GRUPO HOSPITALAR CONCEIÇÃO
HOSPITAL NOSSA SENHORA DA CONCEIÇÃO
LABORATÓRIO DE ANÁLISES CLÍNICAS
HIGIENIZAÇÃO DE MATERIAIS
Procedimento Operacional Padrão
Data da 1ª versão: 21/07/2014
Versão: 1.0
Data da efetivação: 08/08/2014
POP: L 62
Página 1 de 7
Elaborado por: Maria do Carmo F. Revisado por: Mara Liane Riek Silveira, Cíntia Cichowski Aprovado por: Andréa Cauduro
Pereira
dos Santos, Antônio do Amaral Batista, Denise Stürmer.
1. Objetivo:
Descrever os processos de descarte, lavagem e secagem dos materiais utilizados nos setores do laboratório.
2. Aplicabilidade:
Auxiliar geral, auxiliar de limpeza e esterilização (em extinção), auxiliar de laboratório, bioquímico e
coletador.
3. Definição de Termos:
3.1 Descontaminação: processo que tem por finalidade reduzir o número de microrganismos presentes
nos materiais, recipientes e superfícies utilizando um produto germicida, antes de iniciar o processo de
limpeza, de modo a torná-los seguros para o manuseio, oferecendo menor risco ocupacional.
3.2 Limpeza ou Higienização: processo de remoção mecânica de resíduos (sujidade e matéria orgânica)
de qualquer superfície, mediante ação mecânica, com a utilização de água e desengordurante. A limpeza
sempre deve anteceder os procedimentos de desinfecção ou esterilização. Se esta etapa prévia do processo
apresentar falha, qualquer agente, químico ou físico para esterilização, será ineficaz.
3.3 Desinfecção: processo de destruição de microrganismos na forma vegetativa e algumas formas
esporuladas, presentes em superfícies inertes, mediante a aplicação de agentes físicos ou químicos.
3.4 Esterilização: processo físico ou químico que destrói todas as formas de vida microbiana, ou seja,
bactérias na forma vegetativa e esporulada, fungos, vírus, a tal ponto que não seja mais possível detectá-los
em meio de cultura padrão no qual previamente haviam proliferado (presentes em algum material ou
instrumento). Um artigo é considerado estéril quando a probabilidade de sobrevivência dos
microrganismos que o contaminavam for menor do que 1:1.000.000.
Método utilizado no LAC: calor úmido (autoclave) que através do vapor saturado sob pressão
promove seu efeito biocida quando ocorre a transferência do calor latente do vapor para os
materiais. O calor então é transferido através de penetração nos materiais e age coagulando
proteínas celulares e inativando os microorganismos (resíduos e meios de cultura).
3.5 Reesterilização: esterilização realizada novamente.
3.6 Reprocessamento: processo que envolve a limpeza, enxague, secagem e esterilização de um material
já utilizado, a fim de permitir sua reutilização.
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4. Descrição:
4.1
Produtos e orientação para uso:
Código
30902 (1 litro)
Álcool 70 %
Material
32689 (1 litro)
Hipoclorito 1.0 %
Uso
Desinfecção - pronto para uso
Descontaminação e desinfecção
- pronto para uso
24719 (5 litros) Detergente líquido desengordurante,
Limpeza Geral - diluído no laboratório
biodegradável, sem aroma, atóxico.
0.7 a 2 % (7 a 20 mL/L de água), de acordo
Responsável: Kelen / Ramal: 2705
com a sujidade do material.
Estabilidade: de acordo com o prazo de validade estipulado no rótulo.
Armazenamento: conservados a temperatura ambiente e longe de fonte de combustão.
Rótulo: com dados de identificação, composição, concentração, procedência, número do lote, validade.
4.2 Equipamentos:
Estufas para secagem da vidraria e plásticos e autoclaves.
4.3 Procedimento:
4.3.1 Procedimentos internos dos setores técnicos:
4.3.1.1 Microbiologia:
1. Descartar em saco branco leitoso, após estocados no setor por 72 horas, as amostras clínicas tais como
secreções, líquidos, líquor, respiratórios, biópsias (coletadas em swabs ou frascos descartáveis). Com
exceção das amostras dermatológicas de pele, pêlo e unha (micológicos) que devem ser conferidas no
LIS antes do descarte (em torno de 20 dias).
2. Descartar na bancada da esterilização as estantes de urinas aliquotadas (frascos descartáveis e/ou
frascos reprocessados) e os frascos de urina depois de estocados no setor por 48 horas.
3. Descartar os tubos ou frascos de vidro em recipientes próprios que estão localizados nas bancadas de
trabalho ou diretamente na bambona específica revestida com saco para autoclave (que encontra-se ao
lado da autoclave da esterilização).
4. Encaminhar para o setor de esterilização os tubos de suspensões. Acrescentar ao recipiente
encaminhado hipoclorito de sódio 1%.
5. Segregar em bacias com saco para autoclavação as placas e tubos de cultura, frascos positivos de
hemocultura, cartões do VITEK. Fechar e descartar no carrinho específico para este fim
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(colaboradores do setor), higienizar as bacias com gaze embebida em álcool 70%. Autoclavar
conforme o fluxo do POP L50 V/R: 4.0 item 4.1 – Resíduo tipo A1 (página 4).
6. Descartar os resíduos das CSB localizadas na entrada do setor em recipientes próprios para esse fim.
Na bancada da urina além dos citados acima, utilizar um para recipientes resíduos comum (etiquetas).
7. Material da sala da CSB :
Os resíduos líquidos devem ser descartados em recipientes específicos com hipoclorito de
sódio 1%. Perfurocortantes como palitos, alças bacteriológicas, laminas e lamínulas são
descartadas em recipiente com saco plástico, que deve ser fechado (amarrado ou grampeado).
Após, devem ser colocados em recipiente com saco para autoclavação e são autoclavados na
unidade geradora (plantão noturno), antes do descarte ou da limpeza.
Perfurocortantes como agulhas, bisturis, lacres aluminizados, vidros de insumos não
reutilizáveis (suplemento CBK) são descartados diretamente em caixas especificas para
perfurocortantes.
Todos os materiais que não foram relacionados acima (incluindo os recicláveis) são,
obrigatoriamente, descartados em saco branco leitoso. Ex: gaze, embalagens, etiquetas, etc.
8. Materiais permanentes (pinças e outros) utilizados para a coleta e a avaliação de exames micológicos
ver Manual de Coleta da Microbiologia.
4.3.1.2 Hematologia:
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
Retirar (auxiliares) da geladeira os tubos contendo sangue para hemograma que foram armazenados
por 24 horas e colocar sobre a pia.
Armazenar (bioquímicos) os frascos contendo sobras de líquidos biológicos ou líquor (devidamente
fechados) na bandeja metálica que se encontra na bancada da citologia.
Descartar (bioquímicos) dentro de um pote com hipoclorito 1%, as ponteiras, pipetas de vidro, tubos
de vidro e plásticos de citocentrífuga.
Os frascos contendo fezes após o preparo são encaminhados ao setor de esterilização pelo próprio
auxiliar do setor, em saco branco. Após a realização dos exames, os frascos que ficam sobre a pia da
sala do EPF devem ser recolhidos após autorização pelo Bioquímico.
Auxiliar geral: recolher os itens 1,2,3, no período da manhã. O item 4 somente após a liberação pelo
Bioquímico que realizou os exames.
Desprezar (bioquímicos) os tubos fechados contendo sangue para exames de coagulação (tampa azul),
em saco branco no final da rotina.
Colocar as lâminas de hemogramas (bioquímicos) em bombona branca para serem descartadas como
químico (após armazenagem por 1 semana).
Descartar os perfurocortantes nas caixas próprias que, quando cheias até 2/3 devem ser fechadas.
Serviço de Limpeza (terceirizado): recolher os itens 7 e 8.
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4.3.1.3 Imunologia:
1.
2.
3.
4.
Colocar no balcão do setor (auxiliar e bioquímicos) as estantes pretas com tubos sem tampa nas quais
estão armazenadas as amostras de sangue já processadas que estavam estocadas dentro das caixas
plásticas com tampa identificadas por dia e por equipamento até 7 dias.
Descartar o material de uso diário em potes pequenos que se encontram nas bancadas e que estão
identificados como “ponteiras” e “tampas e tubos”. Após, transferir estes materiais para potes maiores
identificados como “ponteiras” e “tampas e tubos”.
Descartar tubos de sangue com tampa e tubos tipo Falcon contendo material de aspirados nasofaríngeos no pote identificado como “ tubos com tampa”.
Auxiliar geral: descartar os tubos de sangue com tampa em lixeira com saco branco leitoso; os sem
tampa ou quebrados em caixa de perfurocortante previamente revestida com saco branco leitoso, que
será lacrado. Os potes com materiais que devem ser lavados devem ser encaminhados para o setor de
higienização de materiais.
4.3.1.4 Bioquímica: destino pós-análise e descarte (POP B110 - Amostras Biológicas):
1.
2.
3.
4.
5.
Colocar em estantes dentro de caixas plásticas identificadas (ambulatório, hospital, emergência, HCR,
hormônios, diversos) os tubos de sangue sem anticoagulante e com gel separador (tampa amarela) e
tubos de sangue com anticoagulante fluoreto (tampa cinza), tubos de sangue com anticoagulante
EDTA (tampa roxa), Líquidos (pleural, ascite, sinovial...) e amostras de urina de 12h e de 24h (caixa
identificada - urinas). Devem ficar no Setor de Bioquímica até o início da rotina do dia seguinte,
momento em que são transportadas através de um carrinho específico pelo auxiliar de laboratório para
o setor de higienização de materiais, onde permanecem por 24h, antes de serem desprezados.
Desprezar no final de cada turno de trabalho no lixo contaminado (saco branco) as seringas com
sangue arterial (após a análise estas amostras servem como “banco de amostras” para serem utilizadas
na bioquímica).
Amostras de urina para EQU: ficam no setor por algumas horas, para possíveis confirmações de
resultados e, após liberação do bioquímico que está na urinálise, as amostras são desprezadas na pia e
os tubos descartáveis são colocados no lixo de saco branco. Os tubos reutilizáveis são colocados numa
estante e levados para o setor de higienização de materiais.
Colocar em potes de descarte identificados: as tampas e ponteiras contaminadas e as pipetas de vidro
e descartáveis. Os potes são oriundos do setor higienização de materiais, com sabão líquido e são
substituídos diariamente.
LCRs são armazenados em estante específica (na geladeira B05), onde ficam guardados por uma
semana, antes de serem desprezados.
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4.3.1.5 Biologia Molecular:
1.
2.
Descartar ponteitas em caixa de pérfurocortantes.
Descartar pipeta Pasteur, cartuchos e tubos Falcon em saco branco leitoso.
4.3.2 Procedimentos internos do setor de Higienização de Materais (auxiliar geral):
1. Biossegurança - ver POP: L15. Usar equipamentos de proteção individual (EPI) tais como: luvas,
avental de manga longa, óculos de proteção, avental de napa (protetor), sapato fechado, luvas de raspa,
protetor para mangas. Substituir as luvas sempre que entrar em contato com sangue, fluido e secreção.
Cuidar para não tocar com as luvas sujas em superfícies, evitando contaminação. Ao retirar o material
quente do forno sempre utilizar a luva de raspa.
2. Recolher os materiais nos setores na primeira hora da manhã e no decorrer do turno de trabalho.
3. Desprezar a urina dos descartáveis na pia e segregar o frasco no saco branco leitoso sem enxágue (tanto
os de Urocultura como EQU). Os frascos a serem reprocessados devem ser colocados de molho em
detergente por 24 horas para desprender o rótulo. As estantes de urinas aliquotadas devem ser
desprezados somente após as 12 horas depois de liberada pelo setor.
4. Colocar diretamente na bambona específica revestida com saco para autoclave (que encontra-se ao lado
da autoclave), os tubos e frascos que serão reutilizados, exceto os frascos de urina. Autoclavar
(autoclave interna) conforme POL L20 V/R: 4.0 item 3.3.1 (página 2), após encaminhar para limpeza.
5. Descartar os tubos de sangue conforme POP L50 V/R: 4.0 item 4.1 – Resíduo tipo A4 (página 4).
6. Descartar diretamente em caixa para perfurocortantes as lamínulas, lâminas de diretos de fungos e
ponteiras (não lavar).
7. Lavar algumas lâminas depois de liberadas pelos setores para garantir um estoque mínimo no
laboratório. Depois de secas, selecioná-las (uma a uma). As lâminas riscadas encaminhar para a
microbiologia, para utilizar como distensora na confecção de lâminas de Gram de respiratório. As
lâminas coradas que não são lavadas devem ser descartadas como resíduo químico.
8. Frascos de meio de cultura devem ser lavados somente com água e enxaguados abundantemente
com água reagente tipo III.
9. Tampas, rolhas, tarros e outros (plásticos): quando em falta ou a quantidade em estoque estiver baixa,
devem ser lavados.
10. Lavar os frascos de corante com cuidado para não danificar o rótulo (antes de lavar colocar álcool
70% no frasco por um período de 24 horas).
11. Material com presença de matéria orgânica, tampas, rolhas, suspensão bacteriana (antibiograma),
frascos de EPF, EQU (vidro), tubos de vidro material, recipientes com solução de detergente e/ou
hipoclorito com tubos/frascos contaminados, material contaminado não segregado com detergente
(lâminas de E Q U, placas plásticas para reação de aglutinação) – devem sofrer novamente
descontaminação prévia com imersão em Hipoclorito de Sódio a 1%:
- Imergir o material na solução de hipoclorito de sódio a 1%, no mínimo por 60 minutos.
- Retirar da solução com hipoclorito de sódio 1% e processar a limpeza com imersão do material.
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-
Imergir completamente o material na solução com detergente líquido desengordurante na
concentração de 0.7 a 2 % (7 a 20 mL/L de água), de acordo com a sujidade do material, no
mínimo por 60 minutos.
- Retirar da solução lavar manualmente um a um, esfregando interna e externamente (ação
mecânica com escova ou fibra de uso geral).
12. Enxaguar abundantemente com água corrente (jato de água) para remoção dos resíduos; atenção
especial para os tubos cônicos.
13. Enxaguar abundantemente com água reagente tipo III (central de água da Bioquímica) todo o material
lavado especialmente pipetas e tubos utilizados em técnicas especiais (líquido amniótico). Colocar as
pipetas no cilindro inox, separar por volume e setor.
14. Realizar desinfecção se necessário:
- Desinfecção com imersão em álcool 70%: imergir completamente o material na solução
alcoólica, no mínimo por 30 minutos. Retirar, deixar secar em superfície limpa até a secagem total.
No caso dos plásticos desinfectar em imersão em álcool 70% e enxaguar novamente em água
reagente tipo III. Secar com compressa ou em estufa.
- Desinfecção com fricção com álcool 70%: aplicá-lo diretamente com auxílio de compressas,
friccionando até sua evaporação (ação mecânica). Repetir o processo por mais duas vezes. A
superfície deve estar limpa e seca, pois o álcool é inativado na presença de matéria orgânica.
15. Secar o material lavado conforme item 4.3.4.
16. Realizar esterilização se necessário:
- Procedimento realizado no laboratório - ver POL L20 V/R: 4.0.
- Procedimento realizado no Centro de Materiais e Esterilização (CME) / HNSC - pipetas, tubos
embuchados (P,M,G e Cônicos), tubos utilizados na técnica do líquido amniótico, tesouras e pinças
para micológicos. Devem ser embalados em papel grau cirúrgico antes de serem encaminhados.
17. Armazenar em locais limpos, secos e protegidos até o uso:
- Os tubos (P,M,G e Cônicos) guardar nas prateleiras do setor em caixas plásticas com tampa
(presilha laranja), rotuladas.
- Os tubos (P,M,G e Cônicos) que devem ser embuchados guardar na sala dos refrigeradores em
caixas plásticas com tampa (presilha azul), rotuladas.
- O material esterilizado encaminhado do CME deve ser guardado em caixa plástica rotulada com
tampa (presilha branca), localizada na sala dos refrigeradores e prateleiras.
18. Desinfectar utilizando compressa embebida em álcool 70%, as caixas plásticas utilizadas para estoque
de materiais biológicos, bacias, potes e estantes dos setores do laboratório toda vez que forem
desocupadas. Quando necessário lavar com água, detergente, esponja e desinfectar utilizando
compressa embebida em álcool 70%.
19. Manter as superfícies de contato com material biológico sempre limpa, lavar as bancadas (pias) com
esponja, detergente, água e após realizar desinfecção com compressa embebida em álcool 70%.
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Obs: Atenção: produtos químicos não devem ser misturados, portanto o detergente desengordurante
diluído não deve ser misturado a nenhum outro produto.
4.3.4 Secagem:
- Utilizar as estufas estipuladas na tabela abaixo para secagem de material.
Patrimônio: 118041 M 04
Patrimônio: s/ patrimônio E 05
Fabricante: FANEN
Fabricante: FANEN
Materiais: vidraria
Materiais: plásticos
Temperatura: 110 a 120°C
Temperatura: 50°C (secar a temperatura
ambiente ou a temperatura de até 50°C)
Tempo: 60 minutos ou mais se necessário.
Tempo: 24 horas
(temperaturas altas danificam o vidro).
Intervalo: todos os dias
Intervalo: todos os dias
5.3.5 Descarte dos resíduos: ver POP L50 V/R: 4.0.
5. Bibliografia:
1. Manual de limpeza, desinfecção, esterilização e anti-sepsia CIH/HNSC – 2004.
2. Rodrigues, Mendonça, Amarante, Alves Filho, Grinbaum, Richtmann – Infecções Hospitalares
Prevenção e Controle – São Paulo – 1997 – Brasil, Editora Sarvier
3. Ministério da Saúde - Processamento de Artigos e Superfícies em Estabelecimentos de Saúde –
Brasília – DF, 1994 - 2º edição.