EFEITO DO TEMPO, TEMPERATURA E MEIOS SOBRE A VIABILIDADE
FOLICULAR NA ESPÉCIE EQUINA – Resultados preliminares.
Autores: Roberta G. Gomes1; Evelyn R. Andrade2; Marcelo M. Seneda1*
1- Professor(a) do Departamento de Clínicas Veterinárias - CCA/UEL, Londrina PR
2- Bolsista PRODOC/CAPS
E-mail: [email protected] *
Introdução
Resultados
O desenvolvimento de protocolos ideais para conservação de
A análise prévia dos resultados mostrou que a temperatura
folículos pré-antrais é o primeiro passo para a obtenção e manipulação
parece ser mais importante do que o meio de conservação. Na
de milhares de folículos presentes nos ovários de animais, vivos ou
temperatura de 4 graus, independentemente do meio utilizado (MEM
mortos. As condições de transporte até o laboratório são cruciais para
ou PBS), os folículos mostraram-se bem conservados, com tendência
viabilizar todas as etapas posteriores da biotecnologia dos gametas
a um maior percentual de degeneração conforme o intervalo de tempo
femininos. O objetivo do presente trabalho foi avaliar o impacto das
aumentava. Nas temperaturas de 20º e 39ºC observou-se alto grau de
variáveis temperatura, meios de cultura e tempo pós-colheita sobre a
degeneração em todos os tempos e meios estudados.
viabilidade de folículos ovarianos pré-antrais conservados in situ na
espécie equina.
Discussão
Material e Métodos
De acordo com nosso conhecimento, este é o primeiro trabalho
Ovários (n = 10) oriundos de éguas (n=10) de diversas raças em
a relatar uma estratégia viável de transporte de ovários equinos,
anestro estacional foram obtidos em frigorífico de eqüinos, distante
considerando tempo, meios e temperaturas. A partir dos resultados
120 km do laboratório. Imediatamente após a morte dos animais, os
deste experimento, torna-se possível uma utilização mais eficiente
ovários foram lavados em álcool 70% e em solução salina 0,9% por 10
dos folículos primordiais da espécie equina, com aproveitamento de
segundos e então dissecados, dividindo a porção cortical (mais
milhares de folículos primordiais para as biotécnicas de cultivo
interna) em 19 fragmentos de aproximadamente 3 x 3 x 1 mm. Um
folicular, FIV e clonagem. As perspectivas de tais biotécnicas são
fragmento de cada ovário foi imediatamente fixado em Carnoy por 24 h
como controle (T1). Os outros 18 foram distribuídos em tubos
contendo 10 ml de MEM (Meio Esssencial Mínimo) ou PBS (Phosphatebufferid saline) a 4, 20 ou 39º C e conservados por 4, 12 ou 24 horas
altamente promissoras, considerando-se a obtenção de blastocistos
ovinos a partir do cultivo de folículos pré-antrais. Ressalta-se, ainda,
a importância de uma melhor compreensão da fisiologia folicular
(figura 1). A avaliação foi realizada em todos os tratamentos através de
para a espécie equina, considerando-se a escassez de ovários de
histologia clássica e coloração com ácido periódico de Schiff (PAS) -
égua disponíveis para trabalhos experimentais.
hematoxilina.
Conclusão
19 fragmentos
Este trabalho mostra como resultados preliminares que
18 fragmentos + 1 fragmento (T1 – Tempo 0)
PBS
4º C
20º C
Incubação
39º C
4h 12h 24h 4h 12h 24h 4h 12h 24h
(T2) (T3) (T4) (T5) (T6) (T7) (T8) (T9)
4º C
20º C
quando coservados in situ em MEM ou PBS a 4ºC por 4 horas.
Referências
MEM
Incubação
foliculos ovarianos apresentaram-se morfologicamente normais
39º C
4h 12h 24h 4h 12h 24h 4h 12h 24h
(T10) (T11) (T12) (T13) (T14) (T15) (T16) (T17) (T18) (T19)
Figura 1. Delineamento experimental para preservação de folículos pré-antrais de ovários
eqüinos.
ANDRADE, E. R.; RODRIGUES, A. P. R.; AMORIM, C. A.; CARVALHO, F. C. A.; DODE, M. A. N.; FIGUEIREDO, J. R. Shortterm maintenance of sheep preantral follicles in situ in 0,9% saline and Braun Collins solutions. Small Ruminant Research. v.
41, n. 2, p.141-149, 2001.
ANDRADE, E. R.; AMORIM, C. A.; COSTA, S. H. F.; FERREIRA, M. A. L.; RODRIGUES, A. P. R.; DODE, M. A. N.;
FIGUEIREDO, J. R. Preliminary study of short-term preservation of ovine ovarian tissue containing preantral follicles in saline
solution or TCM199. Veterinary Record. v. 151, p. 452-53, 2002.
CECCONI, S.; BARBONI, B.; COCCIA, M. & MATTIOLI, M. In vitro development of sheep preantral follicles. Biol. Reprod.,
v.60, p.594-601, 1999.
FIGUEIREDO, J.R.; HULSHOF, S.C.J.; THIRY, M.; VAN DEN HURK, R.; BEVERS, M.M.; NUSGENS, B. AND BECKERS, J.F.
Extracellular matrix proteins and basement membrane: their identification in bovine ovaries and significance for the attachment
of cultured preantral follicles. Theriogenology, v. 43, p. 845-858, 1995.
LOPES, C. P.; SANTOS, R. R.;CELESTINO, J, J. H,; MELO, M. A. P.; CHAVES, R. N.; CAMPELLO, C. C.;SILVA, J. R. V.;BÁO,
S. N.; JEWGENOWB, K.; FIGUEIREDO, J. R. Short-term preservation of canine preantral follicles:
Effects of temperature, medium and time. Animal Reproduction Science. V. 115, p. 201-214, 2009.
LUCCI, C.M.; AMORIM, C.A.; RODRIGUES, A.P.; FIGUEIREDO, J.R.; BAO, S.N.; SILVA, J.R.; GONCALVES, P.B. Study of
preantral follicle population in situ and after mechanical isolation from caprine ovaries at different reproductive stages. Anim
Reprod Sci., v.56(3-4), p.223-36, 1999.
LUCCI, C. M.; KACINSKIS, M. A.; RUMPF, R.; BA’O, S. N. Effect of lwered temperatures and media on short-term preservation
of zebu (Bos indicus) preantral ovarian follicles. Theriogenology. v. 61, p. 461-72, 2004.
LUCCI, C. M.; SHREIER, L. L.; MACHADO, G. M.; AMORIM, C. A.; BA’O, S. N.; DOBRINSKY, J. R. Effects of storing pig
ovaries at 4 or 20o C for different periods of time on the morphology and viability of pre-antral follicles. Reprod. Dom. Anim. v.
42, p. 76–82, 2007.
NAVES, C. S.; VIEIRA, R. C.; DINIZ, E. G.; JACOMINI, J. O.; BELLETI, M. E.; OLIVEIRA, R. C. Desenvolvimento morfológico
dos ovários em fetos equinos sem raça definida. Ciência Rural. v. 38, n. 2, p. 416-22, 2008.
SZLACHTA, M.; TISCHNER, M. Distribution, morphology and ultrastructure of preantral follicles in the ovary of the mare.
Havemeyer Foundation Monograph Series N. 5, p. 33-35, 2008.
TELFER, E.E. The Development of Methods for Isolation and Culture of Preantral Follicles from Bovine and Porcine Ovaries.
Theriogenology, v. 45, p. 101-110, 1996.
VAN DEN HURK, R.; BEVERS, M. M.; BECKER, J. F. In vivo and in vitro development of preantral follicles. Theriogenology,
v.47, p.73-82, 1997.
Universidade Estadual de Londrina – Centro de Ciências Agrárias - Departamento de Clínicas Veterinárias
Download

document