Workshop de Estudos Avançados em Sinalização
Celular: Em busca de novos fármacos e
biomarcadores
11 a 19 de Novembro de 2013
Proponente
Prof. Dr. Rodrigo R Resende, Pesquisador 2 CNPq
Professor do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Presidente da Sociedade Brasileira de Sinalização Celular
UNIVERSIDADE FEDERAL DE MINAS GERAIS
Instituto de Ciências Biológicas
Programa de Pós-Graduação em Bioquímica e Imunologia (Capes 7)
Programa de Pós-Graduação em Fisiologia e Farmacologia (Capes 7)
Programa de Pós-Graduação em Biologia Celular (Capes 5)
&
SOCIEDADE BRASILEIRA DE SINALIZAÇÃO CELULAR
&
SOCIEDADE BRASILEIRA DE BIOFÍSICA
Abril/2013
1
ORGANIZADORES
1 - Prof. Dr. Rodrigo Ribeiro Resende, Pesquisador 2 CNPq
http://lattes.cnpq.br/6557925158692257
Professor Adjunto do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Coordenador do Laboratório de Sinalização Celular e Nanobiotecnologia
Presidente da Sociedade Brasileira de Sinalização Celular
2- Prof. Dr. Jader Santos Cruz, Pesquisador 1D CNPq
http://lattes.cnpq.br/2743748135395821
Professor Associado do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Coordenador do Laboratório de Eletrofisiologia
Presidente da Sociedade Brasileira de Biofísica
COLABORADORES
3- Prof. Dr. Luiz Renato França, pesquisador 1A CNPq
http://lattes.cnpq.br/7650827760595090
Professor Titular do Departamento de Morfologia, ICB, UFMG
Laboratório de Biologia Celular
3.1- Prof. Dr. Guilherme Mattos Jardim Costa
http://lattes.cnpq.br/5177980302323822
Professor Adjunto do Departamento de Anatomia, ICB, UFMG
Laboratório de Biologia Celular
3.2- Dra. Samyra Maria dos Santos Nassif Lacerda, Bolsista de Pós-Doutorado
http://lattes.cnpq.br/0908278819363897
Laboratório de Biologia Celular
3.3- Doutoranda Marcela Santos Procópio
http://lattes.cnpq.br/0387461416058447
Laboratório de Biologia Celular
3.4- Mestrando Carolina Felipe Alves de Oliveira
http://lattes.cnpq.br/3745249908118586
Laboratório de Biologia Celular
4- Prof. Dr. Anderson José Ferreira, Pesquisador 2 CNPq
http://lattes.cnpq.br/2968834400361817
Professor Associado do Departamento de Morfologia, ICB, UFMG
Laboratório de Biologia Cardíaca
4.1- Dr. Luiz Gonzaga da Silva Júnior, Bolsista de Pós-Doutorado
http://lattes.cnpq.br/3248100926329175
Laboratório de Biologia Cardíaca
5- Profa. Dra. Silvia Guatimosim, Pesquisador 2 CNPq
http://lattes.cnpq.br/7958786029463633
Professora Adjunto do Departamento de Fisiologia e Biofísica, UFMG
Laboratório de Sinalização Intracelular em Cardiomiócito
5.1- Doutoranda Cibele Rocha Resende
http://lattes.cnpq.br/9442653341289976
Laboratório de Sinalização Intracelular em Cardiomiócito
6- Prof. Dr. Aristóbolo Mendes da Silva, Pesquisador 2 CNPq
http://lattes.cnpq.br/5906229927639166
Professor Adjunto do Departamento de Morfologia, UFMG.
Laboratório de Genes da Inflamação
2
6.1- Dra. Carolina Damas Rocha, bolsista de pós-doutorado
http://lattes.cnpq.br/8653591894271109
Laboratório de Genes da Inflamação
6.2- Mestrando Brener Cunha Carvalho
http://lattes.cnpq.br/4274499330406568
Laboratório de Genes da Inflamação
6.3- IC Felipe Batista Leão
http://lattes.cnpq.br/4400312243871281
Laboratório de Genes da Inflamação
6.4- IC Isadora Mafra Oliveira
Laboratório de Genes da Inflamação
7- Prof. Dr. Gustavo Batista Menezes, Pesquisador 2 CNPq
http://lattes.cnpq.br/9202540411518668
Professor Adjunto do Departamento de Morfologia, UFMG.
Laboratório de ImunoBiofotônica
7.1- Doutorando Pedro Elias Marques Pereira Silva
http://lattes.cnpq.br/1428774065101604
Laboratório de ImunoBiofotônica
8- Prof. Dr. Carlos Delfin Chávez Olórtegui, Pesquisador 1C CNPq
http://lattes.cnpq.br/9104198360189577
Professor Associado do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Laboratório de Imunoquímica de Proteínas
8.1- Dr. Ricardo Andrez machado de Avila, Bolsista de Pós-Doutorado
http://lattes.cnpq.br/2289437376144462
Laboratório de Imunoquímica de Proteínas
9- Prof. Dr. Jader Santos Cruz, Pesquisador 1D CNPq
http://lattes.cnpq.br/2743748135395821
Professor Associado do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Presidente da Sociedade Brasileira de Biofísica
Laboratório de Eletrofisiologia
9.1- Doutorando Humberto Cavalcante Joca
http://lattes.cnpq.br/3389570364376189
Laboratório de Eletrofisiologia
9.2- IC Artur Santos Miranda
http://lattes.cnpq.br/3079623247926455
Laboratório de Eletrofisiologia
10- Prof. Dr. Alfredo Miranda de Goes, Pesquisador 1A CNPq
http://lattes.cnpq.br/8146316620840313
Professor Associado do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Laboratório de Imunologia Celular e Molecular
11- Prof. Dr. Dawidson Assis Gomes, Pesquisador 2 CNPq
http://lattes.cnpq.br/7990397233201223
Professor Adjunto do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Laboratório de Imunologia Celular e Molecular
12 - Prof. Dr. Rodrigo Ribeiro Resende, Pesquisador 2 CNPq
http://lattes.cnpq.br/6557925158692257
Professor Adjunto do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
3
Laboratório de Sinalização Celular e Nanobiotecnologia
12.1- Profa. Dra. Katia das Neves Gomes
http://lattes.cnpq.br/4123210154857568
Professora substituta da Universidade Federal de São João del Rei
Pesquisadora associada do Laboratório de Sinalização Celular e Nanobiotecnologia-ICB/UFMG
12.2 Doutorando Mauro Cunha Xavier Pinto
http://lattes.cnpq.br/0868250984727943
Laboratório de Sinalização Celular e Nanobiotecnologia
12.3- Mestrando Anderson Kenedy Santos
http://lattes.cnpq.br/9978718571943989
Laboratório de Sinalização Celular e Nanobiotecnologia
12.4- Mestranda Fernanda Maria Policarpo Tonelli
http://lattes.cnpq.br/0507679642298410
Laboratório de Sinalização Celular e Nanobiotecnologia
12.5- Mestrando Emerson Alberto da Fonseca
http://lattes.cnpq.br/7503600220038459
Laboratório de Sinalização Celular e Nanobiotecnologia
12.6- Mestrando Daniel Augusto Ferreira Silva
http://lattes.cnpq.br/6824476863814414
Laboratório de Sinalização Celular e Nanobiotecnologia
12.7- Mestranda Vânia Aparecida Mendes Goulart
http://lattes.cnpq.br/2551760863793329
Laboratório de Sinalização Celular e Nanobiotecnologia
12.8- Mestrando Ricardo Coimbra Parreira
http://lattes.cnpq.br/9015495357129798
Laboratório de Sinalização Celular e Nanobiotecnologia
13- Profa. Dra. Maria Elena de Lima Perez Garcia, Pesquisador 1C CNPq
http://lattes.cnpq.br/5642915270924367
Professora Assoaciada do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Laboratório de Venenos e Toxinas Animais
13.1- Dra. Juliana Silva Cassoli (bolsista de pós-doutorado)
http://lattes.cnpq.br/3253724609420588
Laboratório de Venenos e Toxinas Animais
13.2- Dr. Daniel Moreira Santos (bolsista de pós-doutorado)
http://lattes.cnpq.br/0109798817130552
Laboratório de Venenos e Toxinas Animais
14- Profa. Dra. Luciana de Oliveira Andrade
http://lattes.cnpq.br/4050897100676302
Professora Adjunto do Departamento de Morfologia, UFMG.
Laboratório de Biologia Celular e Molecular
14.1- Mestranda Dina Pedersane Nunes de Castro
http://lattes.cnpq.br/4259439300563960
Laboratório de Biologia Celular e Molecular
14.2- Doutoranda Patrícia Pereira da Silva
http://lattes.cnpq.br/3820199032136270
Laboratório de Biologia Celular e Molecular
4
Formas de Patrocinar:
A fim de viabilizar a realização do evento, estipulamos cotas de patrocínio e apoio que estão sendo
negociadas:
GOLD – Valor R$ 9.000,00
Reciprocidade:
Espaço para divulgação da empresa (Stande Médio).
Uma manhã inteira para apresentação de técnicas e seus produtos. Necessariamente tem que haver a
explicação e aplicação da técnica. Para apresentação da empresa durante o evento. E demonstração de
algum equipamento
Material institucional fornecido pela empresa será distribuído.
Logomarca destacada como patrocinador GOLD na página do evento.
Logomarca no material distribuído e no banner.
3 inscrições no workshop (Hospedagem não incluída).
SILVER –Valor R$ 5.000,00
Reciprocidade:
60 min. Para apresentação da empresa durante o evento. . E demonstração de algum equipamento
Material Institucional fornecido pela empresa será distribuído.
Logomarca destacada como patrocinador SILVER na página do evento.
Logomarca no material distribuído e no banner.
2 Inscrições no workshop (Hospedagem não incluída).
GERAL – Valor R$ 2.000,00
Reciprocidade:
Material institucional fornecido pela empresa será distribuído.
Logomarca na página do evento.
Logomarca no material distribuído e no banner.
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Sumário
1 – INTRODUÇÃO - Objetivos, abrangência e justificativa ................................................................... 7
2 - PROGRAMAÇÃO DO EVENTO – WORKSHOP CONFERÊNCIAS E PRÁTICAS ..................... 8
2.1 Mapeamento de epítopos usando técnicas Proteômicas, biologia molecular e Bioinformática:
Biomarcadores e novos fármacos ......................................................................................................... 8
2.2 – Manipulação subcelular de sinais de Ca2+ utilizando adenovírus modificados ........................... 9
2.3 – Eventos globais versus locais de Ca2+ em cardiomiócitos ventriculares relacionados à
hipertensão cardíaca ............................................................................................................................ 10
2.4 – Ensaios eletrofisiológicos com a técnica de “whole cell patch-clamp” para caracterização de
novos fármacos ................................................................................................................................... 11
2.5 – Sinalização do Estresse do Retículo Endoplasmático: Ensaios de drogas anti-espécies reativas
de oxigênio .......................................................................................................................................... 12
2.6 - Imunidade intravascular hepática: visualização por microscopia intravital confocal de doenças
hepáticas .............................................................................................................................................. 13
2.7 – Microscopia Confocal como ferramenta para estudo da Sinalização Celular em neurônios ..... 14
2.8- Proteômica e Toxinologia: Biomarcadores e novos fármacos .................................................... 15
2.9- Transplante de células-tronco espermatogoniais: abordagens biotecnológicas para preservação
de espécies e uso como biorreatores ................................................................................................... 16
2.10- Interação parasito-hospedeiro, buscando compreender como T. cruzi subvertem processos
celulares para o estabelecimento da infecção ..................................................................................... 17
2.11- Sinalização Intracelular de Fatores Vasoativos: Biomarcadores para hipertensão ................... 18
3 - Financiamento aos estudantes............................................................................................................ 18
4 - Critérios de seleção ............................................................................................................................ 19
5 - Cronograma detalhado ....................................................................................................................... 20
6 – CUSTO.............................................................................................................................................. 21
7 – RESUMO .......................................................................................................................................... 21
6
1 – INTRODUÇÃO - Objetivos, abrangência e justificativa
A UNIVERSIDADE FEDERAL DE MINAS GERAIS juntamente com a SOCIEDADE BRASILEIRA DE
SINALIZAÇÃO CELULAR e SOCIEDADE BRASILEIRA DE BIOFÍSICA têm o prazer de organizar o
“Workshop de Estudos Avançados em Sinalização Celular: Em busca de novos fármacos e
biomarcadores”. Um workshop voltado para os últimos avanços da ciência e tecnologia no estudo
da sinalização celular de organismos unicelulares aos multicelulares, passando pelas leveduras,
protozoários até aos mamíferos. Em relação aos seres humanos serão temas de palestras e
conferências os últimos avanços nas tecnologias para recuperação dos tecidos ósseos, hepáticos,
cardíacos e neurais, desvendando as vias que controlam a proliferação e diferenciação de célulastronco em tecidos específicos.
O OBJETIVO do Workshop é, principalmente, de contribuirmos na capacitação de programas de
pós-graduação ainda não consolidados de todo o Brasil, além de atualizar alunos e professores
nas diversas novas tecnologias que o ICB-UFMG apresenta e propagar o conhecimento dos 11
grupos de pesquisa do ICB-UFMG envolvidos neste Workshop de Estudos Avançados em
Sinalização Celular com enfoque Biotecnológico, na pesquisa de biomarcadores e identificação e
caracterização de novos fármacos. Também o é a formação de novas parcerias entre nossos
grupos e outros do Estado de Minas Gerais, através dos alunos e/ou professores participantes do
Workshop.
Iremos tratar dos últimos avanços nos campos relacionados acima, reunindo pesquisadores
reconhecidos, estudantes de doutorado, pós-doutorandos, pesquisadores-juniores e alunos de
graduação. O Workshop irá contar com uma coleção ilustre de palestrantes além de atividades
práticas para todos os alunos.
Contando com o apoio da FAPEMIG estaremos disponibilizando o ensino prático desde a síntese
de peptídeo, cultura de células-tronco e cultura primária de cardiomiócitos e hepatócitos,
investigação através de microscopia confocal e intravital, produção de adenovírus para
endereçamento em compartimentos subcelulares específicos, transfecção gênica e transplantes
de gônadas, todos os tópicos com enfoque para aplicação Biotecnológico para o estudo e
7
caracterização de novos fármacos e identificação de biomarcadores para doenças cardíacas,
hepáticas, neuronais e outras. Para cada um dos temas haverá palestras e conferências com
especialistas de cada área.
Treinar alunos de pós-graduação dos diversos laboratórios do Brasil para que possam aplicar
seus conhecimentos nos laboratórios onde realizam suas pós-graduações, estreitar laços entre os
pesquisadores de diversas partes do Brasil e oferecer conhecimentos aplicados e atuais sobre
teoria e prática em sinalização celular.
Os alunos selecionados terão que apresentar pôster do seu trabalho de pós-graduação.
2 - PROGRAMAÇÃO DO EVENTO – WORKSHOP CONFERÊNCIAS E PRÁTICAS
O Workshop será realizado durante 8 dias, no auditório “Baeta Viana” do ICB da UFMG. O evento
constará de palestras e conferências, além de demonstrações práticas apresentadas por
pesquisadores convidados, de atuação destacada nas diversas áreas de pesquisa científica
multidisciplinares que compõem o evento, organizado nas seguintes sessões:
2.1 Mapeamento de epítopos usando técnicas Proteômicas, biologia molecular e Bioinformática:
Biomarcadores e novos fármacos
Conferencistas: Prof. Dr Carlos Delfin Chávez Olórtegui e Dr. Ricardo A. Machado de Ávila
Laboratório de Imunoquímica de Proteínas Dep. Bioquímica e Imunologia, ICB/ UFMG, Belo
Horizonte.
A antigenicidade das proteínas reside em diferentes tipos de determinantes
antigênicos conhecidos como epitopos contínuos e descontínuos, criptotopos, neotopos e
mimotopos. A obtenção de informações sobre a região protéica reconhecida por um
anticorpo pode ser dada por uma variedade de técnicas, incluindo o reconhecimento do
anticorpo por antígenos específicos ou recombinantes mutados, fragmentos de antígenos
purificados após digestão enzimática, peptídeos sintéticos preditos por algoritmos, dentre
outros. Os principais métodos de identificação de epitopos são métodos imunoquímicos,
8
como o método de SPOT, estudos de cristalografia de raios-X ou RNM e métodos de predição
computacional. Apesar da técnica de cristalografia ser a mais eficiente na identificação de
epitopos, ela é uma técnica cara, que necessita de uma grande quantidade de amostra com
um alto grau de pureza, além de ser uma técnica geralmente demorada e nem sempre se
obtêm resultados. Sendo assim, vários programas de bioinformática para identificações de
epitopos ou mimotopos vêm sendo desenvolvidos a partir de dados estruturais, físicoquímico e biológicos do antígeno e das interações antígeno-anticorpo, facilitando o
mapeamento dos epitopos para sua posterior validação. Nesta sessão do Workshop iremos
abordar estas técnicas e as vantagens e desvantagens em utiliza-las. No primeiro dia,
daremos uma introdução a bioquímica mostrando a importância das propriedades química
de cada aminoácidos. No segundo dia iremos abordar as técnicas laboratoriais como SPOT,
Phage Display, sínteses de peptídeos. No terceiro dia mostraremos alguns métodos de
bioinformática e o que se deve levar em conta ao analisar seus resultados. Ao final
acreditamos que o aluno irá sair com um conhecimento para trabalhar com epítopos em
qualquer área de interesse.
2.2 – Manipulação subcelular de sinais de Ca2+ utilizando adenovírus modificados
Conferencistas: Prof. Dr. Rodrigo R Resende, Mestrando Emerson Alberto da Fonseca,
Mestranda Bruna Raphaela Sousa
Laboratório de Sinalização Celular e Nanobiotecnologia Dep. Bioquímica e Imunologia, ICB/
UFMG, Belo Horizonte.
Elevações de Ca2+ citoplasmáticas, tais como aquelas observadas em cardiomiócitos,
hepatócitos e células-tronco controlam processos específicos em cada tipo celular, como
contração muscular, secreção de enzimas digestivas, diferenciação e divisão celular.
Entretanto, funções distintas em um tipo celular devem ser reguladas por outros sinais de
Ca2+ subcelulares, Embora a elevação global de Ca2+, que é visualizada como uma onda de
Ca2+, existem sinais de Ca2+ altamente localizados como aqueles observados no núcleo,
mitocôndria, retículo e em subdomínios do citosol.
Ca2+ nuclear
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O (Ca2+n) é amarzenado dentro de cisternas do envelope nuclear e suas extensões
intranucleares, o retículo nucleoplasmático. O Ca2+ nuclear é responsável pela ativação local
de fatores de transcrição e proteínas quinases e está diretamente envolvido no controle da
expressão gênica e proliferação celular.
Ca2+ Mitocondrial
Sinais de (Ca2+mit), no entanto, regulam o metabolismo energético e, mais notavelmente, a
apoptose. A mitochondria tem sido demonstrada agir como uma barreira tamponante de Ca2+
ajudando a modular a resposta global de Ca2+.
Diferentes métodos têm sido desenvolvidos para se estudar os sinais de Ca2+ subcelulares. Os
primeiros experimentos in vitro foram realizados em organelas isoladas. Usando esta
estratégia, foi estabelecido que o núcleo possui uma maquinaria para produzir InsP3 e,
consequentemente, liberar Ca2+ de uma maneira controlada.
No entanto, este método tem como principal limitação, o fato de que organelas isoladas
podem não funcionar como se estivessem em uma célula intacta. Experiências posteriores
empregaram células intactas e baseavam-se em micro-injecção de Ca2+, tais como quelantes
de BAPTA conjugado com dextranos de alta massa molecular, em compartmentos
subcelulares. Esta metodologia mostrou que a [Ca2+n] afeta diretamente a expressão gênica.
Aqui, a limitação é o pequeno número de células analisadas num dado momento. Mais
recentemente, tamponadores de Ca2+ geneticamente codificados têm sido desenvolvidos para
contornar este problema, uma vez que pode ser expresso em virtualmente todas as células a
serem analisadas. No nosso laboratório, desenvolvemos três destes quelantes de Ca2+. Uma
para tamponamento seletivo de Ca2+ nuclear, um segundo para o tamponamento de sinais
citoplasmáticos e um terceiro para estudar sinais de Ca2+ mitocondrial. Todos eles são
compostos de uma proteína de ligação de Ca2+ (parvalbumina) marcado com uma proteína
fluorescente, ou DsRed ou GFP, e fundida com uma sequência de direcionamento subcelular
apropriado. Nesta parte do Workshop, abordaremos a aplicação e desenho destes vírus, a
cultura de células-tronco de tecido adiposo, sua transfecção e posterior imageamento,
através de microscopia confocal as atividades de Ca2+ dos respectivos compartimentos.
2.3 – Eventos globais versus locais de Ca2+ em cardiomiócitos ventriculares relacionados à
hipertensão cardíaca
10
Conferencistas: Profa. Dra. Silvia Guatimosim, Doutoranda Cibele Rocha Resende.
Laboratório de Sinalização Intracelular de Cardiomiócitos Dep. Fisiologia e Biofísica, ICB/
UFMG, Belo Horizonte.
Um aumento na concentração de Ca2+ intracelular dependente do tempo ([Ca2+]i transiente)
ocorre a cada batida do coração e é responsável por ativar sua contração. A [Ca2+]i transitória
é ativada pelo potencial de ação cardíaco (PA) e se espalha através do coração com a
propagação do PA. Existem dois componentes da elevação transiente da [Ca2+]i: (i) o influxo
de Ca2+ e (ii) a liberação de Ca2+. A despolarização do PA ativa canais de Ca2+ na membrana
plasmática (principalmente do tipo L) e resulta em influxo de Ca2+. O aumento na [Ca2+]i ativa
canais de liberação de Ca2+ no retículo sarcoplasmático (RS), identificados como receptores
de rianodina (RyRs), pelo processo conhecido como liberação de Ca2+ induzida por Ca2+(CICR). Enquanto a liberação de Ca2+ é em grande parte controlada no nível (subcelular) local
(a elevação da [Ca2+]i transitória), a contração é em grande parte um processo de elevação
global da [Ca2+]i. A magnitude da elevação da [Ca2+]i transiente e sua cinética são modulados
por muitos fatores. Alguns destes fatores atuam, principalmente, sobre o influxo de Ca2+, ao
passo que outros atuam com proteínas que liberam Ca2+. Além disso, o Ca2+ que é liberado
deve ser bombeado de volta para o SR e isto ocorre através da Ca2+ ATPase SR (SERCA). Da
mesma forma, o Ca2+ que entra na célula deve ser exportado através da bomba de Na+/Ca2+,
num grau menor, a Ca2+ ATPase (SL) sarcolemal. Nesta parte do Workshop iremos medir os
eventos globais e locais de Ca2+ em cardiomiócitos ventriculares isolados empregando
estimulação de campo elétrico em 1 Hz. Nós também iremos estimular as células com
fármacos diferentes, tais como isoproterenol e endotelina e medir o seu efeito sobre a
sinalização de Ca2+ global e local, além de ensinarmos o isolamento e cultura de
cardiomiócitos de ratos.
2.4 – Ensaios eletrofisiológicos com a técnica de “whole cell patch-clamp” para caracterização de
novos fármacos
Conferencistas: Prof. Dr. Jader Santos Cruz, Doutorando Artur Miranda, Doutorando
Humberto Joca
Laboratório de Eletrofisiologia Dep. Bioquímica e Imunologia, ICB/ UFMG, Belo Horizonte.
11
Canais iónicos formam a base para o potencial de ação, a língua em que células excitáveis se
comunicam. Canais de Ca2+ são inteiramente responsáveis por despolarizações voltagem
dependentes na maioria dos músculos em vertebrados e músculos lisos em invertebrados, e
servem para manter a despolarização durante o platô do potencial de ação em músculo
cardíaco de vertebrados. Eles são de importância crucial no controle da concentração de íons
de Ca2+ nas células internas e em muitas células secretoras e nos terminais nervosos. Canais
de Ca2+ são encontrados no cérebro, músculo, e em uma variedade de outros tecidos. Eles
mostram uma diversidade considerável.
No coração normal, o ciclo de Ca2+ intracelular em cardiomiócitos é crítica para contração
mecânica do coração e relaxamento. Em uma base de batimento-batimento, a entrada de Ca2+
dependente da voltagem através de canais de Ca2+ do sarcolema (incluindo os túbulos
transversos) localmente ativa o receptor de rianodina tipo cardíaco 2 (RyR2) canais de Ca2+
encontrados em grandes aglomerados no retículo sarcoplasmático juncional através de uma
junção tipo gap muito estreita (15 nm). Além deste mecanismo existe “outros” canais
liberadors de Ca2+ intracelulares regulados diretamente pelo inositol 1,4,5-trifosfato.
A liberação de Ca2+ a partir de depósitos intracelulares mediados pelo inositol 1,4,5-trifosfato
ligantes dos receptores trifosfato de inositol 1,4,5s é um processo ubíquo, importante para o
controle de um conjunto diversificado de processos fisiológicos.
Células cardíacas e do músculo liso vascular são usadas no nosso laboratório como sistemas
modelo. Estas células são desejáveis porque são fáceis de estudar, têm uma grande variedade
de canais iónicos e têm informação de fundo rico. A técnica de fixação de membranas é usada
na configuração de célula total para estudar as correntes geradas por canais de iônicos. Neste
Workshop, descreveremos como medir de forma confiável a corrente dos canais de Ca2+ tipo
L de miócitos cardíacos sob condições de clampeamento ou fixação de voltagem.
2.5 – Sinalização do Estresse do Retículo Endoplasmático: Ensaios de drogas anti-espécies
reativas de oxigênio
Conferencistas: Prof. Dr. Aristóbolo M. Silva, Dra. Carolina (pós-doutoranda PNPD)
Laboratório de Genes da Inflamação Dep. De Morfologia, ICB/ UFMG, Belo Horizonte.
12
O objetivo deste tópico do Workshop é oferecer a alunos do programa de pósgraduação em Biologia Celular e de áreas afins uma visão teórico-prática do papel do
Retículo Endoplasmático (RE) na resposta celular ao estresse causado por diferentes agentes
agressores ou em patologias diversas. O RE é uma organela celular especializada na
modificação estrutural de vários polipeptídeos. Entretanto, o acúmulo não controlado de
polipeptídeos defeituosos no RE pode levar à ativação de uma resposta celular adaptativa
conhecida como Resposta de Proteínas Mal-formadas (UPR, do inglês Unfolded Protein
Response) que emana desta organela. A UPR envolve a expressão de um grupo de genes que
codificam chaperonas assim como a modificação de proteínas sinalizadoras de modo a
permitir que a célula se adapte ao estresse celular. Esses eventos são coordenados por uma
classe de receptores transmembrana residentes no RE que incluem as proteínas Ire1, PERK e
ATF6 que medeiam a transdução de sinal da UPR. Durante o workshop, discutiremos sobre
1) a estrutura e função desses receptores transmembrana, 2) as possíveis implicações
patológicas da ativação da via de transdução de sinal da UPR, e 3) o efeito de agentes
causadores de estresse do RE sobre as células (Atividade prática).
Se o objeto de estudo de seu projeto de Dissertação de Mestrado ou Tese de
Doutorado envolve algum agente ou condição de estresse celular, esta é uma oportunidade
interessante em que você pode trazê-lo(a) para a atividade prática e assim testarmos seu
efeito sobre o estresse do RE.
2.6 - Imunidade intravascular hepática: visualização por microscopia intravital confocal de
doenças hepáticas
Conferencistas: Prof. Dr. Gustavo Batista Menezes, Doutorando Pedro Elias Marques Pereira
Silva
Laboratório de Imunobiofotônica Dep. De Morfologia, ICB/ UFMG, Belo Horizonte.
A Falência Hepática Aguda pode ter várias causas, mas as principais são uso de
drogas/fármacos e infecções virais. Os vírus da hepatite A B e E são os principais causadores
de falência hepática em países em desenvolvimento, enquanto que a falência induzida por
drogas/fármacos prevalece nos EUA e Europa, com destaque para a hepatotoxicidade
induzida por paracetamol, que predomina nos EUA e cresce em incidência em vários países.
13
Levando em conta a inexistência de tratamentos eficazes, a baixa disponibilidade de fígados
para transplante e o custo exorbitante do cuidado médico dos pacientes, novas opções
terapêuticas seriam extremamente valiosas. Portanto, o objetivo desta sessão do Workshop é
ampliar o nosso conhecimento sobre os mecanismos da lesão hepática, possibilitando não
somente um maior entendimento da lesão hepática induzida por drogas ou medicamentos,
mas também sobre várias outras enfermidades que compartilham o componente
inflamatório da lesão estéril, como a isquemia/reperfusão (infarto do miocárdio), gota,
silicose, doença de Alzheimer, aterosclerose, dentre outras.
Preliminarmente, foi demonstrado que durante a lesão hepática estéril há um recrutamento
focal e localizado de neutrófilos para o local da lesão necrótica. De maneira interessante,
essas importantes células da resposta imune aguda se direcionam precisamente rumo à lesão
seguindo um gradiente intravascular de peptídeos derivados de células necróticas, onde vão
exercer funções de clearence e remodelamento tecidual. Estes peptídeos, provavelmente
oriundos de mitocôndrias, ativam receptores para peptídeos formilados em um ambiente
esteril, porém de uma maneira similar àquela observada em infecções microbianas. Para
aprofundar os conhecimentos nos possíveis mecanismos, usaremos como ferramenta a
técnica de microscopia intravital confocal, que permite a visualização de subtipos de
leucócitos na circulação e sua interação com o endotélio, através da avaliação do número de
leucócitos em rolamento, aderidos e transmigrados. Essa técnica será utilizada para
visualização da microcirculação hepática. Como desafios futuros, buscaremos traduzir nosso
conhecimentos utilizando um sistema in vitro com células hepáticas humanas em cultura
Uma breve explicação da microscopia intravital confocal:
O recrutamento de leucócitos é feito em diversos passos, como o mostrado na Figura 1, e é
visualizado in vivo através da exposição de algum tecido ou órgão (no caso deste projeto, no
fígado) de camundongos. O set para isso está em pleno funcionamento no ICB/ICEx.
2.7 – Microscopia Confocal como ferramenta para estudo da Sinalização Celular em neurônios
Conferencistas: Prof. Dr. Alfredo Miranda de Goes, Prof. Dr. Dawidson Assis Gomes,
Doutorando
14
Laboratório de Imunologia Celular e Molecular Dep. De Bioquímica e Imunologia, ICB/ UFMG,
Belo Horizonte.
O Ca2+ é um mensageiro intracelular ubíquo que controla vários processos tanto em células
excitáveis e não excitáveis. Em neurônios, Ca2+ regula funções incluindo diferenciação,
excitabilidade, secreção e nocicepção.
Existem numerosas vias de sinalização de Ca2+ e de sistemas que são desenvolvidos para
regular muitos processos celulares diferentes. Esta versatilidade é conseguida pela existência
de uma extensa rede de elementos de Ca2+, denominada Ca2+ tool kit, que é utilizada para
montar esses sinais específicos de células que podem proporcionar sinais de Ca2+ com as
características espaciais e temporais e que são necessárias para controlar diversas funções
celulares. A sinalização de Ca2+ neuronal pode ser estudada em células PC12 por diversas
ferramentas, como a microscopia confocal.
A Microscopia
Confocal é
uma
técnica
imagiológica
desenvolvida
primariamente
por Marvin Minsky, em 1955. Apesar do funcionamento do Microscópio Confocal ser
semelhante ao do Microscópio de fluorescência, o primeiro é utilizado para aumentar o
contraste da imagem microscópica e construir imagens tridimensionais através da utilização
de um orifício de abertura, pinhole, que permite uma grande definição de imagem em
amostras mais espessas que o plano focal.
Esta técnica tem vindo a adquirir uma grande popularidade e possui diversas aplicabilidades
na ciência, nomeadamente na obtenção de imagens de amostras vivas e de informação
computadorizada tridimensional na pesquisa biológica, na análise química e de materiais,
principalmente na área de neuroanatomia e neurofisiologia.
2.8- Proteômica e Toxinologia: Biomarcadores e novos fármacos
Conferencistas: Prof. Dr. Maria Elena de Lima Perez Garcia, Dra. Juliana Silva Cassoli (bolsista
de pós-doutorado), Dr. Daniel Moreira Santos (bolsista de pós-doutorado)
Laboratório de Venenos e Toxinas Animais Dep. De Bioquímica e Imunologia, ICB/ UFMG, Belo
Horizonte.
15
Proteoma é o conjunto das proteínas codificadas por genoma em um determinado momento
ou condição. Seu estudo permitirá, entre outras possibilidades, a identificação de novos alvos
farmacológicos, a criação de novos reagentes para diagnósticos clínicos e o desenvolvimento
de imunobiológicos de interesse socio-econômico. Toxinologia é o estudo das toxinas
(caracterização estrutural, bioquímica e biológica) e dos processos tóxicos que as
caracterizam. Desafios principais da Toxinologia: i) prospecção e caracterização de novas
moléculas bioativas; ii) caracterização taxonomica e correlações evolutivas; iii) expressão,
processamento e maturação de toxinas protéicas em glândulas de veneno. O objetivo desta
sessão do workshop será difundir a proteômica como ferramenta de investigação de novos
compostos em uma determinada amostra (venenos animais) de acordo com as seguintes
etapas: 1) Fracionamento da amostra (Cromatografia líquida); 2) Determinação uma lista de
massas (mass fingerprinting) para a amostra; 3) Isolamento e caracterização bioquímica
parcial de uma toxina. Sequenciamento primário (Edman, peptide mapping, busca em banco
de dados, sequencia nucleotídeos). Ao final, espera-se que o aluno possa responder questões
como: Qual o organismo de origem? Qual a principal atividade biológica da amostra? Quais as
aplicabilidades principais e especificas possíveis para a proteína caracterizada?
2.9- Transplante de células-tronco espermatogoniais: abordagens biotecnológicas para
preservação de espécies e uso como biorreatores
Conferencistas: Prof. Dr. Luiz Renato de França, Prof. Dr. Guilherme Mattos Jardim Costa,
Dra Samyra Nassif Lacerd (bolsista de pós-doutorado), Doutoranda Marcela Santos Procópio,
Mestrando Carolina Felipe Alves de Oliveira
Laboratório de Biologia Celular Dep. De Morfologia, ICB/ UFMG, Belo Horizonte.
O transplante de espermatogônias é uma fascinante abordagem experimental que consiste na
remoção de células-tronco do testículo de um animal doador e a transferência das mesmas
para o testículo de um receptor infértil, onde estas células irão se desenvolver e formar
espermatozóides maduros com características genéticas do doador. Esta nova e promissora
metodologia foi desenvolvida em camundongos por Brinster e colaboradores (1994) e tem se
tornado uma valiosa abordagem para se investigar a biologia da espermatogônia-tronco no
testículo, bem como caracterizar os nichos espermatogoniais e verificar os efeitos da
manipulação in
vitro na
função
das
espermatogônias-tronco.
O
transplante
de
16
espermatogônias
também
tem
proporcionado
enormes
avanços
no
estudo
da
espermatogênese em si, das interações entre células somáticas e células germinativas, além
de pesquisas na área de preservação do genoma de espécies ameaçadas de extinção e
medicina reprodutiva. Particularmente em peixes, esta técnica foi desenvolvida com sucesso
recentemente em nosso laboratório utilizando-se a tilápia-nilótica (Oreochromis niloticus)
como modelo experimental. Em conjunto, as abordagens desenvolvidas envolvendo o
transplante de células germinativas são revestidas de alto potencial na área de biotecnologia
reprodutiva e aquicultura, propiciando, por exemplo, a produção de peixes geneticamente
modificados, além de facilitar a produção de espécies nativas de alto valor comercial. Neste
contexto altamente promissor, considerando que tilápia-nilótica é a espécie de peixe de água
doce com a maior expansão da produção mundial, atualmente estamos desenvolvendo
linhagens de células tronco espermatogoniais geneticamente modificadas para a expressão
de proteína fluorescente empregando-se nanotubos de carbono como agente de transfecção
com a finalidade de, através do transplante de espermatogônias transfectadas, gerar tilápiasnilóticas transgênicas.
2.10- Interação parasito-hospedeiro, buscando compreender como T. cruzi subvertem processos
celulares para o estabelecimento da infecção
Conferencistas: Profa. Dra. Luciana de Oliveira Andrade, Mestranda Dina Pedersane Nunes
de Castro, Doutoranda Patrícia Pereira da Silva
Laboratório de Biologia Celular e Molecular Dep. De Morfologia, ICB/ UFMG, Belo Horizonte.
O objetivo desta sessão do Workshop se baseia no estudo da interação parasitohospedeiro, buscando compreender como estes organismos subvertem processos celulares
para o estabelecimento da infecção. O estudo se concentrará na interação Trypanosoma
cruzi – célula hospedeira. O T. cruzi é o agente etiológico da doença de Chagas, uma doença
crônica e debilitante, originalmente de natureza endêmica (continente Americano). Hoje,
devido ao grande fluxo de pessoas, vem sendo também considerada um problema de saúde
mundial. O T. cruzi é capaz de infectar vários tipos celulares e tanto o processo de invasão
como multiplicação celular dependem de uma série de eventos celulares específicos para seu
sucesso. Esta sessão do workshop abordará aspectos teóricos desta interação em nível
17
molecular e celular e contará também com uma parte prática envolvendo ensaios de invasão
celular e estudos em nível de microscopia de fluorescência da interação do T. cruzi com a
célula hospedeira.
2.11- Sinalização Intracelular de Fatores Vasoativos: Biomarcadores para hipertensão
Conferencistas: Prof. Dr. Anderson José Ferreira, Dr Luiz Gonzaga da Silva Júnior (bolsista
de pós-doutorado)
Laboratório de Biologia Cardíaca Dep. De Morfologia, ICB/ UFMG, Belo Horizonte.
Para apresentação do conteúdo, haverá palestra e uma conferência sobre fatores
endógenos e fármacos controladores tônicos e fásicos da atividade vascular. Os temas a serem
abordados são:
 Função vascular na manutenção da pressão arterial e participação da vasculatura na
hipertensão arterial.
 Fatores endógenos vasoativos - síntese, liberação, interação ligante-receptor, vias de
sinalização e degradação.
 Fármacos vasoativos - Farmacocinética, farmacodinâmica e vias de sinalização.
A Atividade prática consistirá da avaliação dos efeitos vasorelaxantes da acetilcolina
mediados pela interação com seus receptores muscarínicos do tipo III, antes e após do bloqueio
competitivo do receptor e das vias de sinalização intracelular, envolvendo
 Canulação de artéria e veia femorais de ratos (artéria para registro de pressão arterial e
veia para a administração de fármacos).
 Avaliação da pressão arterial através de sistema de aquisição de dados.
3 - Financiamento aos estudantes
Este projeto, especificamente enviado para este edital, oferecerá os seguintes benefícios
aos estudantes selecionados:
18

Despesas de diárias, em Belo Horizonte, para manutenção dos estudantes selecionados
que venham de outras cidades, Estados e países. Os valores das diárias praticados serão
de acordo com o estipulado pela FAPEMIG.

Estudantes selecionados que moram em Belo Horizonte não receberão recursos.

Bolsistas que tenham taxa de bancada não receberam o auxílio.
4 - Critérios de seleção
Espera-se receber 100 estudantes (50 de fora da cidade de Belo Horizonte, que terão suas
despesas pagas pelos recursos recebidos deste edital).
Este número justifica-se pelo fato de as conferências e palestras serem ministradas para
todos os estudantes e as práticas serão para grupos de 7 estudantes por laboratório (70 vagas
para o Workshop prático, sendo 50 para alunos fora da cidade de Belo Horizonte). Os estudantes
deverão apresentar seus trabalhos de pesquisa em separados em 3 sessões simultâneas de
comunicação ao final do Workshop. Em cada uma das sessões simultâneas haverá 33 alunos,
quantidade ideal para a realização de discussões profícuas sobre os trabalhos apresentados.
O Workshop destina-se prioritariamente a estudantes matriculados em cursos de Mestrado
e Doutorado, mas também serão aceitas inscrições de pesquisadores que estejam realizando
trabalhos em nível de iniciação científica e de pós-doutorado.
As palestras serão ministradas na língua portuguesa.
Os critérios de seleção serão:

Qualidade do currículo

Qualidade do resumo de seu projeto de pesquisa. Deverá ser apresentado na forma de
póster.

Pertinência do projeto de pesquisa ao tema do Workshop

Regionalidade (30% no mínimo das regiões norte de Minas Gerais, e o restante para o sul
e triângulo mineiro).
Haverá ainda uma sessão de apresentações orais realizadas por pesquisadores e alunos de
pós-graduação que trabalham com os temas relacionados acima.
19
Todos os palestrantes convidados (100%) já confirmaram sua presença.
Este simpósio visa integrar os diversos grupos do Brasil que trabalham com a sinalização
celular com cunho biotecnológico, desde a ciência básica até à aplicada. É uma grande área
que envolve tanto a Bioquímica quanto a Fisiologia Celulares e de Órgãos de competição
internacional acirrada e que, sua realização, com certeza abrirá novas colaborações e
cooperações entre os grupos existentes no Brasil.
5 - Cronograma detalhado
Palestras
e
conferên
cias
Data &
Horário
1e2
11/NOV/2013
2a. feira
08:30-18:00H
3e4
12/NOV/2013
3a. feira
08:30-18:00H
5e6
13/NOV/2013
4a. feira
08:30-18:00H
7
14/NOV/2013
5a. feira
08:30-18:00H
8e9
15/NOV/2013
6a. feira
08:30-18:00H
Assunto
- Apresentação do Workshop de Estudos Avançados em Sinalização
Celular
- Atividade prática: Mapeamento de epítopos usando técnicas
Proteômicas, biologia molecular e Bioinformática: Biomarcadores e novos
fármacos
- Atividade prática: parte 1 de 10.
- Discussão sobre a Atividade prática
- Palestra: Proteômica e Toxinologia: Biomarcadores e novos fármacos
- Palestra: Mecanismos de modificação pós-tradução de polipeptídeos no
Retículo Endoplasmático e a resposta celular de proteínas mal-formadas.
- Atividade prática: parte 2 de 10.
- Discussão sobre a Atividade prática
- Palestra: Microscopia Confocal como ferramenta para estudo da Sinalização
Celular em neurônio
- Palestra: Manipulação subcelular de sinais de Ca2+ utilizando adenovírus
modificados
- Atividade prática: parte 3 de 10.
- Discussão sobre a Atividade prática
- Palestra: Eventos globais versus locais de Ca2+ em cardiomiócitos
ventriculares relacionados à hipertensão cardíaca
- Atividade prática: parte 4 de 10.
- Discussão sobre a Atividade prática
- Palestra: Sinalização Intracelular de Fatores Vasoativos: Biomarcadores
para hipertensão
- Palestra: Ensaios eletrofisiológicos com a técnica de “whole cell patchclamp” para caracterização de novos fármacos
- Atividade prática: parte 5 de 10.
- Discussão sobre a Atividade prática
- Apresentação e discussão dos resultados
- Apresentação de pôsteres dos alunos
20
10
11
18/NOV/2013
2a. feira
08:30-18:00H
19/NOV/2013
3a. feira
08:30-18:00H
- Palestra: Plataforma de perfusão microfluídica para estudo de
sinalização celular em ambiente controlado
- Palestra: Transplante de células-tronco espermatogoniais: abordagens
biotecnológicas para preservação de espécies e uso como biorreatores
- Atividade prática: parte 6 de 10.
- Discussão sobre a Atividade prática
- Palestra: Interação parasito-hospedeiro, buscando compreender como T.
cruzi subvertem processos celulares para o estabelecimento da infecção
- Atividade prática: parte 7 de 10.
- Discussão sobre a Atividade prática
6 – CUSTO
Custeio (Total) – R$ 18.000,00
Despesas com construção do site para inscrição, panfletos para divulgação, material de escritório. Em
contrapartida todos os laboratórios irão realizar as atividades práticas utilizando recursos próprios e o
ICB-UFMG irá ceder um anfiteatro para a realização das palestras e conferências.
Diárias (Total) – R$ 28.000,00
Nosso objetivo é trazer estudantes e professores de todo o estado de Minas Gerais, ajudando-os no que for
preciso para melhorar suas pesquisas, programas de pós-graduação, realizar parcerias e difundir o
conhecimento e práticas que realizamos no ICB/UFMG, para isso, todas as despesas com hospedagem e
passagens para residentes fora de BH, explicitamente sendo do estado de MINAS GERAIS, terão suas
despesas de hospedagem e passagens pagas pelo Workshop. Como a maioria dos programas de Minas
Gerais não têm condições queremos, com este edital, permitir que venham sem grandes despesas para
eles.
Serão 50 alunos/professores de fora de BH e 7 dias de diárias, totalizando 350 diárias de R$80,00. Custo
do hotel para todos os dias.
Passagens (Total) – R$ 10.000,00
Serão 50 alunos/professores de fora de BH, como a maioria deverão ser do norte de MG, sul de MG e
triângulo mineiro regiões distantes, os custos de passagens de avião e/ou ônibus de ida/volta para 50
participantes devem ficar em uns 10 mil reais. Valores podem ser reduzidos.
Como dito para as diárias, nosso objetivo é trazer estudantes e professores de todo o estado de Minas
Geraisl, ajudando-os no que for preciso para melhorar suas pesquisas, programas de pós-graduação,
realizar parcerias e difundir o conhecimento e práticas que realizamos no ICB/UFMG, para isso, todas as
despesas com hospedagem e passagens para residentes fora de BH, exclusivamente do ESTADO DE MINAS
GERAIS, serão pagas com o financiamento pela FAPEMIG. Como a maioria dos programas destas regiões
não têm condições queremos, com este edital, permitir que venham sem grandes despesas para eles.
Total – R$56.000,00
7 – RESUMO
Público alvo: alunos de graduação e pós-graduação
Período de 9 dias: 08/11/2013 a 17/11/2013
21
Local: Instituto de Ciências Biológicas, Av. Antônio Carlos, 6627, ICB Bloco K4 sala 274, Belo Horizonte, MG
Carga Horária: 56 horas (2ª f a 6ª f das 8:30 hs às 12:30 hs e 14:00 hs às 18:00 hs)
Objetivos:
O principal objetivo é difundir fundamentos teóricos e princípios de técnicas experimentais de modo que os participantes
ganhem uma melhor compreensão sobre fenômenos envolvendo biotecnologia de biomarcadores e novos fármacos.
Palestrantes:
1 - Prof. Dr. Rodrigo Ribeiro Resende, Pesquisador 2 CNPq
http://lattes.cnpq.br/6557925158692257
Professor Adjunto do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Coordenador do Laboratório de Sinalização Celular e Nanobiotecnologia
Presidente da Sociedade Brasileira de Sinalização Celular
2- Prof. Dr. Jader Santos Cruz, Pesquisador 1D CNPq
http://lattes.cnpq.br/2743748135395821
Professor Associado do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Coordenador do Laboratório de Eletrofisiologia
Presidente da Sociedade Brasileira de Biofísica
3- Prof. Dr. Luiz Renato França, pesquisador 1A CNPq
http://lattes.cnpq.br/7650827760595090
Professor Titular do Departamento de Morfologia, ICB, UFMG
Laboratório de Biologia Celular
4- Prof. Dr. Anderson José Ferreira, Pesquisador 2 CNPq
http://lattes.cnpq.br/2968834400361817
Professor Associado do Departamento de Morfologia, ICB, UFMG
Laboratório de Biologia Cardíaca
5- Profa. Dra. Silvia Guatimosim, Pesquisador 2 CNPq
http://lattes.cnpq.br/7958786029463633
Professora Adjunto do Departamento de Fisiologia e Biofísica, UFMG
Laboratório de Sinalização Intracelular em Cardiomiócito
6- Prof. Dr. Aristóbolo Mendes da Silva, Pesquisador 2 CNPq
http://lattes.cnpq.br/5906229927639166
Professor Adjunto do Departamento de Morfologia, UFMG.
Laboratório de Genes da Inflamação
7- Prof. Dr. Gustavo Batista Menezes, Pesquisador 2 CNPq
http://lattes.cnpq.br/9202540411518668
Professor Adjunto do Departamento de Morfologia, UFMG.
Laboratório de ImunoBiofotônica
8- Prof. Dr. Carlos Delfin Chávez Olórtegui, Pesquisador 1C CNPq
http://lattes.cnpq.br/9104198360189577
Professor Associado do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Laboratório de Imunoquímica de Proteínas
9- Prof. Dr. Alfredo Miranda de Goes, Pesquisador 1A CNPq
http://lattes.cnpq.br/8146316620840313
Professor Associado do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Laboratório de Imunologia Celular e Molecular
10- Prof. Dr. Dawidson Assis Gomes, Pesquisador 2 CNPq
22
http://lattes.cnpq.br/7990397233201223
Professor Adjunto do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Laboratório de Imunologia Celular e Molecular
11- Profa. Dra. Maria Elena de Lima Perez Garcia, Pesquisador 1C CNPq
http://lattes.cnpq.br/5642915270924367
Professora Assoaciada do Departamento de Bioquímica e Imunologia, UFMG.
Laboratório de Venenos e Toxinas Animais
12- Profa. Dra. Luciana de Oliveira Andrade
http://lattes.cnpq.br/4050897100676302
Professora Adjunto do Departamento de Morfologia, UFMG.
Laboratório de Biologia Celular e Molecular
No. de vagas:
O número de participantes para as atividades práticas será limitado em 70 para garantir acesso aos equipamentos
durante as atividades experimentais, sendo 50 fora da cidade de Belo Horizonte e 20 para os da cidade de Belo
Horizonte. As palestras e conferências poderão ter mais de 200 alunos. Devido ao número de vagas limitadas será
realizada uma seleção considerando as necessidades manifestadas pelo candidato para participação no Workshop e
distribuição regional.
Importante:Os selecionados serão notificados e deverão confirmar o interesse até 05/10/2013, caso não
confirmem as vagas serão distribuídas para os alunos da lista de espera.
Atividades na parte da manhã: teoria e fundamentos
Atividades na parte da tarde: experimentos em laboratórios
Tópicos a serem abordados:
2.1 Mapeamento de epítopos usando técnicas Proteômicas, biologia molecular e Bioinformática:
Biomarcadores e novos fármacos
2.2 – Manipulação subcelular de sinais de Ca2+ utilizando adenovírus modificados
2.3 – Eventos globais versus locais de Ca2+ em cardiomiócitos ventriculares relacionados à
hipertensão cardíaca
2.4 – Ensaios eletrofisiológicos com a técnica de “whole cell patch-clamp” para caracterização de
novos fármaco
2.5 – Sinalização do Estresse do Retículo Endoplasmático: Ensaios de drogas anti-espécies reativas
de oxigênio
2.6 - Imunidade intravascular hepática: visualização por microscopia intravital confocal de doenças
hepáticas
2.7 – Microscopia Confocal como ferramenta para estudo da Sinalização Celular em neurônios
2.8- Proteômica e Toxinologia: Biomarcadores e novos fármacos
2.9- Transplante de células-tronco espermatogoniais: abordagens biotecnológicas para preservação
de espécies e uso como biorreatores
2.10- Interação parasito-hospedeiro, buscando compreender como T. cruzi subvertem processos
celulares para o estabelecimento da infecção
2.11- Sinalização Intracelular de Fatores Vasoativos: Biomarcadores para hipertensão
2.12 – Montagem de Pôster e Apresentação Oral em Inglês
Alojamento e refeições:
23
Os alunos selecionados de fora da cidade de Belo Horizonte terão suas passagens e diárias pagas pelo Workshop.
Datas importantes:
Período de inscrição: de 03 de agosto a 03 de outubro de 2013
Divulgação dos selecionados, lista de espera e do cronograma: 5 de outubro de 2013
Confirmação por parte dos alunos selecionados até: 5 de outubro de 2013 - após esta data as vagas não
confirmadas serão distribuídas para os alunos da lista de espera
Divulgação dos selecionados da lista de espera: 3 de outubro de 2013
Confirmação por parte dos alunos selecionados da lista de espera:5 de outubro de 2013
Contato:
Sr. Orlando Francisco
E-mail:
Assunto: Workshop de Estudos Avançados em Sinalização Celular: Em busca de novos fármacos e biomarcadores
Inscrições no site:
www.sbsc.org.br
24