EFEITO DO TEMPO, TEMPERATURA E MEIOS SOBRE A VIABILIDADE FOLICULAR NA ESPÉCIE EQUINA – Resultados preliminares. Autores: Roberta G. Gomes1; Evelyn R. Andrade2; Marcelo M. Seneda1* 1- Professor(a) do Departamento de Clínicas Veterinárias - CCA/UEL, Londrina PR 2- Bolsista PRODOC/CAPS E-mail: [email protected] * Introdução Resultados O desenvolvimento de protocolos ideais para conservação de A análise prévia dos resultados mostrou que a temperatura folículos pré-antrais é o primeiro passo para a obtenção e manipulação parece ser mais importante do que o meio de conservação. Na de milhares de folículos presentes nos ovários de animais, vivos ou temperatura de 4 graus, independentemente do meio utilizado (MEM mortos. As condições de transporte até o laboratório são cruciais para ou PBS), os folículos mostraram-se bem conservados, com tendência viabilizar todas as etapas posteriores da biotecnologia dos gametas a um maior percentual de degeneração conforme o intervalo de tempo femininos. O objetivo do presente trabalho foi avaliar o impacto das aumentava. Nas temperaturas de 20º e 39ºC observou-se alto grau de variáveis temperatura, meios de cultura e tempo pós-colheita sobre a degeneração em todos os tempos e meios estudados. viabilidade de folículos ovarianos pré-antrais conservados in situ na espécie equina. Discussão Material e Métodos De acordo com nosso conhecimento, este é o primeiro trabalho Ovários (n = 10) oriundos de éguas (n=10) de diversas raças em a relatar uma estratégia viável de transporte de ovários equinos, anestro estacional foram obtidos em frigorífico de eqüinos, distante considerando tempo, meios e temperaturas. A partir dos resultados 120 km do laboratório. Imediatamente após a morte dos animais, os deste experimento, torna-se possível uma utilização mais eficiente ovários foram lavados em álcool 70% e em solução salina 0,9% por 10 dos folículos primordiais da espécie equina, com aproveitamento de segundos e então dissecados, dividindo a porção cortical (mais milhares de folículos primordiais para as biotécnicas de cultivo interna) em 19 fragmentos de aproximadamente 3 x 3 x 1 mm. Um folicular, FIV e clonagem. As perspectivas de tais biotécnicas são fragmento de cada ovário foi imediatamente fixado em Carnoy por 24 h como controle (T1). Os outros 18 foram distribuídos em tubos contendo 10 ml de MEM (Meio Esssencial Mínimo) ou PBS (Phosphatebufferid saline) a 4, 20 ou 39º C e conservados por 4, 12 ou 24 horas altamente promissoras, considerando-se a obtenção de blastocistos ovinos a partir do cultivo de folículos pré-antrais. Ressalta-se, ainda, a importância de uma melhor compreensão da fisiologia folicular (figura 1). A avaliação foi realizada em todos os tratamentos através de para a espécie equina, considerando-se a escassez de ovários de histologia clássica e coloração com ácido periódico de Schiff (PAS) - égua disponíveis para trabalhos experimentais. hematoxilina. Conclusão 19 fragmentos Este trabalho mostra como resultados preliminares que 18 fragmentos + 1 fragmento (T1 – Tempo 0) PBS 4º C 20º C Incubação 39º C 4h 12h 24h 4h 12h 24h 4h 12h 24h (T2) (T3) (T4) (T5) (T6) (T7) (T8) (T9) 4º C 20º C quando coservados in situ em MEM ou PBS a 4ºC por 4 horas. Referências MEM Incubação foliculos ovarianos apresentaram-se morfologicamente normais 39º C 4h 12h 24h 4h 12h 24h 4h 12h 24h (T10) (T11) (T12) (T13) (T14) (T15) (T16) (T17) (T18) (T19) Figura 1. Delineamento experimental para preservação de folículos pré-antrais de ovários eqüinos. ANDRADE, E. R.; RODRIGUES, A. P. R.; AMORIM, C. A.; CARVALHO, F. C. A.; DODE, M. A. N.; FIGUEIREDO, J. R. Shortterm maintenance of sheep preantral follicles in situ in 0,9% saline and Braun Collins solutions. Small Ruminant Research. v. 41, n. 2, p.141-149, 2001. ANDRADE, E. R.; AMORIM, C. A.; COSTA, S. H. F.; FERREIRA, M. A. L.; RODRIGUES, A. P. R.; DODE, M. A. N.; FIGUEIREDO, J. R. Preliminary study of short-term preservation of ovine ovarian tissue containing preantral follicles in saline solution or TCM199. Veterinary Record. v. 151, p. 452-53, 2002. CECCONI, S.; BARBONI, B.; COCCIA, M. & MATTIOLI, M. In vitro development of sheep preantral follicles. Biol. Reprod., v.60, p.594-601, 1999. FIGUEIREDO, J.R.; HULSHOF, S.C.J.; THIRY, M.; VAN DEN HURK, R.; BEVERS, M.M.; NUSGENS, B. AND BECKERS, J.F. Extracellular matrix proteins and basement membrane: their identification in bovine ovaries and significance for the attachment of cultured preantral follicles. Theriogenology, v. 43, p. 845-858, 1995. LOPES, C. P.; SANTOS, R. R.;CELESTINO, J, J. H,; MELO, M. A. P.; CHAVES, R. N.; CAMPELLO, C. C.;SILVA, J. R. V.;BÁO, S. N.; JEWGENOWB, K.; FIGUEIREDO, J. R. Short-term preservation of canine preantral follicles: Effects of temperature, medium and time. Animal Reproduction Science. V. 115, p. 201-214, 2009. LUCCI, C.M.; AMORIM, C.A.; RODRIGUES, A.P.; FIGUEIREDO, J.R.; BAO, S.N.; SILVA, J.R.; GONCALVES, P.B. Study of preantral follicle population in situ and after mechanical isolation from caprine ovaries at different reproductive stages. Anim Reprod Sci., v.56(3-4), p.223-36, 1999. LUCCI, C. M.; KACINSKIS, M. A.; RUMPF, R.; BA’O, S. N. Effect of lwered temperatures and media on short-term preservation of zebu (Bos indicus) preantral ovarian follicles. Theriogenology. v. 61, p. 461-72, 2004. LUCCI, C. M.; SHREIER, L. L.; MACHADO, G. M.; AMORIM, C. A.; BA’O, S. N.; DOBRINSKY, J. R. Effects of storing pig ovaries at 4 or 20o C for different periods of time on the morphology and viability of pre-antral follicles. Reprod. Dom. Anim. v. 42, p. 76–82, 2007. NAVES, C. S.; VIEIRA, R. C.; DINIZ, E. G.; JACOMINI, J. O.; BELLETI, M. E.; OLIVEIRA, R. C. Desenvolvimento morfológico dos ovários em fetos equinos sem raça definida. Ciência Rural. v. 38, n. 2, p. 416-22, 2008. SZLACHTA, M.; TISCHNER, M. Distribution, morphology and ultrastructure of preantral follicles in the ovary of the mare. Havemeyer Foundation Monograph Series N. 5, p. 33-35, 2008. TELFER, E.E. The Development of Methods for Isolation and Culture of Preantral Follicles from Bovine and Porcine Ovaries. Theriogenology, v. 45, p. 101-110, 1996. VAN DEN HURK, R.; BEVERS, M. M.; BECKER, J. F. In vivo and in vitro development of preantral follicles. Theriogenology, v.47, p.73-82, 1997. Universidade Estadual de Londrina – Centro de Ciências Agrárias - Departamento de Clínicas Veterinárias