides Totais (CT) em µg/g (em percentual) das 11 formulações de biofilmes durante armazenamento do
produto embalado nos intervalos 0 - 7, 0 - 15, 0 - 30 e 0 - 45 dias.
Biofilmes
Adição
Antioxidante
*F
F1
F2
F3
F4
F5
F6
F7
F8
F9(c)
F10(c)
F11(c)
Redução PT mg/g (%)
Redução FT mg/g (%)
Redução CT µg/g (%)
X1(%)
X2 (%)
0-7
0-15
0-30
0-45
0-7
0-15
0-30
0-45
0-7
0-15
0-30
0-45
-1,00
(2,90)
-1,00
(2,90)
1,00
(17,10)
1,00
(17,10)
-1,41
(0,00)
1,41
(20,00)
0,00
(10,00)
0,00
(10,00)
0,00
(10,00)
0,00
(10,00)
0,00
(10,00)
-1,00
(4,40)
1,00
(25,60)
-1,00
(4,40)
1,00
(25,60)
0,00
(15,00)
0,00
(15,00)
-1,41
(0,00)
1,41
(30,00)
0,00
(15,00)
0,00
(15,00)
0,00
(15,00)
10,90e
(25,11)
13,54b
(10,80)
11,08a
(16,95)
12,56d
(8,64)
11,98c
(13,65)
11,35b,d
(10,68)
10,67a
(27,21)
13,60d
(7,61)
12,50e,f
(12,55)
12,54c,f
(16,88)
12,43e,f
(13,26)
13,16e
(30,31)
16,24b,c
(12,95)
13,78e
(23,56)
15,26d
(10,50)
14,68b
(16,72)
13,56c
(12,81)
12,93a
(32,96)
16,30c,d
(9,13)
15,40c
(15,46)
15,24c
(20,51)
15,13c
(16,14)
19,15e,f
(44,11)
22,00b,c
(17,54)
19,15a,e
(28,27)
21,25d
(14,61)
20,50b
(23,36)
19,55c,d
(18,47)
18,92f
(48,24)
22,29b,c
(12,48)
21,19e,f
(21,27)
21,23c,f
(28,57)
21,12e,f
(22,53)
22,33e
(51,44)
25,48b
(20,31)
22,98a
(6,16)
24,50d
(16,85)
23,92c
(27,25)
22,71b,d
(21,46)
22,10a
(56,34)
25,55d
(14,31)
24,61e,f
(24,71)
24,45c,f
(32,91)
24,36e,f
(25,99)
1,79e
(7,70)
9,56b
(21,27)
6,64a
(43,26)
11,69d
(19,51)
4,44c
(3,01)
9,92b,d
(21,76)
3,84a
(36,99)
10,07d
(16,10)
4,73e,f
(17,90)
5,63c,f
(20,73)
4,79e,f
(18,23)
3,05e
(13,12)
10,82b,c
(24,07)
7,90e
(51,46)
12,95d
(21,61)
6,70b
(5,63)
11,18c
(24,53)
5,10a
(49,13)
12,33c,d
(19,71)
5,97c
(22,60)
5,02c
(18,48)
6,00c
(22,83)
5,16e
(22,20)
14,22b,c
(31,63)
13,39e
(87,23)
16,19d
(27,01)
9,73b
(11,95)
14,52c
(31,84)
8,18a
(78,80)
15,01c,d
(24,00)
9,25c
(35,02)
10,21c
(37,59)
9,04c
(34,39)
6,62f
(28,48)
16,75b
(37,26)
14,23d
(92,70)
18,25c
(30,45)
10,52b
(21,96)
16,03c,e
(35,16)
9,95a
(95,85)
17,11e
(27,35)
11,19f,g
(42,37)
12,07g
(44,44)
10,94f
(41,62)
1,04a
(4,92)
1,20b
(5,44)
1,42c
(3,59)
5,46d
(13,46)
1,01a
(21,95)
6,00d
(12,47)
1,32c
(3,86)
4,30e
(12,98)
3,95e,f
(11,45)
2,57f
(7,46)
1,86f
(5,38)
1,45a
(6,85)
1,48a
(6,70)
1,76b
(4,45)
5,94c
(14,64)
1,40a
(21,80)
6,48c
(14,14)
1,64b
(4,79)
4,78e
(14,42)
3,97e,f
(11,50)
3,05f
(8,85)
2,13f
(6,16)
5,26f
(24,86)
5,42b
(24,55)
5,64c,d
(14,28)
10,16b,c
(25,04)
5,23e,f
(81,46)
10,70d
(22,24)
5,54a,e
(16,18)
9,97b,c
(30,09)
8,17f
(23,68)
7,27f
(21,09)
6,35f
(18,37)
6,23a
(29,45)
6,39b
(28,85)
6,61c,e
(16,73)
11,13e
(27,44)
6,20f
(96,57)
11,67c
(24,26)
6,51d
(19,02)
9,00b
(27,17)
9,14f
(26,49)
8,24f
(23,91)
7,32d,f
(21,18)
*F: Formulações. X1 e X2: Concentrações das Polpas de Manga e Erva-Mate na formulação dos biofilmes respectivamente. (c): Pontos Centrais.Valores que
apresentam a mesma letra, numa mesma coluna, não apresentam diferenças significativas (p>0.05) pelo Teste de Tukey.
84
Figura 2: Comportamento das reduções nos teores de Polifenóis Totais (PT) (mg/g), Flavonóides Totais (FT) (mg/g) e
Carotenóides Totais (CT) (µg/g) dos biofilmes durante os 45 dias de armazenamento.
85
Tabela 4: Equações do modelo e R2 (coeficiente de determinação) para a redução de Polifenóis totais (PT) (mg/g), Flavonóides Totais
(FT) (mg/g) e Carotenóides Totais (CT) (µg/g) dos filmes e do Índice de Peróxido (IP, meq / kg) do produto embalado após 45 dias de
armazenamento, X1= polpa de manga, X2= extrato de erva-mate.
Produto Embalado/Biofilme
Parâmetros
Equação
Biofilme
R2
Parâmetros
Equação
R2
3,15 – 0,17X1 + 0,36X12 – 0,73X2 + 0,26X22 + 0,15X1X2
0,98
FT dia7
5,05 + 2,37X1 + 0,6X12 + 2,7X2 + 1,22X22 – 0,68X1X2
0,98
IP dia15
6,21 – 0,17X1 + 0,28X12 -0,57X2 + 0,25X22 + 0,14X1X2
0,98
FT dia15
5,6 + 2,37X1 + 0,85X12 + 2,9X2 + 1,73X22 – 0,68X1X2
0,98
IP dia30
11,69 - 0,23X1 + 0,32X12 -1,42X2 + 0,57X22 +
0,14X1X2
0,98
FT dia30
9,5 + 2,82X1 + 0,6X12 + 2,68X2 + 1,39X22 -1,5X1X2
0,98
IP dia45
23,37- 0,17X1 + 0,36X12- 0,73X2 + 0,26X22 +
0,14X1X2
0,98
FT dia45
11+ 2,46X1 + 0,70X12 + 3,03X2 + 1,33X22 -1,5X1X2
0,98
PT dia7
12,5 – 0,22X1 – 0,39X12 + 1,03X2 – 0,14X22 – 0,3X1X2
0,98
CT dia7
2,6 + 1,35X1 + 0,33X12 + 0,93X2 -,0,03X22 + 0,91X1X2
0,99
PT dia15
15,2 – 0,24X1 – 0,5X12 + 1,16X2 – 0,26X22 – 0,4X1X2
0,98
CT dia15
3,1 + 1,60X1 + 0,1X12 + 1,19X2 – 0,24X22 + 1,09X1X2
0,99
IP dia7
PT dia30
21,2 – 0,3X1 – 0,56X12 + 1,21X2 – 0,27X22 – 0,2X1X2
0,98
CT dia30
7,26 + 1,60X1 + 0,1X12 + 1,19X2 -0,24X22 + 1,09X1X2
0,99
PT dia45
24,4 – 0,25X1 – 0,5X12 + 1,2X2 – 0,3X22 – 0,40X1X2
0,98
CT dia45
8,23 + 1,60X1 + 0,1X12 + 1,19X2 -0,24X22 + 1,09X1X2
0,99
86
O tratamento dos dados experimentais durante estocagem do azeite de
dendê nas diferentes formulações de fécula de mandioca incorporados com os
aditivos polpa de manga e extrato de erva-mate que apresentaram diferença
significativa após 7, 15, 30 e 45 dias de armazenamento (PT, FT e CT),
resultaram em uma equação polinomial de segunda ordem, representada pela
equação modelo para a redução dos Polifenóis Totais (PT mg/g), Flavonóides
Totais (FT mg/g) e Carotenóides Totais (CT µg/g) (Tabela 4, ANEXO I) dos
biofilmes, em função das variáveis polpa de manga (%, X1), extrato de erva-mate
(%, X2) e a interação entre elas (X1 X2).
De acordo com as equações observou-se que a redução na concentração
de PT, FT e CT das formulações dos biofilmes apresentam uma dependência
tanto linear quanto quadrática das concentrações de polpas de manga e de
extrato de erva-mate, assim como, da interação entre ambas as variáveis
independentes (X1X2) (Tabela 4).
As Figuras 3A, 3B e 3C representam os gráficos da superfície de resposta
para a diminuição dos teores de PT, FT e CT dos biofilmes durante após 45 dias
de armazenamento, respectivamente. Observou-se que o efeito combinado de
manga e erva-mate fornece dados que podem ser usados para visualizar os
valores máximos desses parâmetros (TP, TF e TC) nos filmes. Neste caso, há
uma aparente relação linear entre a concentração de erva-mate e o aumento da
concentração dos compostos ativos.
Vale salientar também que os teores de PT oriundos do extrato de ervamate apresentaram uma ação antioxidante maior (24,28 a 61,6%) durante a
estocagem quando comparados aos teores de PT oriundos da polpa de manga,
(8,89 a 23,87%). O mesmo comportamento foi observado para os teores de FT e
o inverso para os teores de CT, entretanto, ambos menos pronunciados quando
comparados a PT (Figura 3, ANEXO I).
87
A
B
C
Figura 3: Superfícies de resposta da redução de Polifenóis Totais (A) (PT)
(mg/g), Flavonóides Totais (B) (FT) (mg/g) e Carotenóides Totais (C) (CT) (µg/g)
dos biofilmes após 45 dias de estocagem do azeite de dendê.
88
3.2 Monitoramento da estabilidade do produto embalado nos biofilmes
e nos controles durante armazenamento
O teor de carotenóides totais (CT) do azeite de dendê embalado foi
monitorado aos 7, 15, 30 e 45 dias (Tabela 5). O Índice de peróxidos (IP) do
azeite de dendê foi monitorado aos 7, 15, 30, 45, 60 e 90 dias, de forma a verificar
melhor as etapas de oxidação: iniciação, propagação e terminação (Figura 4,
Tabela 5, ANEXO III).
Como esperado, após os 45 dias de armazenamento, do produto embalado
nas diferentes formulações de biofilmes apresentou uma diminuição no teor inicial
de carotenóides totais e um aumento no índice de peróxidos. O azeite de dendê
embalado nos biofilmes com os aditivos (polpa de manga e extrato de erva-mate)
apresentou um menor aumento no índice de peróxidos quando comparados aos
apresentados pelo produto embalado com os três controles, indicando a eficácia
da polpa de manga e do extrato de erva-mate como aditivos com ação
antioxidante (Figura4, Tabela 5).
Este efeito pode ser considerado dependente da concentração, porque o
azeite de dendê embalado em F1 (baixas concentrações de ambos os aditivos)
apresentou um maior valor de oxidação (IP = 107,0 meq / kg) em relação ao
azeite embalado em F4 (alta concentração de aditivos) (IP=87,50 meq/kg),
(p<0,05) durante as mesmas condições de armazenamento (Tabela 5).
Quando comparados os resultados das 11 formulações entre si, constatase que o azeite de dendê embalado na formulação F8 apresenta os menores
índices de peróxidos, (86,72 meq/kg) após 45 dias (Tabela 5).
A formulação F7 (somente polpa de manga) apresentou valores do índice
de peróxidos do produto embalado maior (IP= 110,4 meq/kg) que o azeite
embalado em F5 (somente extrato de erva-mate) (IP= 105,47 meq/kg). Isso
mostra um leve efeito protetor maior dos compostos fenólicos existentes em maior
concentração no extrato da erva-mate (Tabela 5).
89
Tabela 5: Aumentos nos teores de Índice de Peróxido (IP) em meq/kg (em
percentual), Hexanal (HE) em mg/mL (em percentual) e de Dienos Conjugados
(DC) em mg/100g (em percentual); e redução de Carotenóides Totais (CT) em
µg/g (em percentual), do azeite de dendê embalado nas diferentes formulações
de biofilmes durante armazenamento nos intervalos 0 - 7, 0 - 15, 0 - 30 e 0 - 45
dias.
Produto Embalado (azeite de dendê)
F
Aumento IP meq/kg (%)
0-7
0-15
0-30
0-45
0-7
0-15
0-30
0-45
0-45
0-45
89,39
(889,16)
133,81
(1333,0)
a
156,69
(1558,1)
a
223,83
(35,10)
a,b
246,66
(38,69)
a
293,67
(46,06)
a
324,06
(50,83)
c
100,56
(1003,1)
a
150,82
(1500,2)
b
170,00
(1690,1)
b
237,50
(37,25)
b
279,77
(43,88)
b
322,13
(50,52)
b
347,08
(54,44)
d
c
c
c
133,48
(1327,7)
154,33
(1536,3)
243,45
(38,31)
c
87,71
(873,31)
287,93
(45,32)
309,72
(48,75)
c,d
e,h,i
a,d
a
78,86
(12,38)
a,e
107,0
(1063,0)
107,1
(16,81)
0,56
(55,77)
c
e,h,i
87,50
(869,43)
42,72
(424,39)
C2
54,04
(538,57)
C3
42,51
(423,26)
F1
20,89
(207,55)
F2
14,23
(141,39)
F3
18,95
(188,05)
F4
14,40
(142,78)
a
b
a,e,f,g
48,73
78,85
(483,15) (783,40)
a,e,f,g
38,70
64,86
(384,53) (644,47)
b,e,g
47,72
(473,55)
g
38,92
(385,91)
e,f
100,86
(1000,8)
e
67,30
(667,32)
f,g,i
87,50
(867,62)
48,17
(477,59)
e,g
46,66
(464,00)
a,e,f,g
50,96
(505,25)
14,00
(138,82)
g
37,89
(375,70)
15,08
(149,64)
e,g
F10(c) 14,46a,e,f,g
(143,68)
18,21
(181,08)
F7
21,63
(214,46)
F8
F9(c)
a,e,f
15,49
(153,88)
d,i
76,74
(761,53)
18,95
(187,88)
F6
e,h,i
d,e
a,e,f,g
F5
c
a,f
e
c
84,91
(841,86)
e
63,42
(628,85)
41,38
(410,63)
e
39,25
(390,00)
c
39,21
(389,52)
75,94
(755,17)
f,g
96,93
(963,90)
d,h,i
110,4
(1094,5)
g
86,72
(859,89)
73,16
(726,00)
g
91,85
(911,48)
69,79f
(693,46)
,g,j
91,64
(910,57)
e,h,j
88,94
(883,56)
f
3,38
(336,66)
a
64,87
(10,50)
a
87,31
(14,14)
d,e
0,37
(36,85)
47,71
(7,61)
d
76,75
(12,23)
a
100,87
(16,08)
d
0,36
(35,85)
d
67,31
(10,84)
a
87,51
(14,10)
d
0,25
(24,90)
a,d
77,60
(12,39)
a
105,4
(16,85)
a,d
75,95
(11,95)
a
96,92
(15,25)
d
0,30
(29,88)
a,d
84,92
(13,56)
a
110,0
(17,64)
d,e
0,40
(39,84)
37,90
(6,10)
a,d
63,43
(10,22)
a
86,71
(13,97)
d
0,31
(30,90)
41,39
(6,59)
a
73,15
(11,66)
a
91,86
(14,64)
d
0,34
(33,86)
d
d
38,93
(6,27)
a,d,e
48,18
(7,69)
d,e
46,65
(7,34)
18,96
(3,02)
18,22
(2,86)
a,d,e
21,64
(3,45)
f
13,99
(2,25)
f
15,09
(2,40)
f,g
c
a,d
d,e,i
f,g
0,83
(82,55)
21,54
(2145,48)
38,69
(6,27)
14,41
(2,32)
105,47
(1045,7)
c
b
d,e
14,24
(2,30)
f
77,59
(769,28)
0,77
(76,22)
48,74
(7,65)
18,96
(3,02)
a,d
b
17,93
(1785,92)
a,e
20,90
(3,28)
d,i
a,c
68,05
(676,03)
214,87
(33,82)
a
Aumento
DC
mg/100g
(%)
a,b
C1
F11(c)
Redução CT µg/g (%)
Aumento
HE
µg/mL
(%)
d,e
d,e
50,97
(8,14)
d,e
d
d
c
0,70
(68,92)
d
0,51
(50,94)
d
0,33
(33,38)
0,40
(39,93)
d
0,37
(37,06)
d
0,37
(36,85)
e
e
e,f
0,36
(35,83)
d
0,44
(43,95)
d
0,55
(54,55)
d
0,32
(32,03)
d
0,38
(37,55)
d
0,40
(46,64)
d
0,39
(42,99)
39,26
(6,36)
a
69,80
(11,30)
a
91,63
(14,84)
d
0,34
(33,86)
d,e
39,22
(6,15)
a
68,04
(10,68)
a
88,95
(13,96)
d
0,35
(34,86)
15,50
(2,43)
b
d
d
14,48
(2,34)
a
e
e,f
e
e
e
e
F: Formulações. (c): Pontos Centrais.
Valores que apresentam a mesma letra, numa mesma coluna, não apresentam diferenças significativas
(p>0.05) pelo Teste de Tukey.
90
Vale salientar também que o azeite de dendê embalado com Polietileno de
Baixa Densidade (C1), o exposto ao ar (sem embalagem, C2), e o embalado na
formulação sem aditivos (C3) após 90 dias passaram pelos 3 estágios oxidativos,
enquanto o azeite de dendê embalado em todas as formulações contando os
diferentes teores dos aditivos permaneceram no estagio de iniciação da oxidação
(Figura 4).
Figura 4: Comportamento do aumento do Índice de Peróxidos (meq/kg) do azeite
de dendê embalados nos biofilmes (F1 a F11) e nos controles, C1 (PEBD), C2
(produto sem embalagem) e C3 (filmes sem aditivos) após 90 dias de
armazenamento.
O IP foi o único parâmetro com diferença estatística significativa (p<0,05)
no monitoramento da estabilidade do produto embalado durante toda a
estocagem (Figura 6 ANEXO I).
Os resultados obtidos podem confirmar outros trabalhos, indicando que a
adição de uma alta concentração de antioxidantes resulta em maior eficácia
antioxidante. Resultados semelhantes foram relatados por GRISI et al., (2008),
91
em que os biofilmes contendo teores máximos de azeite de dendê e fruto do
dendê, resultaram em menores perdas no teor de carotenóides totais do produto
embalado, indicando que as amostras embaladas em biofilmes contendo maiores
teores de antioxidantes apresentam também maior estabilidade contra a
oxidação.
SILVA et. al., (2009) verificaram que após 45 dias de armazenamento do
azeite de dendê embalado com os biofilmes, os que continham as maiores
concentrações dos aditivos antioxidantes cacau e café, apresentaram os menores
índices de oxidação do produto embalado.
SOUZA et. al., (2011) verificaram que no gráfico da superfície de resposta,
o ponto de máximo aumento do IP do azeite de dendê embalado nos biofilmes
corresponde ao de mínima concentração de polpas de manga e de acerola, e o
ponto de mínimo aumento do IP foi o de máxima concentração de ambas as
polpas.
Os
resultados
também
indicaram
que
mesmo
sem
os
aditivos
antioxidantes, os filmes de fécula de mandioca têm um efeito protetor maior da
oxidação do azeite quando comparado aos filmes de PEBD. Estes resultados
mostram que os filmes de fécula de mandioca podem representar uma barreira
mais eficaz ao oxigênio do que os filmes de PEBD (Figura 4, Tabela 5).
Os resultados não apresentaram diferença significativa em relação aos
teores de CT do produto embalado nas diferentes formulações de biofilmes com
incorporação de polpa de manga e extrato de erva-mate (ANEXO I Figura 6). No
entanto, a formulação F8 apresentou as menores perdas em CT do azeite de
dendê, confirmando, portanto, ser mais eficaz na proteção contra a oxidação.
O aumento no Índice de Peróxidos (IP, meq / kg) do azeite de dendê
embalado nas diferentes formulações de biofilmes, apresentou diferença
significativa após 7, 15, 30 e 45 dias de armazenamento (ANEXO I), e resultou
em uma equação polinomial de segunda ordem, em função da incorporação de
diferentes teores de polpa de manga (%, X1) e de erva-mate (%, X2) nos
biofilmes (Tabela 4). O aumento deste parâmetro depende tanto linear quanto
quadraticamente das concentrações de polpas de manga e extrato de erva-mate
e também da interação entre ambas as variáveis independentes (X1X2).
92
A Figura 5 representa o gráfico da superfície de resposta para o aumento
do índice de peróxidos do produto embalado nas diferentes formulações de
biofilmes após 45 dias de armazenamento. O gráfico indica que o ponto de
mínimo aumento de IP corresponde à concentração máxima de erva-mate.
Figura 5: Superfície de resposta do aumento do Índice de Peróxido (IP) (meq/kg)
após 45 dias de armazenamento.
Os teores de Carotenóides Totais, Índice de Peróxidos, Hexanal e Dienos
Conjugados do azeite de dendê embalado nas formulações de biofilmes e nos
controles, após 45 dias de armazenamento, estão comparados na Figura 6.
Os teores de HE e DC do produto embalado nas diferentes formulações de
biofilmes, também não apresentaram diferença significativa (p>0,05) durante
armazenamento (ANEXO I). Entretanto, constata-se que após 45 dias de
estocagem, o produto embalado em todas as formulações de biofilmes com
diferentes incorporações dos aditivos apresentou um menor aumento nos teores
de IP, HE e DC quando comparados com os três controles (p<0,05) (Tabela 4,
Figura 6, ANEXO III, ANEXO V).
93
Figura 6: Teor de Carotenóides Totais (CT) (µg/g), Índice de Peróxidos (IP) (meq/kg), Hexanal (HE) (ug/mL) e
Dienos Conjugados (DC) (mg/100g) do azeite de dendê embalado nas formulações de biofilmes e nos controles, após
45 dias de armazenamento.
94
3.3 Correlações entre os parâmetros das formulações de biofilmes e do
produto embalado durante o armazenamento
Diante dos resultados acima foi possível concluir que provavelmente o extrato
de erva-mate contribui mais para o efeito protetor contra a oxidação, quando
comparado ao efeito da polpa de manga (Tabela 4). No entanto, a interação entre
ambas as variáveis independentes (X1X2) foi um fator significante, demonstrando que
à medida que aumenta a concentração dos compostos ativos incorporados na
embalagem, aumenta a proteção contra a oxidação do produto embalado.
A velocidade de oxidação é acelerada com o aumento da concentração de
oxigênio, e como o mesmo passa primeiro pela matriz polimérica para depois entrar
em contato com o produto embalado, provavelmente, os biofilmes que contém
maiores teores dos antioxidantes reagiram mais com o oxigênio, deixando uma
menor quantidade de oxigênio disponível para reagir com o produto embalado
apresentando, portanto, uma maior porcentagem de perda dos antioxidantes do
biofilme e conseqüente menor oxidação do produto embalado.
A Figura 7 mostra as correlações lineares entre os diferentes parâmetros
avaliados dos biofilmes e do produto embalado ao longo do armazenamento,
juntamente com os valores dos coeficientes de determinação (R2) para os
percentuais de aumento e redução dos parâmetros analisados das formulações dos
biofilmes e do produto embalado.
Os percentuais de redução de CT, FT e PT dos biofilmes são inversamente
proporcionais as diminuições de CT e aos aumentos de IP, HE e DC do produto
embalado. De maneira geral, os PT e FT dos biofilmes apresentam maiores
correlações com esses parâmetros do que os CT (Figuras 7 e 8).
95
Figura 7: Correlações lineares entre percentuais dos parâmetros dos biofilmes: Polifenóis Totais (PT) (mg/g), Flavonóides Totais
(PT) (mg/g) e Carotenóides Totais (CT) (µg/g) vs os dos produtos embalados nas diferentes formulações, após 45 dias de
armazenamento.
96
Isto mais uma vez confirma a maior eficácia dos compostos fenólicos
incorporados aos biofilmes quando comparado aos CT. Portanto, como a ervamate é uma maior fonte de PT e FT do que a polpa de manga (Tabela 2), os
produtos embalados nos biofilmes com os maiores teores deste extrato foram
mais protegidos da oxidação. Quanto mais próximo de 1 é o valor de R2 maior é a
correlação entre as análises, dessa forma, existe uma maior correlação entre a
redução do percentual dos teores de PT e FT do biofilme e o percentual de
aumento do IP do produto embalado (Figura 7 e 8).
Avaliando a interação dos percentuais de redução dos parâmetros
monitorados nas formulações dos biofilmes (CT, PT e FT) com os percentuais de
aumento do IP do produto embalado, observou-se que à medida que aumentam
as perdas de CT, PT e FT nas formulações dos biofilmes ocorre uma redução no
aumento do IP do produto embalado, demonstrando que quanto maiores os
percentuais de redução dos antioxidantes, menor será a oxidação, indicando
assim, que ao invés do produto, o filme é quem está sofrendo oxidação (perda de
compostos ativos) (Figura 8).
Aumento IP - produto
embalado meq/kg
115
110
R² = 0,9452
105
PT
R² = 0,9162
100
FT
95
90
CT
85
R² = 0,7045
80
4
9
14
19
24
29
Parâmetros - biofilmes
Figura 8: Interação dos percentuais de redução dos parâmetros analisados nas
formulações dos biofilmes: Polifenóis Totais (PT) (mg/g), Flavonóides Totais (FT)
(mg/g) e Carotenóides Totais (CT) (µg/g) com a porcentagem de aumento no teor
do IP do produto embalado nas diferentes formulações, após 45 dias de
armazenamento.
97
Portanto, filmes flexíveis comestíveis produzidos pela incorporação de
polpa de manga e de extrato de erva-mate a matriz fécula de mandioca
plastificado
com
glicerol,
podem
combinar ação antioxidante,
alem
de
proporcionar cor característica aos biofilmes devido aos pigmentos presentes,
resultando também em filmes com flavor característico(s) do(s) aditivo(s), devido
a incorporação simultânea de compostos voláteis. As propriedades mecânicas e
de barreira ao vapor de água também podem ser significativamente alteradas
dependendo da quantidade do(s) aditivo(s) incorporado a matriz, e precisam ser
investigadas.
4 Conclusões
A incorporação da polpa de manga e de extrato aquoso de erva-mate em
filmes biodegradáveis comestíveis a base de amido de mandioca e plastificante
glicerol elaborados por casting, contribuiu para a diminuição da oxidação do
azeite de dendê embalado no biomaterial durante os 45 dias de armazenamento.
Os compostos fenólicos, flavonóides e carotenóides desempenharam um papel
importante na ação antioxidante dos biofilmes. Os filmes com maor quantidade de
extrato de erva-mate exibiram propriedades antioxidantes mais eficazes em
relação aos filmes com polpa de manga, sendo a formulação F8 a mais indicada
para embalar o azeite de dendê. Estes resultados sugerem que a inibição da
oxidação por aditivos naturais depende principalmente dos compostos fenólicos.
Novos trabalhos poderão testar o efeito da incorporação dos aditivos
antioxidantes em outros filmes biodegradáveis, ou em matriz de polímeros
sintéticos.
Referências
ALBU, S.; JOYCE, E.; PANIWNIK, L.; LORIMER, J. P.; MASON, T. J. Potential for
the use of ultrasound in the extraction of antioxidants from Rosmarinus officinalis
for the food and pharmaceutical industry. Ultrasonics Sonochemistry, v. 11, p.
261-265, 2004.
AMSTALDEN, L. C.; LEITE, F.; MENEZES, H.C. Identificação e quantificação de
voláteis de café através de cromatografia gasosa de alta resolução/espectrometria
98
de massas empregando um amostrador automático de “headspace”. Ciência e
Tecnologia de Alimentos, v. 21, p. 123-128, 2001.
AOAC. Association of Official Analytical Chemists. Official Methods of Analysis
Cd 8b-90. 2000.
AOCS. American Oil Chemists Society. Official method of analysis Ti 1a-64.
Spectrophotometric determination of conjugated dienoic acid. 1993.
ATOUI, A. K.; MANSOURI, A.; BOSKOU, G.; KEFALAS, P. Tea and herbal
infusions: Their antioxidant activity and phenolic profile. Food Chemistry, v. 89, p.
27-36, 2005.
BRAGA, R. L; PERES, L. Novas tendências em embalagens para alimentos:
revisão. B.CEPPA, Curitiba, v. 28, n. 1, p. 69-84, 2010.
BRAVO, L.; GOYA, L.; LECUMBERRI, E. LC/MS characterization of phenolic
constituents of mate (Ilex paraguariensis, St. Hil.) and its antioxidant activity
compared to commonly consumed beverages. Food Research. Int. n. 40, p. 393405, 2007.
BRODY, A. L. What´s active in Active Packaging. Food Technology, v. 55, n. 9,
2001.
BROINIZI, P. R. B.; ANDRADE-WARTHA, E. R. S.; SILVA, A. M. O.; NOVOA, A.
J. V.; TORRES, R. P.; AZEREDO, H. M. C.; ALVES, R. E.; MANCINI-FILHO, J.
Avaliação da atividade antioxidante dos compostos fenólicos naturalmente
presentes em subprodutos do pseudofruto de caju (Anacardium occidentale L.).
Ciência e Tecnologia de Alimentos, v. 27, n. 4, p. 902-908, 2007.
CAMPOS A. M. Desenvolvimento de extratos secos nebulizados de Ilex
paraguariensis St.Hill. Aquifoliaceae (erva-mate). Porto Alegre, 1996. 149 p.
Dissertação de Mestrado em Ciências Farmacêuticas. Universidade Federal do
Rio Grande do Sul.
DAVIES, B.H. Carotenoids, In: GOODWIN, T.W., Ed. 2. Chemistry and
biochemistry of plant pigments. London: Academic Press, London. p. 38-65, 1976.
FAOSTAT. Food and Agriculture Organization of the United Nations Statistical
Databases. Agricultural Data. 2009. Disponível em: <http://faostat.fao.org
/faostat>. Acesso em: 05/01/2010.
FAVERO, L. A. A Cultura da Manga no São Francisco: Posicionamento,
Limites, Oportunidades e Ações Estratégicas. Banco do Nordeste do Brasil.
Fortaleza - CE. p. 232, 2008.
FILIP, R.; LOLITO, S. B.; FERRARO, G.; FRAGA, C. G. Antioxidant activity of Ilex
paraguariensis and related species. Nutrition Research, v. 20, n. 10, p. 14371446, 2000.
99
FONTES, E. A. F. Cinética de alterações químicas e sensoriais em néctar de
manga (Mangifera indica L. var. Ubá) durante tratamento térmico.2002. 112p.
Tese (Doutorado em Ciência e Tecnologia de Alimentos) – Departamento de
Tecnologia de Alimentos, Universidade Federal de Viçosa, Viçosa - MG.
FUKUMOTO, L. R.; MAZZA, G. Assessing Antioxidant and Prooxidant Activities of
Phenolic Compounds. Journal of Agricultural and Food Chemistry, v. 48, p.
3597-3604, 2000.
GRISI, C. Utilização de derivados do dendê (elais guineesis jaquim) em
embalagens ativas à base de fécula de mandioca com função antioxidante. 2008,
156 p. Dissertação (Mestrado em Engenharia Química) – Escola Politécnica,
Universidade Federal da Bahia, Salvador – BA.
HECK, I.; MEJIA, E. G. Yerba Mate Tea (Ilex paraguariensis): A
Comprehensive Review on Chemistry, Health Implications and Technological
Considerations. J Food Sci. v. 72, n. 9, p. 138-51, 2007.
IBGE, 2010. Instituto Brasileiro de Geografia e Estatística. Disponível em:
<htpp://www.ibge.com.br>. Acessado em: 20/01/2011.
KAUR, C.; KAPOOR, H. C. Antioxidants in fruits and vegetables - the millennium´s
health. Journal of Food Science and Technology, v. 36, n. 7, p. 703-725, 2001.
KUSKOSKI, E. M.; ASUERO, A. G.; MORALES, M. T.; FETT R. Frutos tropicais
silvestres e polpas de frutas congeladas: atividade antioxidante, polifenóis e
antocianinas. Ciência Rural, v. 36, n. 4, p. 1283-1287, 2006.
LEE, K. W.; KIM, Y. J.; LEE, H. J.; LEE C. Y. Cocoa Has More Phenolic
Phytochemicals and a Higher Antioxidant Capacity than Teas and Red Wine.
Journal of Agricultural and Food Chemistry. v. 51, p. 7292-7295, 2003.
LEPREVOST, A. A Química e tecnologia da erva-mate (Ilex paraguariensis
St. Hil.). Boletim técnico n. 53. Curitiba: TECPAR, p. 53, 1987.
LOULI, V.; RAGOUSSIS, N.; MAGOULAS, K. Recovery of phenolic antioxidants
from wine industry by-products. Bioresource Technology, v. 92, p. 201–208,
2004.
MATTA, M. D. J.; SARMENTO, S. B. S.; SARANTÓPOULOS, C. I. G. L.;
ZOCCHI, S. S. Propriedades de barreira e solubilidade de filmes de amido de
ervilha associado com goma xantana e glicerol. Polímeros, v. 2, n.3, p. 11-12,
2011
MELO, E. A.; MACIEL, M. I. S.; LIMA, V. L. A. G.; ARAÚJO, C. R. Teor de
fenólicos totais e capacidade atioxidante de polpas congeladas de frutas.
Brazilian Journal of Food and Nutrition. v. 19, n. 1, p. 67-72, 2008.
100
NAIME, N. A.; PONCE, P.; LUGÃO, A. B. Influência de agentes ativos nas
propriedades mecânicas e de barreira de embalagens biodegradáveis. 10º
Congresso Brasileiro de Polímeros, 2009, Foz do Iguaçu. Anais... Paraná, 2009.
NEWALL, C. A.; ANDERSON, L. A.; PHILLIPSON, J. D. Herbal medicines.
London: The Pharmaceutical Press, 1996. 296 p.
OLIVATI, J. B.; MALI, S.; GROSSMANN, M. V. E. Efeito de embalagem
biodegradável de amido no armazenamento de queijo processado. Semina:
Ciências Agrárias, Londrina, v. 27, n. 1, p. 81-88, 2006.
PASSOTO, J. A.; PENTEADO, M. V. C.; MANCINI-FILHO, J. Activity of βcarotene and vitamin A: A comparative study with synthetic antioxidant. Food
Science Technology, v. 18, p. 624-632, 1998.
RIBEIRO, M. A.; BERNARDO-GIL, M. G.; ESQUÍVEL, M. M. Melissa officinalis, L.:
study of antioxidant activity in supercritical residues. Journal of Supercritical
Fluids, v. 21, n. 1, p. 51–60, 2001.
ROESLER, R.; MALTA, L. G.; CARRASCO, L. C.; HOLANDA, R. B.; SOUSA, C.
A. S.; PASTORE, G. M. Atividade antioxidante de frutas do cerrado. Ciência e
Tecnologia de Alimentos, v. 27, n. 1, p. 53-60, 2007.
ROONEY, M. L. Overview of active food packaging. Active Food Packaging.
London: Blackie Academic & Professional. London, UK. p. 1-37, 1995.
ROSSO, V. V. Composição de carotenóides e antocianinas em acerola.
Estabilidade e atividade antioxidante em sistemas-modelo de extratos
antociânicos de acerola e de açaí. 2006. 154 p. Tese (Doutorado em Engenharia
de Alimentos) - Faculdade de Engenharia de Alimentos, Universidade Estadual de
Campinas, Campinas-SP.
SILVA, S. R. Composição de carotenóides de produtos de maracujá, manga e
açaí. 2001. 160 p. Tese (Doutorado em Engenharia de Alimentos) – Faculdade de
Engenharia de Alimentos, Universidade Estadual de Campinas, Campinas-SP.
SILVA, S. R.; MERCADANTE, A. Z. Composição de carotenóides de maracujáamarelo (Passiflora edulis flavicarpa). Ciência e Tecnologia de Alimentos, v. 22,
n. 3, p. 254-258, 2001.
SILVA, L. T. Desenvolvimento e avaliação de embalagens biodegradáveis com
ação antioxidante contendo café e cacau. 2009. 148p. Dissertação (Mestrado em
Ciência de Alimento) – Faculdade de Farmácia, Universidade Federal da Bahia,
Salvador – BA.
SOUZA, C. O; SILVA, L. T.; SILVA, J. R.; LOPEZ, J. A.; VEIGA-SANTOS, P.;
DRUZIAN, J. I. Mango and Acerola Pulps as Antioxidant Additives in Cassava
Starch Bio-based Film. Journal of Agriculture and Food Chemistry, 2011.
101
SWAIN, T.; HILLIS, W. E. The phenolic constituents of Prunus doméstica: The
quantitative analysis of phenolic constituents. Journal of the Science of Food
and Agriculture, v. 10, p. 63-68, 1959.
TORQUES, S.; ANDROCZEVECZ, S. R. Projeto: estudo preliminar para
caracterização da erva-mate. Araucária, 1997. 32 p.
VEIGA-SANTOS, P.; SCAMPARINI, A. R. P. Indicador irreversível de temperatura
utilizando carboidratos. Patente protocolizada n. 4.315. (INPI). 23/08/2004.
VEIGA-SANTOS, P.; OLIVEIRA, L. M.; CEREDA, M. P.; ALVES, A. J.;
SCAMPARINI, A. R. P. Mechanical properties, hydrophilicity and water activity of
starch-gum films: Effect of additives and deacetylated xanthan gum. Food
Hydrocolloids. v. 19, p. 341-349, 2005a.
VEIGA-SANTOS, P.; SUZUKI, C. K.; CEREDA, M. P.; SCAMPARINI, A. R. P.
Microstructure and color of starch-gum films: Effect of additives and deacetylated
xanthan gum. Part 2. Food Hydrocolloids. v. 19, n. 6, p. 1064-1073, 2005b.
VEIGA-SANTOS, P.; OLIVEIRA, L. M.; CEREDA, M. P.; SCAMPARINI, A. R. P.
Sucrose and inverted sugar as plasticizer. Effect on cassava starch–gelatin film
mechanical properties, hydrophilicity and water activity. Food Chemistry, v. 103,
p. 255-262, 2007.
102
Capítulo III
Caracterização de filmes biodegradáveis a base de fécula de mandioca
e incorporados com polpa de manga e extrato de erva-mate.
103
Capítulo III
Caracterização de filmes biodegradáveis a base de fécula de mandioca e
incorporados com polpa de manga e extrato de erva-mate.
Resumo
Os filmes comestíveis à base de fécula de mandioca obtidos por moldagem ou
“casting” se caracterizam por apresentar pobres propriedades mecânicas e alta
permeabilidade ao vapor de água. Entretanto, o baixo custo e disponibilidade da
matéria-prima no Brasil justificam os esforços para viabiliza-los. O estudo avaliou
o efeito da incorporação de diferentes quantidades de polpa de manga e extrato
de erva-mate como aditivos ativos de biofilmes de fécula de mandioca. A
metodologia utilizada para formular os biofilmes contendo diferentes
concentrações de aditivos, foi o delineamento estatístico de superfície de resposta
22 x estrela, totalizando 11 formulações. O efeito dos aditivos depois de
incorporados a matriz foi avaliado através das análises de sólidos totais,
espessura, permeabilidade ao vapor de água, resistência à tração e percentual de
alongamento. Biofilmes de fécula de mandioca sem os aditivos foram usados
como controle (C). A incorporação dos aditivos provocou mudanças nas
características físico-químicas e mecânicas dos filmes, com variações na
espessura (de -1,77 a +10,62%), nos sólidos totais (de -0,33 a -4,12%), na
umidade (de +2,59 a +32,68%), na permeabilidade ao vapor de água (de -33,26
até +11,05%), na elongação (de -1,31 até -21,53%) e na resistência à tração (de 25,09 até -74,72%). As formulações com as maiores concentrações de polpa de
manga apresentaram o maior percentual de elongação enquanto que à medida
que ocorre um aumento na concentração de extrato de erva-mate incorporados à
matriz, este percentual cai drasticamente até alcançar um valor mínimo. Estes
parâmetros são importantes para entender o comportamento dos biofilmes depois
da adição dos aditivos ativos.
Palavras Chaves: Filmes comestíveis, embalagens de alimentos, propriedades
mecânicas, polpa de manga, erva-mate.
104
Characterization of biodegradable films based on cassava starch and
incorporated with the mango pulp and yerba mate extract.
Abstract
The cassava starch edible films obtained by the casting technique results in poor
mechanical properties and high water vapor permeability. However, their low cost
and availability in Brazil justifies the efforts to make starch a feasible raw material
for biodegradable films production. Biodegradables films have been developed by
adding mango pulp and yerba mate extracts in different concentrations as
antioxidants active compounds to cassava starch based biodegradable films. For
biofilm preparation, a central composite experimental design was used, totalizing
11 samples containing different additives concentration. Cassava starch films
without additives (C), served as controls. The incorporation of additives also
caused changes in the physico-chemical and mechanical properties of films with
variations in thickness (from -1.77 to +10.62%) in total solids (from -0.33 to 4.12%), moisture (from +2.59 to +32.68%), permeability to water vapor (from 33.26 to +11.05%), elongation (from -1.31 to -21, 53%) and tensile strength (from 25.09 to -74.72%). Therefore, the incorporation of the mango pulp extract of yerba
mate in biofilms of cassava starch results in a pronounced protective effect against
lipid oxidation, altering the physico-chemical and mechanical properties of biofilms.
The presence of mango pulp fibers is thought to increase the tortuosity in the
materials leading to slower diffusion processes and, hence, to lower permeability.
The study demonstrated that the properties of cassava starch biodegradable films
can be significantly altered through of mango pulp and yerba mate extracts
incorpored.
Keywords: biodegradable film, food packaging, mechanical properties, mango
pulp, yerba mate.
105
1 Introdução
A conservação de alimentos exige, normalmente, tratamentos físicos ou
químicos para manter ou aumentar a sua vida-de-prateleira. A utilização de
embalagem, rígida ou flexível, é imprescindível, visto que esta tem que agir como
uma barreira entre o ambiente externo e o alimento sem afetá-lo. Atualmente, a
maioria das embalagens flexíveis é produzida com plásticos, isto é, de materiais
sintéticos, que apesar de possuírem excelentes propriedades funcionais, são
consideradas não-biodegradáveis e estão envolvidas em problemas ambientais
(MENDIETA-TABOATA, 2008).
Uma
das
soluções
encontradas
para
amenizar
este
problema,
particularmente na área de embalagens de alimentos, é o desenvolvimento de
filmes ou biofilmes a partir de materiais renováveis que possam substituir os
materiais sintéticos, sendo o amido considerado um polímero com elevado
potencial para produzir biofilmes, por ser de baixo custo, alta disponibilidade, de
fonte renovável e biodegradável. Porém o maior desafio da sua utilização é
substituir as embalagens convencionais mantendo, com a mesma eficácia, a
qualidade do produto, garantindo sua vida de prateleira através do controle de
características mecânicas e de permeabilidade (RIGO, 2006).
A formação de filmes e coberturas comestíveis está baseada na dispersão
ou solubilização dos biopolímeros em um solvente (água, etanol ou ácidos
orgânicos) e a incorporação de aditivos (plastificantes, agentes de ligação, etc.),
obtendo-se uma solução ou dispersão filmogênica. O plastificante tem a finalidade
de reduzir a característica quebradiça do material, reduzindo o número de
interações
entre
as
cadeias
adjacentes
e
aumentando
os
espaços
intermoleculares, enfim, tornando as ligações e interações entre as moléculas
mais
flexíveis,
e
consequentemente,
melhorando
a
característica
de
extensibilidade do filme (CARR, 2007).
Após o preparo da solução filmogênica, estes devem passar por uma
operação de secagem para a formação dos filmes ou coberturas. Nesta etapa,
ocorre o aumento da concentração do biopolímero na solução, devido à
evaporação do solvente, e consequentemente a agregação das moléculas,
levando a formação de uma rede tridimensional (GONTARD et al., 1992).
106
Estes filmes biodegradáveis oferecem algumas vantagens como: poderem
ser consumidos em conjunto com o produto, são capazes de reter compostos
aromáticos, podem carregar aditivos alimentícios ou componentes com atividade
antioxidante, anti-bacteriana ou anti-fúngica e, finalmente, contribuir para minimizar
a poluição ambiental. Porém o seu uso vai depender de suas propriedades
funcionais (barreira à umidade, gases e solutos; solubilidade em água ou lipídeo;
propriedades óticas; características mecânicas e reológicas e propriedades
térmicas) que em princípio, dependem do polímero, do processo de obtenção e
modo de aplicação, do condicionamento e da espessura do filme (VEIGASANTOS et al., 2007).
Os métodos utilizados para a determinação das propriedades dos filmes e
recobrimentos comestíveis são derivados dos métodos clássicos aplicados aos
materiais sintéticos. Entretanto, estes métodos foram adaptados às características
dos biofilmes, particularmente à sua grande sensibilidade à umidade relativa e à
temperatura (GONTARD et al., 1992; CUQ et al., 1998; MOURA, 2008).
Filmes obtidos de amidos, em sua maioria, apresentam boas características
de barreira ao oxigênio, entretanto, uma série de limitações é observada com
relação às suas características hidrofílicas e de permeabilidade ao vapor de água
(CUQ et al., 1998; MATTA, 2011).
As propriedades mecânicas dos biofilmes são características determinantes
para a sua utilização como material de embalagem, devido ao manuseio a que
estão sujeitos os produtos durante sua distribuição e comercialização. As
propriedades funcionais dos biofilmes são fortemente influenciadas pelas
condições de processos, pela formulação e pelo plastificante usado. As
propriedades requeridas para os biofilmes dependem principalmente das
características do produto que será embalado (MOURA, 2008; SANTOS, 2009),
entretanto, baixa permeabilidade ao oxigênio é requerida em produtos sensíveis à
oxidação como gorduras poliinsaturadas. Muitos trabalhos têm sido publicados
utilizando amidos modificados, blendas de amido e polímeros sintéticos ou
compósitos de amido com fibras vegetais, visando melhorar as propriedades
mecânicas dos biomateriais preparados (SANTOS, 2009).
O objetivo do trabalho foi analisar o efeito da incorporação de polpa de
manga e extrato de erva-mate como aditivos antioxidantes em biofilmes
formulados com fécula de mandioca através da avaliação das propriedades físico107
químicas e mecânicas dos mesmos. Um biofilme de fécula de mandioca sem a
adição das polpas foi utilizado como controle.
2 Material e Métodos
2.1 Material
Foram utilizados, fécula da mandioca (doado pela Cargill Agrícola SA),
Glicerol P. A. (Labsynth, Diadema - SP), polpa de manga e erva-mate adquiridas
em supermercados e casas de produtos naturais, respectivamente, em SalvadorBa.
2.2 Preparação dos Biofilmes
Os filmes foram desenvolvidos por um delineamento estatístico de
superfície de resposta, com um modelo de ordem (22) contendo 4 pontos axiais, 4
pontos ortogonais e 3 pontos centrais, totalizando 11 formulações.
Para preparação da solução filmogênica, inicialmente foi utilizado um
extrato aquoso de erva-mate obtido através da percolação de 2 litros de água
destilada a 70°C sobre o pó de erva-mate (0-30% de pó de erva-mate, g/100 g),
para extração ótima e preservação de compostos antioxidantes (BRAVO et al.,
2007). Os filmes foram preparados segundo a técnica casting, onde inicialmente,
dissolveu-se no extrato aquoso de erva-mate, a polpa de manga (0-20% g/100g), a fécula de mandioca (4%, g/100g) e o agente plastificante Glicerol P. A.
(1%, g/100g).
Posteriormente a solução foi aquecida até a temperatura de gelatinização
do amido, 70C, sob agitação constante. A solução filmogênica foi pesada em
Placas de Petri de poliestireno e desidratada em estufa com circulação de ar
(35 2C) por 18 a 20 horas. Os biofilmes obtidos foram acondicionados
(60%UR, 23°C) em dessecadores contendo solução saturada de nitrato de
magnésio, por 2 dias, antes de serem caracterizados conforme adaptação da
metodologia proposta por VEIGA - SANTOS & SCAMPARINI (2004).
Para comparação foi utilizado um controle (C - biofilme de fécula de
mandioca sem os aditivos).
108
2.3 Caracterização Mecânica dos Biofilmes
2.3.1 Espessura
A espessura dos filmes pré-acondicionados (60% UR, 25°C) foi
avaliada através da espessura média, de 6 medições em posições aleatórias, por
meio de micrômetro digital Mitutoyo de ponta plana (com resolução de 1µm), em
triplicata.
2.3.2 Propriedades Mecânicas
O percentual de alongamento (PA) e a resistência à tração (RT) foram
medidas usando uma Máquina Universal de Ensaio, EMIC – Linha DL 20.000
20KN, operando conforme as especificações da ASTM método padrão D882-00
(ASTM, 2001a), de acordo com VEIGA-SANTOS et al. (2005).
Foram cortadas tiras (8 x 2,5 cm) dos filmes sob as condições de préacondicionamento (60% UR, 23C) e montadas entre as garras do equipamento.
A espessura de cada amostra foi medida em quatro pontos, em posições
aleatórias, com um micrômetro digital Mitutoyo de ponta plana. A posição inicial e
a velocidade de separação das garras foram fixadas a 50 mm e 12,5 mm/min,
respectivamente. Sete medidas foram feitas para cada amostra.
Como parâmetro de comparação foram utilizadas tiras (8 x 2,5 cm) de
filmes de fécula de mandioca (sem os aditivos) pré-acondicionados (60% UR,
23°C) nas mesmas condições de análise.
2.3.3 Permeabilidade ao Vapor de Água
A taxa de permeabilidade ao vapor de água dos filmes pré-acondicionados
(75% UR, 23°C) foi medida pelo método gravimétrico de acordo com a ASTM
E104-85 (2001b), modificado por GONTARD et al., (1992). A umidade relativa
fora da câmara foi de 75% (solução saturada de NaCl) e dentro, 0% (sílica seca).
As amostras foram sucessivamente pesadas até que o peso da sílica aumentasse
em 4%. Como o filme de amido é hidrofóbico, utilizou-se um corpo de prova
109
adicional, preparado sem dessecante (branco), que permitiu ser descontada ou
acrescida à variação de peso do material. As análises foram realizadas em
quadriplicata.
A taxa de permeabilidade ao vapor de água (TPVA) foi calculada de
acordo com a equação 1, onde w/t é o coeficiente angular da reta gerada pela
perda de peso da amostra em função do tempo; X, é a espessura e A, é a área do
filme (0,39m2).
TPVA 
(w / t ) . X
A
(Equação 1)
2.3.4 Teor de Sólidos Totais
O teor de sólidos totais das amostras pré-condicionadas (60% UR, 23°C)
foi determinado após 24h de secagem a 105°C (POUPLIN et al., 1999). As
análises foram realizadas em triplicata.
2.4 Análise Estatística
Os valores reais e codificados para as polpas de manga (% m/m; X1) e de
extrato de erva-mate (% m/m; X2) encontram-se na Tabela 1. Como forma de
comparação dos resultados, foi utilizado um biofilme de fécula de mandioca sem a
adição dos antioxidantes como controle (C). Os dados gerados foram tratados
pela ANOVA e Teste de Tuckey para identificar se as alterações nos parâmetros
avaliados foram significativas ao nível de 95% de significância.
110
Tabela 1. Valores codificados e reais do delineamento estatístico das variáveis
independentes (teores de aditivos) incorporados às formulações de biofilmes de
fécula de mandioca, (4 % m/m) e Glicerol, (1 % m/m).
Valores codificados
Formulações
Polpa de
Manga (X1)
Extrato de
Erva-Mate
(X2)
Valores reais (% m/m)
Polpa de
Extrato de
Manga
Erva-Mate
F1
-1,00
-1,00
2,90
4,40
F2
-1,00
1,00
2,90
25,60
F3
1,00
-1,00
17,10
4,40
F4
1,00
1,00
17,10
25,60
F5
-1,41
0,00
0,00
15,00
F6
1,41
0,00
20,00
15,00
F7
0,00
-1,41
10,00
0,00
F8
0,00
1,41
10,00
30,00
F9 *
0,00
0,00
10,00
15,00
F10 *
0,00
0,00
10,00
15,00
F11 *
0,00
0,00
10,00
15,00
* Pontos centrais.
3 Resultados e Discussão
Os resultados para as 11 formulações de biofilmes elaboradas com fécula
de mandioca e diferentes teores de polpa de manga e extrato de erva-mate estão
apresentados na Tabela 2.
Os biofilmes foram elaborados a partir de valores pré-estabelecidos que
os deixaram com espessuras semelhantes entre as diferentes formulações de
biofilmes, que variaram de 0,111mm a 0,125mm. A incorporação dos diferentes
teores dos aditivos na matriz plastificada com glicerol resultou em uma alteração
de -1,77 a +10,62% na espessura dos biofilmes, quando comparados ao controle
(Tabela 2).
SHIMAZU et al. (2007), avaliaram filmes produzidos por casting formulados
com amido de mandioca (3 g/ 100 g de solução filmogênica) e diferentes
111
concentrações de glicerol (0, 5, 10, 15, 30 e 40 g/100 g de amido). Foi verificado
que a espessura dos filmes variou de 0,07 a 0,10 mm; e que filmes sem
plastificante apresentaram espessura de 0,07 mm e, à medida que o teor de
plastificante aumentou, as espessuras dos filmes chegaram a 0,10 mm.
As espessuras de biofilmes formulados com fécula de mandioca, sacarose
e açúcar invertido incorporados com diferentes concentrações de extrato de
dendê e de azeite de dendê (GRISI et al., 2008), ou com cacau e extrato de café
(SILVA, 2009), ou com polpa de manga e de acerola (SOUZA et al., 2011),
variaram de 0,125 a 0,160 mm, de 0,113 a 0,143 mm, e 0,123mm a 0,141mm,
respectivamente, sem diferenças significativas entre as diferentes formulações.
GENNADIOS et al., (1996), desenvolveram biofilmes à base de ovoalbumina com
concentrações variáveis de plastificante, e constataram que as espessuras
variaram de 0,098 a 0,103 mm.
As variações nos teores de sólidos totais apresentaram valores limites de
85,14% a 88,51%, com reduções entre 0,33 a 4,12% em relação ao filme sem os
aditivos (Tabela 2).
SOUZA et al., (2011) constataram variações significativas nos teores de
sólidos totais de biofilmes formulados com fécula de mandioca incorporados com
diferentes quantidades de polpa de manga e acerola, e entre as formulações e o
controle, com valores limites de 80,24% a 84,97%.
GRISI (2008) e SILVA (2009), não constataram diferenças significativas
nos teores de sólidos totais de biofilmes formulados com fécula de mandioca
incorporados com diferentes quantidades de extrato de dendê e azeite de dendê,
e com diferentes teores de cacau e café, respectivamente.
112
Tabela 2: Médias (± desvio padrão) das análises de caracterização das formulações de biofilmes e controle (C). E (espessura mm); ST (sólidos totais - %); Umidade (%) e TPVA, (permeabilidade ao vapor de água - gH2O.µm/m2.h.mmHg).
F
E ± dp
Alteração1
(%)
F1
0,115± 0,24 a
+1,77
85,14 ± 0,45 a
-4,12
14,86 ± 0,92 a
+32,68
9,55 x 10-8 ± 0,74d
+11,05
F2
0,117 ± 0,35 a,b
+3,54
85,99 ± 0,48 a
-3,16
14,01 ± 0,61 b
+25,09
6,52 x 10-8 ±0,3 a,b
-24,19
+10,62
87,63 ± 1,34
c
-1,32
12,37 ± 1,62
c
ST ± dp
Redução1
(%)
Umidade ± dp
Aumento1
(%)
TPVA ± dp
Alteração1
(%)
b,c
+10,45
6,01 x 10 ± 1.75
b
-30,23
-8
F3
0,125± 0,21
F4
0,120 ± 0,63 c, d
+6,19
88,23 ± 1,45 d
-0,64
11,77 ± 1,43 c
+5,09
5,75 x 10-8 ± 0,63a
-33,14
F5
0,114 ± 0,21 a
+0,88
85,20 ± 0,54 a
-4,02
14,80 ± 0,96 a
+32,14
6,86 x 10-8 ± 1,46 b
-20,23
F6
0,111 ± 0,81 a
-1,77
88,51 ± 0,52 d
-0,33
11,49 ± 0,74 c
+2,59
5,74 x 10-8 ± 0,37 a
-33,26
F7
a
-0,89
86,43 ± 1,36
b
-2,67
13,57 ± 1,54
b
0,112 ± 0,17
+21,16
7,10 x 10 ± 0,38
b
-17,44
-8
F8
0,118 ± 0,38 b,d,e
+4,42
87,35 ± 1,85 c
-1,63
12,65 ± 0,65 b,c
+12,95
7,70 x 10-8 ± 0,63b
-10,47
F9 *
0,122 ± 0,52 c, e
+7,96
86,88 ± 0,14 b
-2,16
13,12 ± 1,32 b
+17,14
7,84 x 10-8 ± 1,47b, c
-8,84
F10 *
0,121 ± 0,19 c, e
+7,08
86,85 ± 1,96 b
-2,20
13,15± 0,99 b
+17,41
7,88 x 10-8 ± 0,06c
-8,37
+9,73
b
-2,18
b
+17,32
7,85 x 10 ± 0,51
-8,72
-
8,60 x 10-8 ± 0,53 d,b
-
c
F11 *
0,124 ± 0,38
C
0,113 ± 0,83 a
-
86,86 ± 0,26
88,80 ± 0,27 d
-
13,14 ± 1,06
11,20 ± 0,34 c
-8
c
Formulações (F); * Pontos Centrais; Controle (C).
1
Alteração, Aumento ou Redução em relação ao controle C.
Valores que apresentam a mesma letra, numa mesma coluna, não apresentam diferenças significativas (p>0,05) pelo Teste de Tukey a 95% de confiança.
113
De maneira geral, segundo teste de Tukey, as formulações com as maiores
concentrações dos aditivos apresentaram diferenças significativas para os
parâmetros espessura, sólidos totais, umidade e permeabilidade ao vapor de
água, quando comparadas ao controle (Tabela 2). Para esses mesmos
parâmetro, pela análise ANOVA, as diferenças entre as formulações não foram
estatisticamente significativas (ANEXO II).
A Tabela 3 mostra os valores de umidade e sólidos totais da polpa
industrializada de manga e do extrato de erva-mate que foram incorporados aos
biofilmes, bem como, os valores relatados na literatura. Pode-se constatar na
Tabela 2 que os aditivos possuem diferenças nos teores de sólidos totais o que
resulta na variação constatada nos sólidos totais e na umidade (aumentos de 2,59
a 32,68%) das formulações de biofilmes, dependendo dos teores de cada aditivo
incorporado a matriz.
Tabela 3: Teores de Umidade (%) e Sólidos Totais (%) da polpa industrializada
de manga e do extrato de erva-mate incorporados aos biofilmes.
Valores obtidos
Parâmetros
Extrato
Polpa de
de ErvaManga
mate
Valores referenciais
Polpa de
Manga
Extrato de
Erva-mate
Umidade
86,64
93,14
82,11 a 86,5
92,51 a 93,95
Sólidos
Totais
13,36
6,86
13,50 a 17,89
6,05 a 7,49
Fontes
SALGADO et. al.,
(1999); TACO
(2006); CAMPOS
(1996)
SALGADO et. al.,
(1999); TACO
(2006); CAMPOS
(1996)
Para biofilmes obtidos a partir de purê de manga sem adição de
plastificantes, o teor de sólidos totais médio foi de 92,04% ± 1,22, enquanto que a
espessura média variou de 0,170 ± 0,02mm (SOTHORNVIT & RODSAMRAN,
2008).
O
valor
da
permeabilidade
variou
de
5,74x10-8
a
9,55
x10-8
gH2O.µm/m2.h.mmHg dependendo da formulação de biofilme, enquanto o
114
controle (C) apresentou um valor de 8,6 x 10-8 gH2O.µm/m2.h.mmHg (p<0,05). A
formulação F1 apresentou um aumento de 10,62% neste parâmetro se
comparado ao filme sem os aditivos. Com exceção da formulação F1, em que
houve a mínima incorporação dos aditivos (2,9% m/m de polpa de manga e
4,40% m/m de extrato de erva-mate), as demais formulações apresentaram uma
redução da permeabilidade a vapor de água entre 8,37 a 33,26% quando
comparados ao controle (biofilme sem os aditivos), (Tabela 2).
Estes resultados podem ser explicados pela natureza hidrofílica tanto da
fécula de mandioca, quanto das fibras oriundas da polpa de manga (AVÉROUS et
al., 2000). Segundo SALGADO et. al., (1999), a concentração de fibra alimentar
na polpa de manga é de 2,58 ± 0,28 (% g). A redução nos valores de
permeabilidade ao vapor de água leva a alterações na estrutura dos biofilmes
devido à adição de fibras insolúveis que diminuem os espaços livres na matriz
polimérica dificultando a passagem do vapor através da matriz (MULER et al.,
2008).
SOTHORNVIT & RODSAMRAN (2008), relatam uma alta taxa de
permeabilidade ao vapor de água para filmes de manga, quando comparados a
filmes obtidos de outras frutas, provavelmente devido ao maior teor de fibras.
A adição de 75 mg de ácido ferrúlico em biofilmes de amido e quitosana
reduzem a permeabilidade ao vapor de água, quando comparado com o biofilme
sem ácido ferrúlico, e ao aumentar para 100mg, a permeabilidade foi reduzida a
um valor inferior ao apresentado pelo controle (MATHEW & ABRAHAM, 2008).
Os gráficos de Pareto para as variáveis independentes (percentuais de
polpa de manga e de extrato de erva-mate) não mostraram efeito significativo das
funções quadráticas, lineares ou da interação de ambos aditivos sobre as
variáveis dependentes, sólidos totais, espessura, umidade e TPVA (taxa de
permeabilidade ao vapor de água) dos biofilmes (Anexo II).
As formulações e o controle também foram analisados quanto à elongação
e resistência a tração (Figura 1, Tabela 4).
115
Figura 1: Comportamento da deformação (%) e de resistência à tração (MPa) do
controle (C) e das formulações para 7 medidas.
116
Continuação Figura 1.
117
Analisando-se os resultados de porcentagem de alongamento (Figura 1,
Tabela 4), é possível observar que as formulações com as maiores concentrações
de polpa de manga (F6, F3), apresentaram o maior percentual de elongação
dentre as formulações (69,36%, 69,15%), respectivamente. Ou seja, quanto maior
a adição de polpa de manga maior o percentual de alongamento. Este fato pode
ser comprovado quando comparadas as porcentagens de elongação da
formulação F7 (somente polpa de manga) (65,28%) que resultou maiores valores
em comparação com a F5 (somente extrato de erva-mate) (55,15%), (Tabela 4,
Figura 1).
Entretanto, à medida que ocorre um aumento na concentração de extrato
de erva-mate incorporados à matriz, este percentual cai drasticamente até
alcançar um valor mínimo nas amostras F2, F4 e F8 (55,98%, 59,58%, 55,50%),
respectivamente (Tabela 4, Figura 1).
Quando comparadas com o controle, todas as formulações apresentaram
menores percentuais de alongamento (entre 1,31 a 21,53% de redução), e da
resistência a tração (reduzida entre 25,09 a 74,72%), demonstrando que a
incorporação dos aditivos promove uma diminuição dos percentuais destes
parâmetros dos biofilmes (Tabela 4). Resultados semelhantes foram obtidos por
GRISI (2008), ao incorporar derivados de dendê em biofilmes à base de fécula de
mandioca, ou seja, o controle apresentou um maior percentual de alongamento
quando comparado às formulações com os aditivos.
Observa-se que a incorporação dos aditivos nas maiores concentrações
(F4), resulta em uma diminuição da resistência à tração (1,36%), quando
comparado com as formulações com menores concentrações de aditivos (F1)
(4,03%). Quando comparadas com o controle C, todas as formulações também
apresentaram valores inferiores (Figura 1, Tabela 4). Os teores de polpa
incorporados à matriz e os valores de resistência a tração dos biofilmes
apresentam uma correlação linear (R2=50,60%), enquanto que, entre este
parâmetro e os teores de extrato de erva-mate foram menores (R2=0,17%).
SOUZA et al., (2011) e SILVA (2009) relataram resultados similares para a
incorporação de altas concentrações de polpas de manga e acerola, e de cacau e
café, respectivamente, a biofilmes de fécula de mandioca, resultando em uma
menor resistência a tração quando comparado a concentrações menores e ao
controle.
Tabela 4: Parâmetros mecânicos das formulações dos biofilmes e do controle:
resistência à tração e porcentagem de alongamento.
F*
Porcentagem de
elongamento ±dp (%)
Redução1
(%)
Resistência à
tração ±dp (MPa)
Redução1
(%)
F1
56,67a± 2,44
19,37
4,03c±1,23
25,09
F2
55,98a± 1,34
20,35
2,37a±1,53
55,95
F3
69,15 c±1,94
1,61
2,47a± 2,18
54,09
F4
59,58 b± 1,53
15,22
1,36b± 1,34
74,72
F5
55,15 a± 1,95
21,53
2,67a± 2,19
50,37
F6
69,36c± 2,17
1,31
2,04a,b± 1,47
62,08
F7
65,28c± 1,32
7,11
2,57a± 2,43
52,23
F8
55,50a± 1,38
21,03
2,00 a,b± 2,14
62,83
F9
57,38b±2,17
18,36
1,37 b ± 2,18
74,54
F10
58,01 b ± 1,04
17,46
1,38 b ± 1,04
74,35
F11
57,94b± 2,19
17,56
1,37 b ± 1,32
74,54
C
70,28 d± 2,28
-
5,38 d±2,14
-
* Formulações
C (biofilme sem adição dos aditivos).
1
Redução em relação ao controle C.
Valores que apresentam a mesma letra, numa mesma coluna, não apresentam diferenças significativas (p>0,05) pelo
Teste de Tukey a 95% de confiança.
As
funções
quadráticas,
lineares
ou
da
interação
das
variáveis
independentes (percentuais de polpa de manga e de extrato de erva-mate)
obtidas pelos gráficos de Pareto não foram significativas com relação às variáveis
dependentes de percentual de elongação e de resistência a tração dos biofilmes
(Anexo II).
Filmes de purê de manga e de outras frutas apresentam baixa resistência à
tração e percentual de alongamento reduzido quando comparados a filmes feitos
com amidos de frutas plastificados com glicerol (SOTHORNVIT & RODSAMRAN,
119
2008). Em biofilmes de fécula de mandioca contendo extrato de espinafre, foi
observado um aumento no percentual de alongamento, enquanto que os biofilmes
contendo extrato de uva apresentaram uma redução neste parâmetro. Porém,
também ambos os biofilmes apresentaram uma redução na resistência à tração
quando comparados ao controle (ATTARIAN et al., 2006).
TANADA-PALMU
&
GROSSO
(2003),
avaliaram
a
influência
da
concentração de glúten nas propriedades mecânicas dos filmes, constatando que,
ao aumentar a concentração de glúten de 6,0 para 9,0%, ocorreu uma elevação
da resistência à tração e da porcentagem de alongamento dos biofilmes.
Os valores encontrados no presente estudo são inferiores aos relatados
para filmes sintéticos como de polietileno de baixa densidade (PEBD), que
apresenta resistência a tração variando de 6,9 a 16 MPa, e também de polietileno
altamente linear de alta densidade com 25 a 45 MPa (COUTINHO et al., 2003).
Portanto, a incorporação de diferentes teores dos aditivos de polpa de
manga e de extrato de erva-mate em filmes de fécula de mandioca, elaborados
por casting, não foi efetiva com relação ao aumento das propriedades mecânicas
dos biofilmes, atribuído principalmente à incorporação do extrato de erva-mate,
sugerindo uma diminuição na interação, quer devido à diminuição da dispersão
dos constituintes, ou devido à diminuição nas ligações de hidrogênio ou outras
forças de interação entre os aditivos, matriz e plastificante.
4 Conclusões
A incorporação de polpa de manga e de extrato de erva-mate a biofilmes
de fécula de mandioca, plastificados com glicerol, afeta as propriedades
mecânicas, de elongação e de permeabilidade ao vapor de água da matriz.
A incorporação dos diferentes teores dos aditivos na matriz plastificada
com glicerol resultou em uma alteração de -1,77 a +10,62% na espessura dos
biofilmes, quando comparados ao controle. Pode-se constatar que os aditivos
incorporados resultaram em alterações nos teores de sólidos totais (+0,33 a
+4,12%) e aumentos na umidade (de +2,59 a +32,68%) das formulações de
biofilmes, dependendo dos teores de cada aditivo incorporados à matriz.
Com exceção da formulação F1, em que houve a mínima incorporação dos
aditivos (2,9% m/m de polpa de manga e 4,40% m/m de extrato de erva-mate), as
120
demais formulações apresentaram uma redução da permeabilidade a vapor de
água entre 8,37 a 33,26% quando comparados ao controle (biofilme sem os
aditivos). As formulações com as maiores concentrações de polpa de manga
apresentaram o maior percentual de elongação dentre as formulações, já as que
tinham maior concentração de extrato de erva-mate incorporados à matriz,
apresentaram os menores percentuais. Quando comparadas com o controle,
todas as formulações apresentaram menores percentuais de elongação (entre
1,31 a 21,53% de redução), e de resistência à tração (reduzida entre 25,09 a
74,72%) demonstrando que a incorporação dos aditivos promove uma diminuição
dos percentuais destes parâmetros dos biofilmes.
Portanto, a incorporação de polpa de manga e de extrato de erva-mate nos
biofilmes de fécula de mandioca alterou as propriedades físico-químicas e
mecânicas, com ênfase nas reduções da permeabilidade ao vapor de água e da
resistência à tração dos biofilmes.
Referências
ASTM. American Society for Testing and Materials. Standard Test Method for
tensile properties of thin plastic sheeting ASTM D882-00, 1, 2001a.
ASTM. American Society for Testing and Materials. Standard practice for
maintaining constant relative humidity by means of aqueous solution ASTM
E104-85, 6, 2001b.
ATTARIAN, A. C.; VEIGA-SANTOS, P.; DITCHFIELD, C.; PARRA, D. F.; LUGÃO,
A. B.; TADINI, C. C. Investigation of natural additives as pH indicators for cassava
starch biobased materials. VI International symposium on future of food
engineering, Warsaw, Poland, 2006.
AVÉROUS, L.; FRINGANT, C.; MORO, L. Plasticized starch-cellulose interations
in polysaccharides composites. Polymers, v. 42, p. 6565-6572, 2000.
BRAVO, L.; GOYA, L.; LECUMBERRI, E. LC/MS characterization of phenolic
constituents of mate (Ilex paraguariensis, St. Hil.) and its antioxidant activity
compared to commonly consumed beverages. Food Research, Int. n. 40, p. 393405, 2007.
CAMPOS A. M. Desenvolvimento de extratos secos nebulizados de Ilex
paraguariensis St.Hill. Aquifoliaceae (erva-mate). Porto Alegre, 1996. 149 p.
121
Dissertação de Mestrado em Ciências Farmacêuticas. Universidade Federal do
Rio Grande do Sul.
CARR, L. G. Desenvolvimento de Embalagem Biodegradável Tipo Espuma a
partir de Fécula de mandioca. 2007. 107p. Tese (Doutorado em Engenharia) –
Escola Politécnica da Universidade de São Paulo, Departamento de Engenharia
Química, São Paulo – SP.
COUTINHO, F. M. B.; MELLO, I.L.; MARIA, L. C. S. Polietileno: principais tipos,
propriedades e aplicações. Polímeros, v. 13 n. 1, p. 1-13, 2003.
CUQ, B.; GONTARD, N.; CUQ, J.; GUILBERT, S. Functional properties of
myofibrilar protein-based biopackaging as affected by film tickness. Journal of
Food Science, v. 61, n. 3, p. 580-584, 1998.
GENNADIOS, A.; WELLER, C. L.; HANNA, M. A.; FRONING, G. W. Mechanical
and barrier properties of eggs albumen films. Journal of Food Science, v. 61, n.
3, p. 585-589, 1996.
GRISI, C. Utilização de derivados do dendê (elais guineesis jaquim) em
embalagens ativas à base de fécula de mandioca com função antioxidante. 2008.
Dissertação (Mestrado em Engenharia Química) – Escola Politécnica,
Universidade Federal da Bahia, Salvador – BA.
GONTARD, N.; GUILBERT, S.; CUQ, J. L. Edible wheat gluten films: influence of
the main process variables on film properties using response surface
methodology. Journal of Food Science, v. 57, n. 1, p. 190-199, 1992.
MATHEW, S.; ABRAHAM, E. Characterisation of ferrúlico acid incorporated
starch-chitosan blend films. Food Hydrocolloids, v. 22, p. 826-835, 2008.
MATTA, M. D. J.; SARMENTO, S. B. S.; SARANTÓPOULOS, C. I. G. L.;
ZOCCHI, S. S. Propriedades de barreira e solubilidade de filmes de amido de
ervilha associado com goma xantana e glicerol. Polímeros, n. 1, 2011.
MENDIETA-TABOADA, O.; CARVALHO, R. A.; SOBRAL, P. J. A. Análise
dinâmico-mecânica: aplicações em filmes comestíveis. Química Nova, v. 31, n.
2, 2008.
MÜLLER, C. M. O.; LAURINDO, J. B.; YAMASHITA, F. Effect of cellulose fibers
addition on the mechanical properties and water barrier of starch-based films.
Food hydrocolloids, v. 23, n. 9, p. 1328-1333, 2009.
MOURA, W. S. Extração e Caracterização da Fécula do Hedychium Coronarium e
Elaboração de Filmes Biodegradáveis. 2008. 80p, Dissertação (Mestrado em
Ciências Moleculares), Universidade Estadual de Goiás. Anápolis – GO.
POUPLIN, M.; REDL, A.; GONTARD, N. Glass transition of wheat gluten
plasticized with water, glycerol, or sorbitol. Journal of Agricultural and Food
Chemistry, v. 47, p. 538-543, 1999.
122
RIGO, L. N. Desenvolvimento e Caracterização de filmes comestíveis. 2006.
130p. Dissertação (Mestrado em Engenharia de Alimentos) – Faculdade de
Ciências Agrárias, URI Campus Erechim, Erechim - RS.
SALGADO, S. M.; GUERRA, N. B.; MELO FILHO, A. B. Polpa de fruta congelada:
efeito do processamento sobre o conteúdo de fibra alimentar. Revista de
Nutrição, v. 12, n. 3, p. 303-308, 1999.
SANTOS, A. P. Extração e caracterização do amido do fruto-do-lobo (Solanum
lycocarpum st. hil) e elaboração de filmes biodegradáveis. 2009. 112p,
Dissertação (Mestrado em Ciências Moleculares), Universidade Estadual de
Goiás. Anápolis – GO.
SILVA, L. T. Desenvolvimento e avaliação de embalagens biodegradáveis com
ação antioxidante contendo café e cacau. 2009. 148p. Dissertação (Mestrado em
Ciência de Alimento) – Faculdade de Farmácia, Universidade Federal da Bahia,
Salvador – BA.
SHIMAZU, A. A.; MALI, S.; GROSSMANN, M. V. E. Efeitos plastificante e
antiplastificante do glicerol e do sorbitol em filmes biodegradáveis de amido de
mandioca. Semina: Ciências Agrárias, Londrina, v. 28, n. 1, p. 79-88, 2007.
SOTHORNVIT, R.; RODSAMRAN, P. Effect of a mango film on quality of whole
and minimally processed mangoes. Postharvest Biology and Technology, v. 47,
p. 407-415, 2008.
SOUZA, C. O; SILVA, L. T.; SILVA, J. R.; LOPEZ, J. A.; VEIGA-SANTOS, P.;
DRUZIAN, J. I. Mango and Acerola Pulps as Antioxidant Additives in Cassava
Starch Bio-based Film. Journal of Agriculture and Food Chemistry, v. 1, p.
538-543, 2011.
TACO - Tabela Brasileira de Composição de Alimentos. Campinas: NEPA –
Núcleo de Estudos e Pesquisa em Alimentação / UNICAMP. 2 ed., p. 42, 2006.
TANADA-PALMU, P. S.; GROSSO, C. R. F. Development and characterization of
edible films based on gluten from semi-hard and soft Brazilian wheat flours
(development of films based on glúten from wheat flours). Ciência e Tecnologia
de Alimentos, v. 23, n. 2, p. 264-269, 2003.
VEIGA-SANTOS, P.; SCAMPARINI, A. R. P. Indicador irreversível de temperatura
utilizando carboidratos. Patente protocolizada n. 4.315. (INPI). 23/08/2004.
VEIGA-SANTOS, P.; OLIVEIRA, L. M. CEREDA, M. P.; SCAMPARINI, A. R. P.
Sucrose and inverted sugar as plasticizer. Effect on cassava starch–gelatin film
mechanical properties, hydrophilicity and water activity. Food Chemistry, v. 103,
p. 255-262. 2007.
123
VEIGA-SANTOS, P.; OLIVEIRA, L. M.; CEREDA, M. P.; ALVES, A. J.;
SCAMPARINI, A. R. P. Mechanical properties, hydrophilicity and water activity of
starch-gum films: Effect of additives and deacetylated xanthan gum. Food
Hydrocolloids, v. 19, p. 341-349, 2005.
124
CONCLUSÕES E CONSIDERAÇÕES GERAIS
O trabalho permitiu a definição dos limites de incorporação dos aditivos
ativos de polpa de manga (até 20% m/m) e de extrato aquoso de erva-mate (até
30% m/m) à matriz de fécula de mandioca plastificada com glicerol e processada
por casting. A avaliação da eficácia antioxidante e caracterização de filmes
biodegradáveis ativos à base de fécula de mandioca, glicerol, e aditivos naturais
compostos de polpa de manga e de extrato de erva-mate. A incorporação até as
concentrações máximas dos aditivos resultou em biofilmes ativos, visto que os
antioxidantes (polifenóis, flavonóides e carotenóides) provenientes destes aditivos
permaneceram na matriz, mesmo após 45 dias de estocagem, indicando grande
potencial como aditivos antioxidantes. Os filmes biodegradáveis ativos diminuíram
significativamente a oxidação do azeite de dendê embalado, durante 45 dias de
armazenamento. Os melhores resultados foram obtidos com a incorporação de
máxima concentração de extrato de erva-mate aos biofilmes (F8), sugerindo que
a inibição da oxidação por aditivos naturais neste estudo depende prioritariamente
dos compostos fenólicos.
As incorporações dos aditivos também provocaram mudanças nas
características físico-químicas e mecânicas dos filmes, com variações não
significativas devido às pequenas variações na espessura e nos sólidos totais, e
as alterações mais pronunciadas, como os aumentos da umidade e as
diminuições na permeabilidade ao vapor de água, na elongação e na resistência à
tração. As formulações com as maiores concentrações de polpa de manga
apresentaram o maior percentual de elongação dentre as formulações, e as com
maiores concentrações de extrato de erva-mate incorporados à matriz
apresentaram os menores percentuais do parâmetro. Quando comparadas ao
controle todas as formulações apresentaram diminuição da resistência à tração e
da porcentagem de elongamento.
Portanto, a incorporação de diferentes teores dos aditivos, apesar de
diminuir a permeabilidade ao vapor de água e fornecer forte ação antioxidante ao
embalar produtos com alto teor de gordura como azeite de dendê, atribuída
principalmente à incorporação do extrato de erva-mate, não foi efetiva com
relação ao aumento das propriedades mecânicas dos biofilmes, atribuído
125
principalmente a incorporação desse mesmo aditivo, sugerindo uma diminuição
na interação e/ou na dispersão dos constituintes.
O desenvolvimento de embalagem ativa antioxidante do presente estudo
pode ser utilizada para embalar alimentos lipídicos, com baixos teores de
umidade, a fim de retardar a sua oxidação, e conseqüentemente manter a
estabilidade do produto embalado. No entanto, para que sua aplicação não fique
limitada, sugere-se que novos estudos sejam realizados utilizando outras matrizes
biodegradáveis e não biodegradáveis, assim como, a avaliação da estabilidade de
produtos farmacêuticos embalados com o biomaterial.
126
ANEXO I
Análises estatísticas dos resultados obtidos nos experimentos. Para validar
a equação do modelo, foi analisada a ANOVA presente na Tabela 1. O Fcalc.
mostra um ajuste do modelo desde que Fcalc>Ftab indicando que o modelo é
valido. O gráfico Pareto e o erro puro também foram utilizados para validar o
modelo (p<0.05).
127
Tabela 1: ANOVA para as respostas Índice de Peróxido (IP), Carotenóides Totais (CT) e Dienos Conjugados (DC) do azeite de dendê
embalado e de Carotenóides Totais (CT), Polifenóis Totais (PT) e de Flavonóides Totais (FT) nas diferentes formulações de biofilmes
durante armazenamento, obtida a partir dos valores codificados das variáveis independentes.
Produto Embalado
Soma
Grau de
Coeficientes
Liberdade
Quadrática
Parâmetros
de Variação
(DF)
(SS)
Regressão
5,48
5
IP dia7
Resíduo
0,13
5
Total (SS)
5,61
10
Regressão
3,62
5
IP dia15
Resíduo
0,04
5
Total (SS)
3,66
10
Regressão
18,67
5
IP dia30
Resíduo
0,32
5
Total (SS)
18,99
10
Regressão
5,48
5
IP dia45
Resíduo
0,12
5
Total (SS)
5,60
10
Regressão
82,46
5
CT dia7
Resíduo
26,28
5
Total (SS)
108,75
10
Regressão
230,83
5
CT dia15
Resíduo
56,65
5
Total (SS)
287,48
10
Regressão
495,31
5
CT dia30
Resíduo
102,89
5
Total (SS)
598,21
10
Regressão
838,63
5
CT dia45
Resíduo
148,22
5
Total (SS)
986,86
10
* Ftab (5,5; 0,95) = 5,05 ; ** Ftab (5,5; 0.95) = 9,59
Média
Quadrática
(MS)
1,09
0,02
Fcalc*
Ff. de
juste**
41,74
6,36
Parâmetros
CT dia7
0,72
0,007
95,98
3,73
0,064
58,21
1,09
0,02
45,33
16,50
5,25
3,13
46,16
11,33
4,07
99,06
20,57
4,81
167,72
29,64
5,65
4,29
CT dia15
4,51
CT dia30
6,36
CT dia45
1,88
PT dia7
1,59
PT dia15
1,84
PT dia30
1,06
PT dia45
Coeficientes
de Variação
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Biofilme
Soma
Grau de
Quadrática Liberdade
(DF)
(SS)
25,68
5
3,18
5
28,87
10
37,39
5
4,50
5
41,90
10
37,40
5
4,50
5
41,90
10
37,40
5
4,50
5
41,90
10
10,13
5
0,04
5
10,17
10
13,51
5
0,34
5
85,47
10
14,32
5
0,065
5
14,38
10
14,16
5
0,40
5
14,56
10
Média
Quadrática
(MS)
5,13
0,63
Fcalc*
Ff. de
juste**
8,05
0,96
7,48
0,90
8,30
1,14
7,48
0,90
8,30
1,14
7,48
0,90
8,29
1,14
2,02
0,009
226,9
4,13
2,70
0,07
38,94
5,60
2,86
0,013
220,4
6,32
2,83
0,08
35,09
7,72
Continuação Tabela 1
Produto Embalado
Parâmetro
s
DC dia7
DC dia15
DC dia30
DC dia45
Coeficient
es de
Variação
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Soma
Quadráti
ca
(SS)
0,006
0,004
0,010
0,004
0,003
0,007
0,008
0,006
0,014
0,042
0,015
0,057
Grau de
Liberda
de
(DF)
5
5
10
5
5
10
5
5
10
5
5
10
Biofilme
Média
Quadrática Fcalc*
(MS)
0,001
0,0008
1,44
0,0008
0,0006
1,39
0,0015
0,0012
1,23
0,008
0,003
2,87
Ff. de
ajuste*
*
Parâmetro
s
0,68
FT dia7
0,43
FT dia15
0,35
FT dia30
0,26
FT dia45
Coeficient
es de
Variação
Soma
Quadrática
(SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
Regressão
Resíduo
Total (SS)
116,0
6,17
122,25
131,01
6,05
137,07
143,03
5,81
148,84
142,24
5,26
147,50
Grau de
Liberda
de
(DF)
5
5
10
5
5
10
5
5
10
5
5
10
Média
Quadráti
ca
(MS)
23,21
1,23
Fcalc*
Ff. de
ajuste*
*
18,7
9,08
26,20
1,21
21,6
5,83
28,60
1,16
24,6
4,31
28,44
1,05
27,0
4,31
* Ftab (5,5; 0,95) = 5,05 ; ** Ftab (5,5; 0.95) = 9,59
129
2,0
2,0
Erva mate
1,0
Erva Mate
PT dia15
1,5
PT dia7
1,5
0,5
0,0
-0,5
1,0
0,5
0,0
-0,5
-1,0
-1,5
-1,0
-2,0
-2,0 -1,5 -1, 0 -0,5
-1,5
-2,0
-2,0 -1,5 -1,0 -0,5 0,0
0,5
1,0
1,5
0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
Manga
2,0
Manga
2,0
2,0
PT dia30
1,5
1,0
Erva mate
Erva mate
1,5
0,5
0,0
-0,5
-1,0
PT dia45
1,0
0,5
0,0
-0,5
-1,0
-1,5
-1,5
-2,0
-2,0 -1,5 -1,0 -0,5 0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
Manga
Figura 1. Superfície de resposta da perda no teor de polifenóis totais (PT) dos biofilmes no dia 7, 15, 30 e 45.
-2,0
-2,0 -1,5 -1,0 -0,5 0,0
0,5
Manga
1,0
1,5
2,0
2,0
2,0
Erva Mate
Erva Mate
FT dia15
1,5
FT dia7
1,5
1,0
0,5
0,0
-0,5
1,0
0,5
0,0
-0,5
-1,0
-1,5
-1,0
-2,0
-2,0
-1,5
-2,0
-2,0 -1,5 -1,0 -0,5
0,0
0,5
1,0
1,5
-1,5
-1,0
-0,5
0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
Manga
2, 0
Manga
2,0
FT dia30
2,0
1,0
FT dia45
1,5
0,5
Erva Mate
Erva Mate
1,5
0,0
-0,5
-1,0
-1,5
-2,0
-2,0 -1,5 -1,0 -0,5
1,0
0,5
0,0
-0,5
-1,0
0,0
0,5
1,0
1,5
2, 0
Manga
-1,5
-2,0
-2,0
-1,5 -1,0
-0,5
0,0
0,5
Manga
Figura 2. Superfície de resposta da perda no teor de flavonóides totais (FT) dos biofilmes no dia 7, 15, 30 e 45.
131
1,0
1,5
2,0
2,0
1,0
0,5
0,0
-0,5
Erva Mate
CT dia7
1,5
Erva Mate
CT dia15
1,5
2,0
-1,0
1,0
0,5
0,0
-0,5
-1,0
-1,5
-1,5
-2,0
-2,0 -1,5 -1,0 -0,5 0,0
-2,0
-2,0 -1,5 -1, 0 -0,5 0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
0,5 1,0 1,5 2,0
Manga
Manga
2,0
CT dia30
1,0
2,0
0,5
1,5
0,0
Erva Mate
Erva Mate
1,5
-0,5
-1,0
-1,5
-2,0
-2,0 -1,5 -1,0 -0,5
0,0
0,5
Manga
1,0
1,5
2,0
CT dia45
1,0
0,5
0,0
-0,5
-1,0
-1,5
-2,0
-2,0 -1,5 -1, 0 -0,5 0,0
0,5
Manga
Figura 3. Superfície de resposta da perda no teor de carotenóides totais (CT) dos biofilmes no dia 7, 15, 30 e 45.
132
1,0
1,5
2,0
2,0
2,0
IP dia7
IP dia15
1,5
1,0
1,0
Erva Mate
Erva Mate
1,5
0,5
0,0
-0,5
-1,0
0,5
0,0
-0,5
-1,0
-1,5
-1,5
-2,0
-2,0 -1,5 -1, 0 -0,5
0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
Manga
-2,0
-2,0 -1,5 -1,0 -0,5 0,0 0,5
1,0
1,5
2,0
Manga
2,0
IP dia30
2,0
1,0
IP dia45
1,5
0,5
Erva Mate
Erva Mate
1,5
0,0
-0,5
-1,0
-1,5
1,0
0,5
0,0
-0,5
-1,0
-2,0
-2,0 -1,5 -1, 0 -0,5
0,0
0,5
1,0
1,5
2,0
Manga
-1,5
-2,0
-2,0 -1,5 -1, 0 -0,5
0,0
0,5
Manga
Figura 4. Superfície de resposta do aumento do índice de peróxido (IP) dos biofilmes no dia 7, 15, 30 e 45.
133
1,0
1,5
2,0
Figura 5. Gráfico de Pareto da redução no teor de Polifenóis Totais, Flavonóides Totais e Carotenóides Totais dos Biofilmes.
Figura 6: Gráfico de Pareto do Índice de Peróxido (IP),
Carotenóides Totais (CT) e Dienos Conjugados (DC) do
azeite de dendê.
135
ANEXO II
Tabela 1: ANOVA para o modelo da análise de Espessura (E), Sólidos Totais
(ST), Umidade, Taxa de Permeabilidade ao Vapor de Água (TPVA), Tração e
Elongação dos biofilmes, no dia 0.
Biofilme
Parâmetros
E
ST
Umidade
TPVA
Tração
Elongação
Grau de
Liberdade
(DF)
Regressão
Soma
Quadrática
(SS)
0,00025
5
Média
Quadrática
(MS)
0,00006
Resíduo
0,00060
5
0,00012
Total (SS)
0,00085
10
Regressão
0,255
5
0,070
Resíduo
0,343
5
0,069
Total (SS)
0,598
10
Regressão
0,00034
5
0,00003
Resíduo
0,00010
5
0,00010
Total (SS)
0,00044
10
Regressão
0,353
5
0,070
Resíduo
0,343
5
0,069
Total (SS)
0,697
10
Regressão
0,004
5
0,0008
Resíduo
Total (SS)
0,003
0,007
5
10
0,0006
Regressão
0,008
5
0,0015
Resíduo
Total (SS)
0,006
0,014
5
10
0,0012
Coeficientes de
Variação
* Ftab (5,5; 0,95) = 5,05 ; ** Ftab (5,5; 0.95) = 9,59
Fcalc*
Ff. de
ajuste**
0,40
0,36
1,3
0,28
0,46
0,27
1,02
0,31
1,39
1,23
0,43
0,35
Figura 1. Gráfico de Pareto da análise de Espessura dos biofilmes no dia 0.
Figura 2. Gráfico de Pareto da análise de Sólidos Totais dos biofilmes no dia 0.
Figura 3. Gráfico de Pareto da análise de Umidade dos biofilmes no dia 0.
137
Figura 4. Gráfico de Pareto da análise de Taxa de Permeabiliade ao Vapor de
Água (TPVA) dos biofilmes no dia 0.
Figura 10. Gráfico de Pareto da análise de Elongação dos biofilmes no dia 0.
Figura 11. Gráfico de Pareto da análise de Resistência à Tração dos biofilmes no
dia 0.
138
ANEXO III
RESULTADOS COMPLETOS
1. Teores de polifenóis totais (mg/g) apresentados pelos biofilmes nos dias 0, 7, 15,
30 e 45 e percentual de perda durante armazenamento.
Dia 0
Dia 7
Dia 30
Dia 45
F1
43,41
Concentração
32,51
30,25
24,26
21,08
51,440
F2
125,4
111,86
109,16
103,4
99,92
20,319
F3
81,28
70,2
67,5
62,13
58,3
28,273
F4
145,33
132,77
130,07
124,08
120,83
16,858
F5
87,76
75,78
73,08
67,26
63,84
27,256
F6
105,81
94,46
92,25
86,26
83,1
21,463
F7
39,22
28,55
26,29
20,3
17,12
56,349
F8
178,53
164,93
162,23
156,24
152,98
14,311
F9*
99,59
87,09
84,19
78,4
74,98
24,711
F10*
74,29
61,75
59,05
53,06
49,84
32,912
F11*
93,72
81,29
78,59
72,6
69,36
25,992
Formulações
Dia 15
Perda (%)
* Pontos Centrais
2. Teores de flavonóides totais (mg/g) apresentados pelos biofilmes nos dias 0, 7,
15, 30 e 45 e percentual de perda durante armazenamento.
Formulações
Dia 0
Dia 7
Dia 15
Dia 30
Dia 45
Concentração
F1
23,24
21,45
20,19
18,08
F2
44,95
35,39
34,13
30,73
F3
15,35
8,71
7,45
1,96
F4
59,92
48,23
46,97
43,73
F5
47,91
46,47
45,21
42,18
F6
45,59
35,67
34,41
31,07
F7
10,38
6,54
5,28
2,2
F8
62,54
52,47
50,21
47,53
F9*
26,41
21,68
20,44
17,16
F10*
27,16
21,53
22,14
16,95
F11*
26,28
21,49
20,28
17,24
16,62 28,2 1,12 41,67 37,39 29,56 0,43 45,43 15,22 15,09 15,34 Perda (%)
28,4854
37,2636
92,7036
30,4573
21,9578
35,1612
95,8574
27,3585
42,3703
44,4404
41,6286
* Pontos Centrais
139
3. Teores de carotenóides totais (µg/g) apresentados pelos biofilmes nos dias 0, 7,
15, 30 e 45 e percentual de perda durante armazenamento.
Formulações
Dia 0
Dia 7
Dia 15
Dia 30
Dia 45
Concentração
F1
21,15
20,11
19,7
15,89
F2
22,07
20,87
20,59
16,65
F3
39,5
38,08
37,74
33,86
F4
40,56
35,10
34,62
30,4
F5
6,42
5,410
5,02
1,19
F6
48,10
42,10
41,3
37,4
F7
34,22
32,9
32,58
28,68
F8
33,13
28,83
28,35
23,16
F9*
34,5
30,55
30,53
26,33
F10*
34,46
31,89
31,41
27,19
F11*
34,55
* Pontos Centrais
32,69
32,42
28,2
14,92 15,68 32,89 29,43 0,22 36,43 27,71 24,13 25,36 26,22 27,23 Perda (%)
29,45626
28,95333
16,73418
27,44083
96,57321
24,26195
19,02396
27,16571
26,49275
23,91178
21,18669
4. Teores de índice de peróxidos (meq/Kg) apresentados pelo produto embalado
(azeite de dendê) nos dias 0, 7, 15, 30 e 45 e percentual de aumento durante
armazenamento.
Formulações
Dia 0
Dia 7
Dia 15
Dia 30
Dia 45
Concentração
Aumento (%)
C1
10,054
52,769
99,443
143,864
166,746
1558,5
C2
10,054
64,094
110,93
160,875
180,056
1690,89
C3
10,056
52,564
97,765
143,534
164,3847
1534,69
F1
10,065
30,955
58,795
88,915
117,065
1063,09
F2
10,064
24,294
48,764
74,924
97,564
869,436
F3
10,077
29,027
57,797
86,817
110,937
1000,89
F4
10,085
24,485
49,005
77,385
97,585
867,625
F5
10,086
29,036
58,256
87,676
115,556
1045,71
F6
10,056
28,266
56,716
85,996
106,986
963,902
F7
10,086
31,716
61,046
94,996
120,486
1094,59
F8
10,085
24,085
47,975
73,505
96,805
859,891
F9*
10,077
25,157
51,457
83,237
101,927
911,482
F10*
10,064
24,524
49,314
79,854
101,704
910,572
F11*
10,066
* Pontos Centrais
25,556
49,276
78,116
99,006
883,568
140
5. Teores de carotenóides totais (µg/g) apresentados pelo produto embalado (azeite
de dendê) nos dias 0, 7, 15, 30 e 45 e percentual de perda durante armazenamento.
Dia 0
Formulações
Dia 7
Dia 15
Dia 30
Dia 45
Concentração
Perda (%)
C1
637,5169
413,6866
390,8475
343,8456
313,455
50,83189
C2
637,5169
400,0139
357,7460
315,3855
290,434
54,44293
C3
635,324
420,4500
391,8740
347,3847
325,596
48,75119
F1
636,7527
615,8587
588,0147
557,8972
529,6537
16,81956
F2
617,2206
602,9866
578,5126
552,3551
529,9016
14,14713
F3
627,1682
608,2142
579,4402
550,4227
526,2992
16,08325
F4
620,344
605,9400
581,4160
553,0385
532,8350
14,10653
F5
625,857
606,9030
577,6790
548,2615
520,3880
16,85193
F6
635,324
617,1100
588,6560
559,3785
538,3950
15,25662
F7
625,857
604,2230
574,8890
540,9415
515,4180
17,64604
F8
620,344
606,3500
582,4460
556,9185
533,6250
13,97918
F9*
627,1682
612,0842
585,7802
554,0027
535,3092
14,64663
F10*
617,2206
602,7566
577,9626
547,4251
525,5716
14,84866
F11*
636,7527
* Pontos Centrais
621,2587
597,5347
568,6972
547,8037
13,96916
6. Teores de hexanal (µg/mL) apresentados pelo produto embalado (azeite de
dendê) nos dias 0 e 45 e percentual de aumento durante armazenamento.
Formulações
Dia 0
Dia 45
Concentração
Aumento (%)
C1
1,00396
18,93396
1785,928
C2
1,00397
22,54397
2145,482
C3
1,00397
4,38397
336,6634
F1
1,00396
1,56396
55,77911
F2
1,00399
1,37399
36,85296
F3
1,00397
1,36397
35,85765
F4
1,00398
1,25398
24,90089
F5
1,00397
1,37397
36,85369
F6
1,00396
1,30396
29,88167
F7
1,00397
1,40397
39,84183
F8
1,00398
1,31398
30,87711
F9*
1,00397
1,34397
33,86555
F10*
1,00398
1,34398
33,86522
F11*
1,00396
* Pontos Centrais
1,35396
34,86195
141
7. Teores de dienos conjugados (mg/100g) apresentados pelo produto embalado
(azeite de dendê) nos dias 0 e 45 e percentual de perda durante armazenamento.
Formulações
Dia 0
Dia 45
Concentração
Aumento (%)
C1
1,014
1,7869
76,22
C2
1,011
1,8456
82,55
C3
1,012
1,7095
68,92
F1
1,015
1,532
50,94
F2
1,011
1,3485
33,38
F3
1,018
1,4245
39,93
F4
1,011
1,3857
37,06
F5
1,012
1,3746
35,83
F6
1,012
1,4568
43,95
F7
1,012
1,564
54,55
F8
1,011
1,3348
32,03
F9*
1,018
1,4003
37,55
1,014
F11*
1,011
* Pontos Centrais
1,4869
46,64
1,4456
42,99
F10*
142
ANEXO IV
FIGURAS
A
B
Figura 1: Biofilmes da formulação F4 (concentração máxima de aditivos) (A) e
Controle (biofilme sem adição de aditivos) (B).
C1
C2
C3
Figura 2: Produto embalado no controles utilizados. C1 (biofilme sem adição de
aditivos), C2 (PEBD) e C3 (sem embalagem).
143
F9
F11
F10
F1
F2
F3
F4
F5
F6
F7
F8
Figura 3: Produto embalado (azeite de dendê) nas 11 formulações.
144
ANEXO V
Figura 1. Cromatograma do azeite de dendê no dia 0.
145
Figura 2. Cromatograma do controle sem aditivos (C1) após 45 dias de estocagem.
146
Figura 3. Cromatograma do controle de PEBD (C2) após 45 dias de estocagem.
147
Figura 4. Cromatograma do azeite de dendê sem embalagem (C3) após 45 dias de estocagem.
148
Figura 5. Cromatograma do azeite de dendê embalado com a formulação F1(concentração mínima de aditivo), após 45
dias de estocagem.
149
Figura 6. Cromatograma do azeite de dendê embalado com a formulação F4 (concentração máxima de aditivo), após 45.
150
Figura 7. Cromatograma do azeite de dendê embalado com a formulação F8, após 45.
151