CASO CLÍNICO
Tuberculose multiresistente
Autora
Eliana Dias Matos1,2
1
Ambulatório de TBMR do Hospital Especializado Octávio Mangabeira / Secretaria de
Saúde do Estado da Bahia (SESAB).
2
Departamento de Medicina - Escola Bahiana de Medicina e Saúde Pública
Relato de Caso
Paciente de 23 anos, sexo masculino, branco, estudante, procedente de Camaçari-Bahia.
Paciente portador de diabetes mellitus tipo 1, encaminhado da Unidade Básica de Saúde
(UBS) de Camaçari (Bahia) para o Ambulatório de Tuberculose Multirresistente
(TBMR) do Hospital Especializado Octávio Mangabeira (HEOM/SESAB).
O diagnóstico de TB pulmonar foi realizado em dezembro de 2005, com confirmação
bacteriológica (baciloscopia positiva). Iniciou Esquema 1 (Rifampicina, Isoniazida e
Pirazinamida) em dezembro de 2005, em regime auto-administrado, na UBS de origem,
completando o tratamento em junho de 2006 – com controles bacteriológicos negativos,
recebendo alta por cura.
Em agosto de 2006, passou a apresentar tosse produtiva, perda ponderal de cerca de 5
Kg e hemoptise. Negava febre. A baciloscopia de escarro resultou positiva. Ainda na
UBS foi introduzido, na ocasião, retratamento para TB com Esquema III
(Estreptomicina, Etambutol, Etionamida e Estreptomicina). Um mês após início do
Esquema III foi internado no Hospital São Rafael (Salvador/Ba), em caráter de
emergência. Permaneceu 1 mês hospitalizado por apresentar quadro de descompensação
do diabetes e intolerância às medicações do Esquema III, além de alergia à
estreptomicina. Baciloscopia positiva na admissão. A cultura para micobactéria de
amostra de escarro semeado em meio LJ (29/08/2006) isolou M. tuberculosis (+++). O
Teste de sensibilidade (TS) dessa cultura (método das proporções), liberado 26/11/2006,
mostrou: cepa de M. tuberculosis com resistência à Rifampicina (R) e Isoniazida (H0 e
sensível a Etambutol (Et), Etionamida (E) e Estreptomicina (S).
Encaminhado ao Centro de Referência para TBMR do HEOM (Salvador/Ba) em janeiro
de 2007.
Negava tabagismo, etilismo e uso de drogas ilícitas
Ao exame físico (primeira consulta no ambulatório de TBMR): Bom estado geral e
nutricional, eupnéico, afebril, consciente e orientado.
PA: 120X80 mm Hg; FC: 78 bpm
Ausência de adenomegalias periféricas palpáveis
Aparelho cardiovascular: ritmo cardíaco regular em 2 tempos, sem sopros.
Aparelho respiratório: MV bem distribuído, simétrico. Estertores audíveis em 1/3
superior de hemitórax direito e ½ superior de hemitórax esquerdo.
Abdômen: plano, simétrico, indolor á palpação, sem visceromegalias ou massas
palpáveis.
Extremidades: bem perfundidas, sem edemas.
RADIOGRAFIA DE TÓRAX:
Radiografia de tórax inicial (antes do tratamento para TBMR): inflitrado bilateral
extenso, com predomínio em lobos superiores e presença de cavidades (também
bilaterais), além de perda volumétrica à esquerda (componente atelectásico). Forma
bilateral cavitária.
EXAMES COMPLEMENTARES:
Sorologia anti-HIV: negativa; Leucograma 10.700 leucócitos (2% bast; 81% seg; 1%
eos; 14% linfócitos; 2% monócitos); Hb 12,5 g/dl; plaquetas: 471.000; glicemia; 204
mg/dl; ALT 42 UI/l; AST: 11UI/l; Uréia: 24 mg/dl; creatinina: 0,7 mg/dl; Proteinas
totais: 6.7 g%; Albumina; 2,8 g%.
1. Assinale a alternativa correta:
a) O diagnóstico de Tuberculose Multirresistente (TBMR) pode ser realizado
apenas baseado em baciloscopias e culturas para micobactéria
persistentemente positivas e resposta clínica desfavorável ao uso de
fármacos anti-TB.
b) O diagnóstico de Polirresitência é realizado em casos de TB com resistência
in vitro simultânea à Rifampicina (R), Isoniazida (H) e outro fármaco antiTB de primeira linha.
c) O conceito de TBXDR envolve casos de TB com resistência simultânea à
Rifampicina e Isoniazida, associada à resistência a uma quinolona e fármaco
anti-TB injetável de segunda linha (amicacina, kanamicina ou capreomicina)
d) A resistência à isoniazida é mais frequentemente associada à mutação no
gene inhA.
e) A resistência isolada à Rifampicina é mais freqüente do que a
monorresistência à Isoniazida.
Diante do quadro clínico-radiológico compatível com TB pulmonar associado à
presença de baciloscopia do escarro positiva e cultura para micobactéria isolando M.
tuberculosis, o diagnóstico de certeza de tratar-se de caso de tuberculose é
inquestionável, uma vez que a cultura é o método considerado como padrão ouro para o
diagnóstico da doença.
Em relação à multirresistentência, o diagnóstico somente pode ser confirmado pelo
Teste de Sensibilidade (TS), mostrando cepa de M. tuberculosis com resistência
simultânea à rifampicina e isoniazida. Assim, os casos de TB com baciloscopias e
culturas persistentemente positivas e com resposta clínica desfavorável são
considerados como casos suspeitos de TBMR, mas a confirmação necessita de
comprovação da resistência in vitro à rifampicina e isoniazida. O caso em questão
preenche, portanto, os critérios definidores de TBMR.
A Polirresistência é definida como caso de TB com resistência in vitro à Rifampicina
ou Isoniazida, associada à resistência a outro fármaco anti-TB. Por conseguinte, esses
casos não devem ser classificados como multirresistentes e a conduta envolve regimes
de tratamento individualizados, de acordo com o padrão da resistência apresentado no
TS.
A TBXDR é conceituada como caso de TB com resistência simultânea à rifampicina e
isoniazida, associada à resistência a uma quinolona e a um fármaco injetável de segunda
linha (amicacina, kanamicina ou capreomicina).
Em paciente com TB ativa, subpopulações de M. tuberculosis resistentes podem
emergir como cepas dominantes na presença de seleção induzida pela exposição aos
fármacos anti-TB. Portanto, a TB farmacorresistente é vista como um fenômeno gerado
pelo homem em decorrência do uso não racional dos medicamentos. Com a seleção, os
organismos farmacorresistentes multiplicam-se e tornam-se dominantes. Uma vez
criadas, as cepas farmacorresistentes podem ser transmitidas a indivíduos não
previamente expostos aos medicamentos anti-Tb (resistência primária).
A resistência à isoniazida é mais frequentemente associada à mutação no gene katG, que
codifica a enzima katG, uma catalase-peroxidase. Vários relatos, inclusive em
população brasileira, indicam que a mutação no gene katG é responsável por cerca de
60% dos casos de cepas resistentes à isoniazida. Outras mutações foram identificadas
em cepas de M. tuberculosis isoniazida-resistentes, tais como, as mutações nos genes
inhA (que codifica a enzima de síntese do ácido micólico, envolvido na formação da
parede celular da micobactéria) e ahpC (que codifica a alquil hidroxiperoxidase).
A resistência isolada à rifampicina é menos freqüente do que a monorresistência á
isoniazida. O último inquérito brasileiro de resistência aos fármacos anti-TB, mostrou
resistência primária à isoniazida de 6% e 1,5% para rifampicina. A rifampicina inibe a
subunidade beta da RNA polimerase. As mutações do gene rpoB são identificadas em
90% a 98% das cepas resistentes à rifampicina. Com o aprimoramento das técnicas de
biologia molecular, o seqüenciamento do fragmento do gene rpoB tem mostrado ser
uma maneira rápida de detecção da resistência à R, em substituição ao clássico método
das proporções.
Resposta correta: c
Evolução
O paciente iniciou esquema de tratamento para TBMR (amicacina, ofloxacino,
terizidona, etambutol e pirazinamida) em 26/01/2007. Apresentou resposta clínica
(redução de frequência da tosse e do volume da expectoração, ganho ponderal) e
radiológica favorável logo após o segundo mês de tratamento.
As bacilocopias e culturas para micobactérias de controle de tratamento resultaram
negativas de março/2007 a março/2008. O paciente mantinha melhora clínica e
radiológica e os controles bacteriológicos em 29/04/2008 mostraram: baciloscopia do
escarro negativa e cultura p/ micobactéria da mesma amostra positiva (++). A
identificação da espécie de micobactéria (tipificação) isolada na cultura mostrou tratarse de Complexo M. terrae.
2. Após os dados da evolução apresentados, qual a conduta mais adequada a
seguir no caso em questão?
a) Suspender o tratamento para TBMR e iniciar tratamento para doença por
Complexo M. terrae
b) Manter o tratamento para TBMR e acrescentar fármacos direcionados para
tratamento de doença por Complexo M. terrae
c) Interroper o tratamento para TBMR e manter o paciente apenas em controle
clínico e bacteriológico
d) Manter o tratamento para TBMR em curso e repetir os exames
bacteriológicos seriados (baciloscopias e culturas para micobactéria)
e) Manter o tratamento para TBMr com prorrogação do uso dos fármacos por
período superior a 18 meses
A presença de cultura de escarro positiva para MNT deve ser interpretada
cautelosamente, uma vez que esses organismos têm virulência variável e podem ser
isolados em espécimes respiratórias sem causar doença (infecção transitória ou
“colonização”). Adicionalmente, as MNT são comuns no meio ambiente e podem
contaminar espécimes laboratoriais. As MNT freqüentemente ocorrem no contexto de
doença estrutural do pulmão, que por sua vez pode causar sintomas. Assim, a distinção
entre infecção transitória, contaminação laboratorial e doença verdadeira é difícil de ser
definida. Felizmente, a maior parte da doença pulmonar por MNT é indolente,
permitindo que uma criteriosa avaliação laboratorial possa ser realizada.
Considerando a dificuldade de distinção entre infecção transitória, contaminação
laboratorial e doença por MNT, a American Thoracic Society (ATS) estabeleceu os
critérios específicos para definir o diagnóstico de doença verdadeira. Em pacientes
sintomáticos, com evidência de doença pulmonar pelos exames de imagens e com
exclusão de outras doenças, tais como TB, doença fúngica e neoplasia alguns critérios
bacteriológicos são necessários para confirmar o diagnóstico de doença por MNT: (a)
presença de 01 baciloscopia positiva e 02 culturas positivas com isolamento da mesma
espécie de MNT em espécimen respiratória ou; (b) 01 baciloscopia negativa e 03
culturas positivas.
O paciente em questão encontrava-se em 15º mês de tratamento para TBMR,
com resposta favorável e isolamento de Complexo M. terrae em apenas 01 amostra de
escarro, não preenchendo assim, os critérios definidores de doença por MNT. Assim, o
tratamento da TBMR deve ser mantido até completar 18 meses, conforme normatização
do Ministério da Saúde e pelo menos duas outras amostras seriadas de escarro devem
ser processadas para exame direto e cultura para micobactérias.
Não há necessidade de iniciar de imediato tratamento para doença por Complexo
M. terrae duas razões básicas: (1) A maior parte dos isolados desse grupo de MNT tem
sido registrada como infecção transitória (“colonização”), sendo esse microorganismo
considerado de menor potencial patogênico e; (2) O caso não preenche os critérios da
ATS para doença pulmonar por MNT.
No paciente em questão, optou-se por manter o esquema para TBMR,
considerando o achado de cultura para micobactéria com isolamento de Complexo M.
terrae como infecção transitória (”colonização”) e, não doença, no curso de tratamento
favorável para TBMR (15º mês de tratamento). Adicionalmente, os posteriores
controles bacteriológicos (baciloscopia e cultura), mensalmente realizados, resultaram
persistentemente negativos.
Resposta correta: d
3. Em relação aos testes de identificação de MNT, podemos afirmar que:
a) Do ponto de vista prático visando as opções de tratamento das doenças
causadas pelas MNT, não há vantagem na identificação das espécies
b) Os testes fenotípicos - baseados no índice de crescimento, pigmentação
das colônias e testes bioquímicos são os mais utilizados na rotina de
laboratórios de micobacteriologia no Brasil
c) A Cromatografia líquida de alta performance ( high-performance liquid
chromatography – HPLC) é um método adequado para identificação e
distinção entre as espécies das MNT de crescimento rápido (M.
abscessus, M. chelonae e M. fortuitum)
d) As sondas genéticas comerciais estão disponíveis para identificação da
maioria das espécies de MNT
e) A análise da sequência que codifica o 16S do DNA ribossamal é um
método adequado para a distinção ente M. abscessus e M. chelonae
Devido às diferenças de susceptibilidade antimicrobiana que determinam as
opções de tratamento, a identificação das espécies de MNT é de grande importância
clínica. Os seguintes testes são usados para identificação (ou “tipificação”) das MNT:
1. Testes fenotípicos - baseados no índice de crescimento, pigmentação das
colônias e testes bioquímicos;
2. Cromatografia líquida de alta performance (high-performance liquid
chromatography – HPLC) – é um método rápido, prático para identificação de muitas
espécies de MNT de crescimento lento. Entretanto, o teste HPLC tem limitações, entre
elas: (a) o não reconhecimento de novas espécies; (b) a impossibilidade de distinção
entre as espécies das micobactérias de crecimento rápido, especialmente as do grupo M.
fortuitum (M. fortuitum e M. peregrinum) e do grupo M. abscessus (M. abscessus e M.
chelonae);
3. Métodos genotípicos – (a) Sondas comerciais - existem sondas genéticas
específicas, comercialmente disponíveis, para identificação rápida das espécies do
Complexo M. avium (separação entre M. avium e M. intracellulare), M. kansasii e M.
gordonae. Esse método, baseado na identificação da sequência 16S do RNA
ribossômico da micobactérias, é liberado em cerca de duas horas, mas tem como
limitação a disponibilidade de sondas apenas para algumas espécies; (b) PRA – o
método PRA é largamente utilizado na identificação de MNT e é baseado na análise da
sequência do gene que codifica a proteína hsp65. O tamanho do fragmento de restrição
é geralmente espécie específico. O método é relativamente rápido, não requer
organismos viáveis, e identifica muitas espécies de MNT que não são identificáveis por
técnicas fenotípicos ou por HPLC; (c) Análise de sequência de DNA - para
identificação de micobactérias utiliza-se a análise da sequência que codifica o 16S do
DNA ribossomal. Uma limitação desse método é que ele não permite a diferenciação
entre algumas espécies geneticamente similares, especialmente as MNT de crescimento
rápido (como a distinção ente M. abscessus e M. chelonae).
Resposta correta: b
4. Considerando os princípios básicos na composição de um regime adequado
de tratamento da TBMR, assinale a alternativa correta:
a) Associação de pelo menos 4 fármacos com comprovada eficácia
antimicobacteriana, sendo 3 deles, de preferência, não utilizados
anteriormente
b) Utilização de uma fluoroquinolona com ação anti-TB (ofloxacina,
levofloxacina ou ofloxacina), em regime de duração de 12 meses
c) A utilização de um fármaco injetável (estreptomicina, amicacina,
canamicina ou capreomicina) não é uma recomendação consensual na
composição do regime de tratamento
d) Utilização de fármaco injetável (estreptomicina, amicacina, canamicina
ou capreomicina) por período de 2 meses
e) No Brasil, o tratamento para TBMR é individualizado, com duração de
12 meses, e conduzido em unidades de referência terciária
Alguns princípios básicos devem ser observados na composição de um regime
adequado de tratamento para TBMR, entre eles:
• Associação de pelo menos 4 fármacos com comprovada eficácia
antimicobacteriana, sendo 3 deles não anteriormente utilizados
• Utilização de uma quinolona com ação anti-TB (ofloxacina, levofloxacina ou
ofloxacina) – em regime de duração de 18 a 24 meses
• Utilização de um fármaco injetável (estreptomicina, amicacina, canamicina ou
capreomicina) é consensualmente recomendável (período de uso de pelo menos
6 meses)
• Tratamento prolongado (18 a 24 meses), supervisionado e em unidade terciária
de referência
No Brasil, o esquema de tratamento atualmente recomendado para caso de TBMR é
padronizado e composto de cinco fármacos, na fase intensiva, compreendendo os 6
meses iniciais (Estreptomicina, Levofloxacina, Etambutol, Pirazinamida e Terizidona).
Na segunda fase, de manutenção, são utilizados 3 fármacos (Levofloxacina, Terizidona
e Etambutol), com duração de 12 meses. Assim, a duração total do tratamento é de 18
meses.
Resposta correta: a
O paciente em questão completou os 18 meses de tratamento com bom estado
geral, níveis glicêmicos controlados e controles bacteriológicos, após término de
tratamento, negativos nos dois anos que se seguiram a alta por cura.
Radiografia de tórax pós-tratamento para TBMR – comparativamente, nota-se
aspecto compatível com lesões cicatriciais. Presença de cavidades bilaterais de paredes
finas e redução volumétrica do pulmão esquerdo.
Referências bibliográficas
1. Sociedade Brasileira de Pneumologia e Tisiologia. Tuberculose. Rio de Janeiro:
Editora Guanabara Koogan LTDA, 2011.
2. Sociedade brasileira de Pneumologia e Tisiologia. III Diretrizes em Tuberculose
da SBPT. J Bras Pneumol. 2009; 35(10) 1018-48.
3. World Health Organization. Anti-tuberculosis drug resistance in the world:
fourth global report. Global Project on Anti-Tuberculosis Drug Resistance
Surveillance 2002–2007. Geneva, 2008.
4. World Health Organization. Guidelines for the programmatic management of
drug-resistant tuberculosis – emergency update. Geneva: World Health
Organization, Stop TB Department; 2008.
5. World Health Organization. Multidrug and extensively drug-resistant tb (m/xdrtb): 2010 global report on surveillance and response. Geneve: World Health
Organization; 2010.
6. Griffith DE, Aksamit T, Brown-Elliott BA et al. An official ATS/IDSA
statement: diagnosis, treatment, and prevention of nontuberculous mycobacterial
diseases. Am J Respir Crit Care Med. 2007; 175:367-416.
7. Dalcolmo MP, Fortes A, Melo FF, Motta R, Ide Netto J, Cardoso N, et al.
Estudo de efetividade de esquemas alternativos para o tratamento da tuberculose
multirresistente no Brasil. J Pneumol. 1999;25(2):70-7.
8. Zhang Y, Young D. Molecular genetics of drug resistance in Mycobacterium
tuberculosis. J Antimicrob Chemother. 1994;34(3):313-9.
9. Heym B, Saint-Joanis B, Cole ST. The molecular basis of isoniazid resistance in
Mycobacterium tuberculosis. Tuber Lung Dis. 1999; 79: 267-71.
10. Orenstein EW, Basu S, Shah NS, Andrews JR, Friedland GH, Moll AP, Gandhi
NR, Galvani AP. Treatment outcomes among patients with multidrug-resistant
tuberculosis: systematic review and meta-analysis. Lancet Infect Dis.
2009;(3):153-61.
11. Hofling CC, Pavan EM, Giampaglia CM, Ferrazoli L, Aily DC, de Albuquerque
DM, et al. Prevalence of katG Ser315 Mycobacterium tuberculosis isolates from
Brazil. Int J Tuberc Lung Dis 2005; 9:87-93
12. Torkko P, Suutari M, Suomalainen S, Paulin L, Larsson L, Katila ML.
Separation among species of Mycobacterium terrae complex by lipid analyses:
comparison with biochemical tests and 16S rRNA sequencing. J Clin Microbiol.
1998;36:499–505.
13. Smith DS, Lindholm-Levy P, Huit GA, Heifets LB, Cook JL. Mycobacterium
terrae: case reports, literature review, and in vitro antibiotic susceptibility
testing. Clin Infect Dis. 2000;30:444–53.
14. Peters EJ, Morice R. Miliary pulmonary infection caused by Mycobacterium
terrae in an autologous bone marrow transplant patient. Chest. 1991;100:1449–
50.
15. Palmero DJ; Teres RI; Eiguchi K. Pulmonary disease due to Mycobacterium
terrae.Tubercle. 1989;70(4):301-3.
16. Shanker SV, Jain NK, Chandrasekhar S and Singh MM. Prevalence of atypical
mycobacteria in sputum of patients undergoing treatment at a tuberculosis clinic.
Indian J Chest Dis Allied Sci. 1989;31:9-13.
17. Leite CQ, Viana BHJ, Leite RA and Juarez E. Incidence of mycobacterium
tuberculosis and other mycobacteria on pulmonary infections in Araraquara-SP.
Rev Microbiol. 1995;26:101-5
18. Zamarioli LA; Coelho ABV; Pereira CM; Ferrazoli L; Bammann RH.
Identificação laboratorial de micobactérias em amostras respiratórias de
pacientes HIV-positivos com suspeita de tuberculose. Rev. Soc. Bras. Med.
Trop. 2009;42(3):290-297
19. Matos ED, Santana MA, Santana MC, NogueiraPC, Bezerra BL, Panão ED,
Schitini Filho CS, Lemos ACM. Nontuberculosis mycobacteria at a
multiresistant tuberculosis reference center in Bahia: clinical epidemiological
aspects. Braz J Infect Dis. 2004;8(4):296-304.
20. Ferreira RM, Saad MH, Silva MG and Fonseca L de S. Non-tuberculous
mycobacteria I: one year clinical isolates identification in Tertiary Hospital Aids
Reference Center, Rio de Janeiro, Brazil, in pre highly active antiretroviral
therapy era. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2002;97:725-9.
21. Martins AB, Matos ED, Lemos AC. Infection with the Mycobacterium avium
complex in patients without predisposing conditions: a case report and literature
review. Braz J Infect Dis. 2005;9(2):173-9.
22. Conde MB, Figueira CM, Moraes R, Fonseca LS, Deriemer K and Kritski AL.
Predictive value of the acid fast smear for detection of Mycobacterium
tuberculosis in respiratory specimens in a reference center of HIV/AIDS in Rio
de Janeiro, Brazil. Mem Inst Oswaldo Cruz 1999;94:787-90.
23. Griffith DE, Girard WM, Wallace RJ Jr. Clinical features of pulmonary disease
caused by rapidly growing mycobacteria: an analysis of 154 patients. Am Rev
Respir Dis. 1993;147:1271.
24. Matos ED, Lemos AC, Bittencourt C, Mesquita CL. Anti-tuberculosis drug
resistance in strains of Mycobacterium tuberculosis isolated from patients in a
tertiary hospital in Bahia. Braz J Infect Dis. 2007;11(3):331-8.
25. Silva MS, Senna SG, Ribeiro MO, Valim AR, Telles MA, Kritski AL, et al.
Mutations in KatG, inhA and ahpC genes of Brazilian isoniazid resistant isolates
of Mycobacterium tuberculosis. J Clin Microbiol. 2003;41(9):4471-74.
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