Laboratório Multiusuário de Estudos em Biologia III Universidade Federal de Santa Catarina Centro de Ciências Biológicas www.lameb3.ccb.ufsc.br PROTOCOLO DE SOLUÇÕES UTILIZADAS NAS TÉCNICAS COMUNS PARA CORTES EM CRIOSTATO • FIXADOR: SOLUÇÃO DE PFA 4% 12 g de PFA (PARAFORMALDEIDO) (CH2)n 150 mL de Água destilada 150 mL de PB 0,2M Hidróxido de sódio NaOH Preparo: Aquecer a Água destilada até 70°C, no misturador, colocar a “pulga” (imã) e liga-lo, acrescentando aos poucos o PFA. Jogar duas pedrinhas ou mais de NaOH até a mistura ficar clara e homogênea. Por último, acrescentar a solução de PB 0,2M Obs.: medir pH (pH ~ 7,4) e filtrar a solução. • SACAROSE: Importante solução Crioprotetora Obs.: 1) Fazer a solução no momento do uso (máximo 1/2 dia); 2) Dependendo o tecido é importante fazer mais diluições (10%, 20% e 30%). Deixar de 1 a 2 horas na solução de 10 e 20% e no mínimo 4 horas na solução de 30% (esta pode ficar por até 48hs); OBS: Após 2 horas na sacarose 30% deve-se conservar o material em geladeira. Solução de sacarose 10% 100ml tampão PB-0,1M 10g Sacarose (C12H22O11) Solução de sacarose 20% 100ml tampão PB-0,1M 20g Sacarose (C12H22O11) Solução de sacarose 30% 100ml tampão PB-0,1M 30g Sacarose (C12H22O11) Campus Universitário Trindade, Ala Nova, Bloco C, 1° Andar, Sala 109C Córrego Grande, Florianópolis, SC, CEP 88040-970 (48) 3721 4759, [email protected] Laboratório Multiusuário de Estudos em Biologia III Universidade Federal de Santa Catarina Centro de Ciências Biológicas www.lameb3.ccb.ufsc.br • SOLUÇÃO TAMPÃO – FOSFATO (PB- 0,2M) 1L de água destilada 11g de Fosfato de Sódio dibásico anidro 2,75g de Fosfato de Sódio monobásico monohidratado Na2PO4. H2O • SOLUÇÃO TAMPÃO – FOSFATO (PB-0,1M) 1L de água destilada 1L de Tampão 0,2M • GELATINIZAÇÃO DE LÂMINAS: 750 ml de Água destilada 0,48 g de Sulfato de Potássio (Cromo) KCr(SO4) – Pode ser usado também o toluol ou o fenol 3,75g de gelatina Preparo: Aquecer a água até 70°C, quando a água estiver bem aquecida colocar a gelatina no misturador, cuidando para não empelotar a gelatina. Quando a solução estiver homogeneizada coloque o Sulfato de Potássio (Cromo) Filtrar a solução Mergulhar as lâminas em água destilada e depois mergulhar na solução. Cuidado com bolhas, deixar secar na estufa. Mergulhar novamente na solução e colocar novamente na estufa (2X). • SILANIZAÇÃO DE LÂMINAS PARA IMUNOHISTOQUÍMICA Silano 2,5% em Acetona Solução de 400ml: 10ml de Silano ________________________ 400ml de Acetona Procedimentos: • • • • Colocar as lâminas nas barquinhas de alumínio; Mergulhar na solução de silano em acetona (5 min); Mergulhar em água Destilada (2 min); Deixar secando sobre papel pardo. OBS: Não usar luva devido ao talco. Campus Universitário Trindade, Ala Nova, Bloco C, 1° Andar, Sala 109C Córrego Grande, Florianópolis, SC, CEP 88040-970 (48) 3721 4759, [email protected] Laboratório Multiusuário de Estudos em Biologia III Universidade Federal de Santa Catarina Centro de Ciências Biológicas www.lameb3.ccb.ufsc.br • SOLUÇÃO DE MONTAGEM 225ml de água destilada 225ml de PB-0,2M 50ml de etanol (Ch3CH2OH) 0,5g de gelatina Preparo: Aquecer a água até 60°C. Acrescentar gelatina na água aquecida e colocar no misturador Adicionar a solução PB 0,2M e por último adicionar o etanol • SOLUÇÃO ANTICONGELANTE PH 7,4 125 mL de PB 0,2M 150 mL de Água destilada 75 g de sacarose 125 mL de propilenoglicol Se for utilizar etilenoglicol será: 125 mL de etilenoglicol 125 mL de Água destilada Se for utilizar glicerol será: 240 mL de gliceol 35 mL de Água destilada Formol = 10% Imunolis = P Formol 4% • SOLUÇÃO SALINA 0,9% 1 L de Água destilada 9 g de NaCl Obs.: filtrar solução Campus Universitário Trindade, Ala Nova, Bloco C, 1° Andar, Sala 109C Córrego Grande, Florianópolis, SC, CEP 88040-970 (48) 3721 4759, [email protected]