UNIVERSIDADE ESTADUAL DE MATO GROSSO DO SUL UNIDADE UNIVERSITÁRIA DE AQUIDAUANA PÓS-GRADUAÇÃO EM AGRONOMIA EFICIÊNCIA DE USO DE FÓSFORO POR VARIEDADES E GENÓTIPOS DE ALGODOEIRO Nericlenes Chaves Marcante AQUIDAUANA – MS JANEIRO 2012 UNIVERSIDADE ESTADUAL DE MATO GROSSO DO SUL UNIDADE UNIVERSITÁRIA DE AQUIDAUANA PÓS-GRADUAÇÃO EM AGRONOMIA EFICIÊNCIA DE USO DE FÓSFORO POR VARIEDADES E GENÓTIPOS DE ALGODOEIRO Acadêmico: Nericlenes Chaves Marcante Orientador: Marcos Antonio Camacho da Silva Co-orientador: Takashi Muraoka “Dissertação apresentada ao programa de pós-graduação em Agronomia, área de concentração em Produção Vegetal, da Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul, como parte das exigências para a obtenção do título de Mestre em Agronomia (Produção Vegetal)”. AQUIDAUANA – MS JANEIRO 2012 M262e Marcante, Nericlenes Chaves Eficiência de uso de fósforo por variedades e genótipos de algodoeiro/ Nericlenes Chaves Marcante. Aquidauana, MS: UEMS, 2012. 47p. ; 30cm. Dissertação (Mestrado) – Mestrado em Agronomia – Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul, 2012. Orientador: Prof.º Dr. Marcos Antonio Camacho da Silva. 1.Gossypium hirsutum 2. Gossypium barbadense 3. Eficiências nutricionais I.Título. CDD 20.ed. 633.51 “Para realizar grandes conquistas, devemos não apenas agir, mas também sonhar; não apenas planejar, mas também acreditar.” (Anatole France) “Quando se planeja por um ano, deve-se semear milho; quando se planeja por uma década, deve-se plantar árvores; mas, quando se planeja para a vida, deve-se educar homens.” (Knan-Tzé) A minha mãe Claudenira Chaves Ribeiro Marcante Ao meu pai Neri Marcante Ao meu irmão Claudionery Chaves Marcante por todo amor incondicional, confiança e exemplos de vida. DEDICO AGRADECIMENTOS À Deus por sempre iluminar meu caminho. Ao professor Marcos Antonio Camacho da Silva, pela orientação, pelos valiosos ensinamentos profissionais, paciência, confiança e inestimável amizade. Ao professor Takashi Muraoka pela ótima orientação, ensinamentos e amizade. A Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoa de Nível Superior – CAPES pelo apoio financeiro e institucional prestado para a realização deste trabalho. A Universidade Estadual de Mato Grosso do Sul, Campus de Aquidauana, ao Curso de Pós-Graduação em Agronomia pelo apoio e oportunidade concedidos na realização desse curso. Ao Centro de Energia Nuclear na Agricultura – CENA, Universidade de São Paulo – USP, por permitir o uso das instalações do laboratório de Fertilidade do Solo para realização desse trabalho. Aos professores Dr. Adriano da Silva Lopes, Dr. Jolimar Antonio Schiavo e Dr. José Lavres Júnior pela atenção, apoio e colaboração. Aos colegas Alinne da Silva, Anderson Trevizam, Cristiano, Cíntia Carla Avalhães, Danilton Fulmigan, Diogo Néia Eberhardt, Élcio Ferreira de Souza, Érica de Oliveira Araújo, Fábio Ricardo Coutinho Fontes Filho, Francisco Pereira Paredes Júnior, Luiz, Maisa Honório, Rafael Fior, Rodrigo Coqui da Silva, Roger pelo convívio e auxílio mútuo. E a todos que, direta ou indiretamente, contribuíram para a realização deste trabalho, meus sinceros agradecimentos. SUMÁRIO Página RESUMO...........................................................................................................viii CAPÍTULO 1 – CONSIDERAÇÕES GERAIS......................................................1 3........................................................................................................ 4........................................................................................................ 5......................................................................................................... 6.......................................................................................................... 7........................................................................................................... 8............................................................................................................ 9........................................................................................................... 10......................................................................................................... 11......................................................................................................... 12......................................................................................................... RESUMO A baixa disponibilidade de fósforo (P) é a principal restrição para o crescimento das plantas na maioria dos ecossistemas. A maioria dos solos de região tropical apresentam acidez elevada e baixa disponibilidade de nutrientes, principalmente P, onde a maior parte do P aplicado via fertilizante é convertido em formas pouco solúveis, que não podem ser facilmente absorvidos pelas raízes das plantas. O objetivo desse trabalho foi avaliar a eficiência de absorção e utilização de P por cultivares e genótipos de algodoeiro cultivados em solo da região do Cerrado (Argissolo Vermelho-Amarelo), através da técnica da diluição isotópica, utilizando o radioisótopo 32 P. O experimento foi conduzido em casa de vegetação disposto em delineamento inteiramente casualizado, em fatorial 2 x 17. Como fatores foram considerados dois níveis de P (insuficiente= 20 mg kg-1 e suficiente = 120 mg kg-1) e 17 materiais genéticos de algodoeiro. Os níveis de fósforo influenciaram significativamente na produção de matéria seca da parte aérea, teor e acúmulo de fósforo, atividade específica do 32P, valor L e valor L descontando o fósforo presente na semente pelos cultivares e genótipos de algodoeiro. A análise por agrupamento hierárquico utilizado para verificar as semelhanças entre os cultivares e genótipos de algodoeiro, classificou-os em grupos homogêneos internamente e heterogêneos entre grupos distintos. Os cultivares FMT 523, FM 910 e CNPA GO 2043 foram os mais responsivos a adubação fosfatada no nível suficiente de P, enquanto que o genótipo Barbadense 01 e os cultivares FM 966LL, IPR Jataí, BRS Aroeira e BRS Buriti foram os mais eficientes em absorver fósforo quando cultivados em nível insuficiente. Palavras – chaves: Gossypium hirsutum L., Gossypium barbadense L., eficiências nutricionais, radioisótopos. CAPÍTULO 1 – CONSIDERAÇÕES GERAIS Fósforo no sistema solo-planta A baixa disponibilidade de fósforo (P) é a principal restrição para o crescimento das plantas na maioria dos ecossistemas (RAGHOTHAMA; KARTHIKEYAN, 2005). Visto sua importância para a vida da planta, do animal e do homem que come planta ou planta transformada, e fato de ser um mineral finito e insubstituível. Talvez por isso, o P seja o elemento sobre o qual mais se estuda, havendo, porém, muitas perguntas sem respostas a respeito deste (MALAVOLTA, 2006). O P possui abundância menor que os demais macronutrientes primários, cujo valor total varia na superfície dos solos de 50 a 1500 mg kg-1 (HAVLIN et al., 2005), mas infelizmente, o teor total de P no solos tem pouca ou nenhuma relação com a disponibilidade para as plantas, especialmente em solos tropicais. As concentrações na solução do solo variam de 0,02 a 2 mg L-1, sendo a forma H2PO4- predominante em solos com pH abaixo de 6,0, enquanto que em solo alcalinos (pH > 6,0) está mais prontamente disponível na forma HPO4-2 (NOVAIS et al., 2007). No solo o P, de acordo com Barber (1995), pode ser dividido em quatro categorias: (i) P na forma iônica e em compostos na solução do solo, (ii) P adsorvido nas superfícies do constituintes minerais do solo, (iii) minerais cristalinos e amorfos de P e (iv) P componente da matéria orgânica. No Brasil é o nutriente mais utilizado na adubação das culturas, embora seja exigido em diminutas quantidades pela planta. Essa demasiada utilização se deve ao fato dos solos tropicais apresentarem baixas concentrações de P disponível, e alto potencial de fixação do P aplicado via fertilizante. Denomina-se fixação de P à retenção do íon fosfato na fase sólida do solo, gerando como grande conseqüência fixação desse mineral em solos que apresentam teor elevado de óxidos e hidróxidos de ferro (Fe) e alumínio (Al) (RAIJ, 1991). A fixação de P é influenciada por vários atributos do solo, destacando-se o pH, mineralogia da fração argila, grau de cristalinidade dos óxidos de Fe e Al, e o teor de matéria orgânica do solo (NOVAIS; SMYTH, 1999). Em solos poucos intemperizados, o P encontra-se predominante em minerais primários, principalmente como fluorapatita, já nos solos moderadamente intemperizados, a maior porcentagem do P encontra-se na forma orgânica (SANTOS et al., 2008). Em solos altamente intemperizados, as formas inorgânicas encontram-se ligadas com alta energia à fração mineral e as formas orgânicas estabilizadas físicas e quimicamente (NOVAIS; SMYTH, 1999). O termo lábil (comumente disponível) é caracterizado por aquele P fracamente retido no solo, tem a função de manter equilíbrio com a solução do solo, é a soma das frações solúvel e fracamente adsorvida. O P não-lábil é aquele que está fortemente retido no solo, não podendo passar para a solução do solo. O P disponível pode ser definido como aproveitável pela planta (Malavolta, 2006). A planta, como dreno, tem o solo como sua fonte principal de nutrientes minerais. A fertilização viabiliza a produtividade das plantas no caso de deficiência de nutrientes no solo, satisfazendo a planta, portanto para a contínua produção desejada à necessidade de manutenção do suprimento (fonte) de nutrientes em quantidades adequadas para a planta (NOVAIS et al., 2007). No caso do Cerrado, que apresenta na sua grande maioria solos sob condições de intemperismo, a fixação com limitada reversibilidade, torna o solo de fonte de P para as plantas em competidor (dreno), sendo necessárias grandes quantidades de fertilizantes fosfatados para torná-lo fonte de P novamente (NOVAIS et al., 2007). Um Latossolo da região do Cerrado pode adsorver mais de 2 mg de P cm-3, isso equivale a 4000 kg de P ha-1 ou 9200 kg de P2O5 ha-1, isso considerando uma incorporação de 0-20 cm de profundidade (NOVAIS et al., 2007). Estudando a retenção de P em solo de Cerrado sob pastagens, nos estados de MT, MG e GO, (EBERHARDT et al., 2008) verificaram que o teor de P total (P2O5) variou de 0,2 a 2,6 g kg-1, o P disponível (Mehlich - 1) variou de 0,1 a 1,7 mg kg-1. A maiorias dos solos do cerrado apresentam teores de nutrientes muito abaixo do recomendado para o desenvolvimento de culturas agrícolas, como no trabalho de Vendrame et al. (2010), onde foi observado que 90% dos solos de cerrado possuíam baixa disponibilidade de P (> 3,0 mg kg-1), alta saturação por alumínio e acidez acima do nível considerado critico. O P nessa região torna-se um dos fatores restritivos ao desenvolvimento adequado de pastagens e outras culturas agrícolas, passando a ser fator limitante para o desenvolvimento da agropecuária na região. A compreensão dos fatores intensidade, quantidade e capacidade de P no solo são de extrema importância para o entendimento da relação solo/planta (SILVA; RAIJ, 1999). O fator intensidade (I) de P no solo é P disponível na solução para as plantas, mas não pode ser indicado como o único índice de disponibilidade de P para as plantas, pois o teor P na solução está em constante modificação. O fator quantidade (Q) (Plábil), participa conjuntamente com o equilíbrio entre o sistema solo/planta, o P dessa fase pode ser fixado (P não-lábil) ou repor o P absorvido pela planta da solução do solo. Por último têm-se o fator capacidade, que é a interdependência de I e Q, mantendo sempre em equilíbrio o sistema I/Q (NOVAIS et al., 2007). A fonte imediata de nutrientes às raízes das plantas é a solução do solo, mas sua baixa concentração de nutrientes deve ser continuamente reposto pela fase sólida. Como a taxa de reposição e difusão varia muito entre os solos, a quantidade de nutrientes disponíveis será função principalmente do componente lábil da fase sólida e do fator capacidade, enquanto a concentração da solução é geralmente um índice instantâneo, e não de longo prazo, da disponibilidade de P para a planta (HOLFORD, 1991). Novais e Smyth (1999) relatam que o fator intensidade contribuiu apenas com 3,6% de todo P absorvido pelas plantas, enquanto que o fator quantidade (P-Al + P-Fe + P-Ca) contribuiu com 96,4 %, sendo que todo o P absorvido pela planta passou pela solução do solo, mas à medida que era consumido pela planta, ocorria à renovação de P em solução pelas formas lábeis, quantitativamente muito maiores, processo esse conhecido como dessorção. O fenômeno de retenção do fósforo na superfície do colóide é um processo lento, que com o tempo o P inicialmente adsorvido à superfície de agregados do solo difunde-se para o seu interior, sendo assim, responsável pela diminuição da disponibilidade de P de um solo recém-fertilizado (HAVLIN et al., 2005). A adsorção de P por oxidróxidos de Fe e Al ocorre através de ligação eletrostática inicial, posteriormente à adsorção por oxidróxidos por meio de troca de ligantes, conhecida como ligação predominantemente covalente. Esse fenômeno de adsorção do P por oxidróxidos de Fe e Al se dá principalmente sob baixo pH do solo, mas pode ocorrer precipitação do P com o cálcio também, geralmente quando o pH do solo encontra-se elevado, resultado de supercalagem (MALAVOLTA, 2006). Ocorre também a adsorção do P pela matéria orgânica (MO), mas diferencialmente dos oxidróxidos, com o envelhecimento da matéria orgânica, ocorre efeito contrário, ocasionando, de modo geral, diminuição da adsorção e aumento da disponibilidade de P para as plantas, ocorrendo pela adsorção de grande energia de ácidos orgânicos, presentes na MO, competindo com os sítios de adsorção de P (NOVAIS; SMYTH, 1999). Os íons de ortofosfato na solução encontram-se nas formas de H2PO4-, H2PO42- e PO43-, mas alguns compostos de P solúvel orgânicos também são absorvidos (BRADY; WEIL, 2002), devido à reação ácida dos solos brasileiros, principalmente na região do cerrado, predominando a forma H2PO42- (ácido fosfórico) (MALAVOLTA, 2006). A difusão é o processo que governa 94% do contato do íon ortofosfato com a raiz da planta (absorção), movimento contra o gradiente de concentração, sendo um processo “morro acima” que obedece à cinética Michaelis-Menten (EPSTEIN; BLOOM, 2006, MALAVOLTA, 2006). O processo de absorção do P pela planta ocorre em duas fases distintas, sendo a primeira fase rápida, considerada passiva, e uma fase mais lenta, ou seja, o processo ativo, em função da necessidade de ir contra o gradiente de concentração (MALAVOLTA et al., 1997). As concentrações de P nas células vegetais são geralmente 100 vezes superiores às concentrações presentes na solução do solo (SMITH, 2002). Geralmente ocorre o que chamamos de zona de depleção ao redor das raízes, devido à quantidade de P que chega ser inferior à absorvida pela planta, podendo ativar em algumas espécies um mecanismo de absorção de alta afinidade, ou seja, a planta desenvolve a capacidade de absorver P, mesmo quando este esteja em baixo teor na solução do solo (EPSTEIN; BLOOM, 2006). Na planta, o P está envolvido em vários processos metabólicos, como transferência de energia, pois o ATP é imprescindível para a fotossíntese, transpiração, translocação, divisão celular e outros processos vitais (MARSCHNER, 1995). Desempenha papel de natureza estrutural em macromoléculas como DNA, fosfolipídios, ésteres de carboidrato, coenzimas e nucleotídeos (MALAVOLTA et al., 1997). Os sintomas de deficiência de P são caracterizados principalmente pela acentuada redução no crescimento da planta e coloração verde escura das folhas, com o agravamento da deficiência, o verde escuro mudo para verde acinzentado ao verde azulado brilho metálico (HAVLIN et al., 2005). Os sintomas de P são observados nas folhas mais velhas, pelo fato do P ser um nutriente móvel no interior da planta (EPSTEIN; BLOOM, 2006). Na fase reprodutiva o P é redistribuído para os frutos e sementes, sendo assim, caso ocorra deficiência na fase final de crescimento, há efeito negativo tanto no desenvolvimento de sementes como maturação da cultura (HAVLIN et al., 2005). A deficiência de P nas plantas pode estimular a ocorrência de elevado número de respostas transcricionais, bioquímicas e fisiológicas que aumentam a habilidade da planta em absorver P do solo e melhora a eficiência com a qual a planta utiliza P no seu metabolismo interno (Lynch, 2007). Eficiência do uso de fósforo pelas plantas O grande desafio hoje da produção de alimento, fibra e bioenergia é adequar a forma de produzir a meios sustentáveis. Com a percepção de que os recursos naturais são finitos, temos ao máximo que utilizá-los de forma que esses recursos possam vir a ter vida prolongada, possibilitando seu continuo uso no decorrer dos anos, ou seja, apresente maior sustentabilidade. A utilização de adubos minerais torna possível sustentar o crescimento da população mundial, poupando milhões de hectares de terras dos sistemas naturais, que de outra forma teriam sido convertidos em solos agricultáveis (FAGERIA, 1998). Hoje, os desafios econômicos e ambientais estão dirigidos na utilização eficiente dos nutrientes (BALIGAR et al., 2001). Com os preços mais altos, tanto para as culturas como fertilizantes, o interesse em aprimorar tecnologia, práticas de manejo e eficiência nutricional têm aumentado para que se possam obter elevação na produtividade das culturas (CORDELL et al., 2009). Além disso, a utilização eficiente dos nutrientes permite diminuição nas perdas dos mesmos, que podem prejudicar a qualidade do ar e da água (eutrofização), especialmente de nitrogênio (N) e fósforo (P) (BALIGAR et al., 2001). Em geral, o termo eficiência expressa à relação entre a produção obtida e o insumo aplicado, com isso, eficiência nutricional é a quantidade de matéria seca ou grãos produzida por unidade de nutriente aplicado (FAGERIA, 1998). Entretanto na literatura, eficiência nutricional pode ser definida de várias maneiras. De acordo com Graham (1984), eficiência nutricional pode ser definida como a produção relativa de um genótipo em solo deficiente em comparação com sua produção no nível ótimo de nutriente. Cooke (1987) define eficiência nutricional como o aumento de produtividade por unidade de nutriente aplicado. Para Isral e Rufty (1998), eficiência nutricional é a relação entre a biomassa total e a quantidade de nutriente absorvido. A eficiência nutricional pode ser expressa e calculada de cinco maneiras diferentes; (i) eficiência agronômica, que é a produção econômica obtida (grãos no caso de culturas anuais) por unidade de nutriente aplicado (MARANVILLE et al., 1980); (ii) a eficiência fisiológica, que é a produção biológica obtida (grãos + palha para culturas anuais) por unidade de nutriente acumulado (SIDDIQI; GLASS, 981); (iii) eficiência na produção de grãos ou fibras, que é a produção de grãos ou fibras obtida por unidade de nutriente acumulado (CRASWELL; GODWIN, 1984); (iv) eficiência de recuperação, que é a quantidade de nutriente acumulado na planta por unidade de nutriente aplicado (FAGERIA, 1992); (v) eficiência de utilização, que é o produto das eficiências fisiológicas e recuperação, definido como a capacidade da planta em converter o elemento absorvido em produto agrícola de interesse comercial (FRANZINI, 2010). A eficiência de absorção e utilização do P pela planta está relacionada com vários mecanismos internos e externos, sendo eles: aspectos da morfologia radicular, alterações químicas na rizosfera, alterações de características fisiológicas de cinética de absorção, alterações em processos bioquímicos, variabilidade genética e interações com microorganismos que habitam o solo (LYNCH, 2007). O uso eficiente do P é importante por três razões principais: (i) as reservas fosfáticas, do qual são produzidos os fertilizantes fosfatados, é um recurso natural finito, não renovável, por isso deve ser utilizado de forma eficiente, a fim de que maximize seu tempo de vida, (ii) há necessidade de manter e melhorar o teor de P de muitos solos, para que haja aumento na quantidade de alimento, fibras e bioenergia produzidos. Isto é particularmente importante para países em desenvolvimento, que necessitam aumentar a produção agrícola. Por ultimo (iii) o fenômeno conhecido como eutrofização, excesso de fósforo derivado do solo e fertilizantes nas águas superficiais, provocando aumento excessivo de algas, diminuindo a qualidade da água e eventualmente alterações profundas do ecossistema (SYERS et al., 2008). A baixa disponibilidade de P é caracterizada como um dos principais fatores limitantes à produção das culturas em solos brasileiros, principalmente os sob vegetação de cerrado. A busca por genótipos considerados eficientes em utilizar P, fazendo com que haja integração solo/planta é fundamental para a expansão da agricultura nessa região (ALVES et al., 1998). Na natureza ocorrem diferenças entre espécies em relação à capacidade de desenvolvimento em solo com baixo teor de P, podendo estar ligadas à herança genética da planta, parâmetros cinéticos de absorção ou eficiência no uso de P (WANG et al., 2010). O conhecimento dos caracteres e dos mecanismos envolvidos na eficiência nutricional (aquisição, utilização e translocação de nutrientes para os grãos), assim como habilidade de transmissão dessa característica genética em solos com baixos teores de nutrientes, é fundamental para guiar o melhorista quanto ao método mais adequado de melhoramento a ser utilizado (GAUME et al., 2001; YUN; KAEPPLER, 2001). Vários trabalhos têm sugerido que a concentração e o acúmulo mineral estão parcialmente sob controle genético, e que progressos consideráveis foram possíveis para que ocorra a seleção de cultivares mais eficientes em absorver e utilizar nutrientes (FURLANI; MACHADO, 2002). Cerrado Considerado o segundo maior bioma do Brasil, superado somente pela floresta amazônica, a região do Cerrado ocupa aproximadamente 2.032.000 km2, correspondendo a 20% do território nacional. Está localizado na região central do Brasil, entre latitudes 6 e 20º S. A vegetação da região é classificada como savana subúmida, podendo ocorrer variações entre gramíneas, árvores esparsas e arbustos isolados (YAMADA, 2005). Os principais solos do cerrado são Latossolos (46%), seguidos de Neossolos (15%), Argissolos (15%) e outras classes de solos em menores proporções, merecendo destaque os Plintossolos e os Gleissolos (WALTER, 2006). Em grande parte esses solos apresentam sérias limitações de fertilidade natural, principalmente pela alta saturação por alumínio e alta fixação de P, devido à presença de oxidróxidos de Fe e Al em Latossolos e Argissolos (LOPES; GUILHERME, 1992). A textura desses solos é variável, podendo ser extremamente argilosos até arenosos, e este é um dos atributos que levam a diferenciação do manejo quando se almeja obter produtividades máximas econômicas na região (LOPES; DAHER, 2008). O Cerrado possui características tanto favoráveis como limitantes ao desenvolvimento agrícola. Dentre os fatores favoráveis estão: a) topografia plana, b) solos com texturas que facilitam mecanização, c) precipitação suficiente (1000 a 1800 mm), d) temperatura e luminosidade adequada, e) solos com boa drenagem. Como limitante vale ressaltar: a) ocorrência de estação seca bem definida, com duração de 4 a 5 meses, b) veranicos associados a altas taxa de evapotranspiração, c) baixa retenção de água, d) limitado desenvolvimento radicular, em função da toxicidade de Al ou deficiência de Ca, e) baixo teor de P no solo (LOPES; GUILHERME, 1992; GOMES et al., 2004). Atualmente, o Cerrado é a região que possui maior presença agrícola no país, vêem desempenhando papel preponderante no crescimento da agricultura brasileira (MUELLER; MARTHA Jr., 2008), responsável por cerca de 60% da soja, 59% do café, 45% do feijão, 44% do milho e 81% do sorgo produzido no Brasil (CONAB, 2010). A baixa disponibilidade natural de P nos solos de Cerrado é um dos limitantes para o desenvolvimento das culturas destinadas à produção de alimentos, carnes, bioenergia e fibras, tornando necessária aplicação de adubo fosfatado antes do início do sistema produtivo, visando elevar o teor disponível para as plantas (LOPES, 1983). A preocupação de escassez de P, por ser um nutriente não renovável (CORDELL et al., 2009), resultam em adoção de práticas adequadas de manejo do solo, fertilizantes e plantas para tentar minimizar este problema (FERNANDES; MURAOKA, 2002). As boas práticas de manejo de fertilizantes, utilização de corretivos, visando melhorar a fertilidade do solo, conjuntamente com seleção de variedades mais tolerantes ao alumínio e mais eficientes na absorção e utilização de P e demais nutrientes tem sido sugerido como alternativas para a solução do problema de falta de fertilidade e escassez de fósforo nos solos do cerrado (FAGERIA et al., 2010). A intensificação de pesquisas no Cerrado tem melhorado a adequação do conhecimento sobre dinâmica de nutrientes no solo, eficiência de absorção, transporte e metabolismo. Identificando espécies, variedade e cultivares que desempenhem satisfatoriamente a eficiência na utilização dos nutrientes (Fageria et al., 2010), recursos minerais ditos como essenciais para a agricultura, porém finitos, que contribui para atender a crescente demanda por alimentos da população brasileira, procurando intensificar o desenvolvimento e sustentabilidade da agricultura brasileira (LOPES; DAHER, 2008). Cultura do algodão A fibra do algodoeiro (Gossypium hirsutum L. var. latifolium Hutch) é o principal produto usado na cadeia têxtil nacional e mundial. É uma das principais culturas exploradas no Brasil, ocupando atualmente uma área de 842,3 mil hectares, safra de 2009/10. A produção brasileira de algodão em pluma da safra 2008/09 foi de 1,27 milhões de toneladas, sendo a região do Centro-Oeste responsável por 62,72% deste total, o estado do MT é o maior produtor 649,9 milhões de toneladas (CONAB, 2010). A cotonicultura pode ser considerada uma atividade com ótimos resultados técnicos, econômicos e vigoroso processo de expansão, principalmente nas regiões de fronteira agrícola (TEIXEIRA et al., 2008). A cultura do algodoeiro é uma das espécies vegetais cultivadas há mais tempo pelo homem. Existem relatos de que há 3000 anos a.C a fibra dessa malvácea era utilizada na confecção de tecidos. Na Índia cerca de 1500 anos a.C o algodoeiro era cultivado para fabricação de tecidos de algodão (BELTRÃO; SOUZA, 2001). Existem 52 espécies catalogadas no gênero Gossypium, pertencente à família Malvaceae, mas apenas 4 são cultivadas com fins comerciais: G. hirsutum, G. barbadense, G. herbaceum e G. arboreum, onde o G. hirsutum é responsável por 90% e G. barbadense por 5% das áreas produtoras de algodão no mundo. Cultivado em mais de 60 países, o algodoeiro é uma cultura com ampla expansão mundial, porém, 85% da produção mundial esta situada em apenas setes países, sendo estes: China, Índia, Estados Unidos, Paquistão, Brasil, Uzbequistão e Turquia (FNP, 2010). A expansão da área destinada ao cultivo do algodoeiro no Cerrado ocorreu principalmente pelo fato de sua afirmação como alternativa à produção da soja, topografia privilegiada à mecanização agrícola, clima favorável a cultura e áreas livres do bicudo-do-algodoeiro (Anthonomus grandis Hutch). O algodoeiro não tolera solos com acidez elevada, pobre em nutrientes, excesso de umidade, solos rasos ou compactados. As plantas apresentam melhor desempenho quando cultivadas em solos de alta fertilidade, sob condições de umidade adequada, altas temperaturas (faixa ideal entre 23º C e 32º C) e alta intensidade luminosa na superfície foliar. O sistema de produção de algodoeiro na região do Cerrado é considerado de alta tecnologia, tendo elevado grau de mecanização e consumo de insumos, principalmente fertilizantes, buscando recuperar a baixa fertilidade dos solos pobres. A calagem e adubação têm custos elevados na produção do algodoeiro, podendo atingir valores da ordem de 20 a 30% do custo total (Carvalho & Ferreira, 2006). O manejo eficiente da adubação é essencial para o aumento da produtividade, redução de custos e viabilização do processo produtivo na cultura do algodoeiro. Aplicação de fontes solúveis de P é necessária para obtenção do rendimento ideal do algodoeiro em solos de Cerrado. No entanto, o P solúvel aplicado é rapidamente fixado por oxidróxidos de Fe e Al, formando complexos de baixa solubilidade. A capacidade do algodão em recuperar P de fontes pouco solúvel (P-Al e P-Fe) é considerada baixa, podendo ser atribuído a pouca eficiência do algodoeiro em absorver e utilizar P do solo (WANG et al., 2010). A identificação de genótipos mais eficientes em absorver e utilizar P é considerado fator importante para dar continuidade aos produtores brasileiros, significativa competitividade junto aos maiores produtores mundiais. Método isotópico com 32P Os radioisótopos vêm sendo utilizados há varias décadas para estudos de fertilidade de solo e nutrição de plantas. Esses traçadores radioativos apresentam grande importância, pela possibilidade de diferenciação da origem do nutriente absorvido pela planta em estudo, além da elucidação de vários processos de absorção dos nutrientes, que não poderiam ser obtidas por métodos convencionais. (NEPTUNE; MURAOKA, 1978). A diluição com radioisótopos permite determinar a eficiência de absorção e utilização de um elemento qualquer pelas plantas, através da quantificação da atividade específica presente no material vegetal (NEPTUNE; MURAOKA, 1978). Radiações emitidas por radioisótopos podem atravessar a matéria e, dependendo de sua energia, são detectadas onde estiverem presentes, através de aparelhos apropriados (Cintilador Líquido ou Sólido e Geiger Muller) denominados detectores de radiação. Dessa forma, o caminhamento do radioisótopo pode ser acompanhado e seu percurso ser “traçado”. Motivo esse pelo qual são denominados de traçadores radioativos (NEPTUNE; MURAOKA, 1978). Com o uso de traçadores radioativos é possível acompanhar o metabolismo das plantas, possibilitando separar nas várias partes da planta, a quantidade exata do nutriente absorvido proveniente do fertilizante mineral ou do solo (LARSEN, 1967). Entre as vantagens da utilização de radioisótopos está: (i) possibilidade de medir o elemento radioativo em concentrações extremamente baixas, na ordem de grandeza de 10-15 g; (ii) os radioisótopos comportam-se quimicamente como seus homólogos não radioativos; (iii) as plantas no momento da absorção e metabolismo não fazem nenhuma diferença entre radioisótopos e elementos não radioativos, e (iv) possibilidade de separar, por exemplo, na planta o elemento proveniente do fertilizante, do solo, adubo verde marcado ou de outra fonte. O P possui dois radioisótopos (32P e 33P), onde à possibilidade da utilização de ambos como traçadores. O 33P possui meia vida de 25 dias, emite radiação β- com baixa energia (0,249 MeV), mas devido a baixa energia o 33P, ele não pode ser detectado por efeito Cerenkov, sendo assim necessário adição de solução cintiladora à base de tolueno nas amostras para leitura no cintilador líquido. Além da necessidade de solução cintiladora o 33P é importado, tornando encarecedora e dificultosa sua aquisição (VOSE, 1980). O 32 P não necessita de solução cintiladora, pois emite radiação β- com alta energia (1,71 MeV), permitindo que sua leitura seja feita através do efeito Cerenkov. A desvantagem do 32 P é em relação a sua curta meia vida, de 14,3 dias, limitando a duração dos experimentos (VOSE, 1980). O efeito Cerenkov é produzido quando partículas β- com energia superior a 0,263 MeV passa por meio aquoso, fazendo com que a velocidade da partícula carregada em um meio seja maior que a velocidade da luz naquele meio, dispensando o uso de solução cintiladora (VOSE, 1980). Entre as vantagens do efeito Cerenkov estão: (i) simplicidade da preparação da amostra; (ii) possibilidade de detectar radioisótopos em solução aquosa e não aquosa sem a adição de solução cintiladora; (iii) alta eficiência de detecção, e (iv) custo desprezível por amostra. A atividade do 32P é determinada através da contagem do número de partículas β- emitidas pelo radioisótopo, denominada por desintegração por segundo (dps). O sistema internacional de unidades utiliza o Bequerel (Bq) como unidade padrão, sendo 1 Bq igual a 1 dps. O calculo da atividade do 32P é dada pela equação (Kaplan, 1978): Onde: A = atividade final do radioisótopo (Bq); A0 = atividade inicial do radioisótopo (Bq); e = logaritmo neperiano; t = decaimento em dias; T = meia vida do radioisótopo (14,3 dias para 32P) Nas plantas a atividade do 32 P é calculada através da equação da atividade específica (DI; CONDRON; FROSSARD , 1997): Onde: Ae = atividade especifica do radioisótopo (Bq g-1 P) 32 P = atividade do radioisótopo na planta (Bq) 31 P = teor de fósforo na planta (g kg-1) A técnica conhecida como “Valor L” (LARSEN, 1952) consiste na quantidade do elemento (P) determinado no solo e na solução do solo disponível para a planta, que seja trocável como o íon quimicamente idêntico ao adicionado ao solo, determinada através da atividade específica na planta. Dados os fenômenos de troca e diluição isotópica entre o radioisótopo 32 P adicionado e o elemento P-lábil do solo, a disponibilidade (fator quantidade) do elemento P do solo pode ser avaliada pelo “Valor L”, conforme descrito por Neptune e Muraoka (1978), Muraoka et al. (1983) e Novais e Smyth (1999). A determinação do P isotopicamente trocável se dá através da metodologia da diluição isotópica, ou seja, determina-se a concentração do P não marcado por meio da mistura com P marcado: 31 P (lábil) + 32P (solução) 32P (lábil) + 31P (solução); Em condições de equilíbrio: ( ) ( ( ) ) ( ) Logo: ( ) ( ) ( ( ) ) OBJETIVOS Diante do exposto, o presente trabalho teve por objetivo avaliar cultivares e genótipos de algodão quanto à eficiência de absorção e utilização de fósforo, quando cultivados em solo com baixa disponibilidade de fósforo. REFERÊNCIAS ALVES, V. M. C.; NOVAIS, R. F.; OLIVEIRA, M. F. G.; SANT´ANNA, R. Cinética e translocação de fósforo em híbridos de milho, Pesquisa Agropecuária Brasileira. Brasília, v. 33, n. 7, p. 1047-1052, 1998. BALIGAR, V. C.; FAGERIA, N. K.; HE, Z. L. Nutrient use efficiency in plants. Communications in Soil Science and Plant Analysis. New York, v. 32, n. 7-8, p. 921950, 2001. BARBER, S. A. Soil nutrient biavailability: a mechanistic approach. 1. ed. New York: J. Wiley & Sons, 1995. 414p. BELTRÃO, N. E. de M.; SOUZA, J. G. de. Fisiologia e ecofisiologia do algodoeiro. In: EMBRAPA AGROPECUÁRIA OESTE. Algodão: tecnologia de produção. Dourados: Embrapa Agropecuária Oeste; Campina Grande: Embrapa Algodão, 2001. p. 54-75. BRADY, N. C.; WEIL, R. R. The nature and properties of soils. 13. ed. New Jersey: Prentice-Hall, 2002. 960p. CARVALHO, M. C. S.; FERREIRA, G. B. Calagem e Adubação do Algodoeiro no Cerrado. Campina Grande, Embrapa Algodão, 2006. (Circular Técnica 92). CONAB – Companhia Nacional de Abastecimento. Acompanhamento da safra brasileira: grãos. Safra 2009/2010, quarto levantamento, janeiro/2010 – Brasília: Conab, 42 p. 2010. COOKE, G. W. Maximizing fertilizer efficiency by overcoming constraints to crop growth. Journal of Plant Nutrition. New York, v. 10, n. 9-16, p. 1357-1369, 1987. CORDELL D.; DRANGERT J. O.; WHITE S. The story of phosphorus: Global food security and food for thought. Global Environmental Change. Oxford, v. 19, n. 2, p. 292‐305, 2009. CRASWELL, E. T. & GODWIN, D. C. The efficiency of nitrogen fertilizers applied to cereals in different climates. In: TINKER, P.B. & LAUCHLI, A., eds. Advances in plant nutrition, New York, Praeger Scientific, 1984. v.1. p.1-55. DI, H. J; CONDRON, L. M.; FROSSARD, E. Isotope techniques to study phosphorus cycling in agricultural and forest soils: a review. Biology and Fertility of Soils, Berlin, v. 24, p. 1-12, 1997. EBERHARDT, D. N.; VENDRAME, P. R. S.; BECQUER, T.; GUIMARÃES, M. F. Influência da granulometria e da mineralogia sobre a retenção do fósforo em Latossolos sob pastagens no cerrado. Revista Brasileira de Ciências do Solo. Viçosa, v. 32, n. 3, p.1009-1016, 2008. EPSTEIN, E.; BLOOM, A.J. Nutrição mineral de plantas: princípios e perspectivas. 2. ed. Londrina: Planta, 2006. 403p. FAGERIA, N.K. Maximizing crop yields. New York: Marcel Dekker, 1992. 274p. FAGERIA, N. K. Otimização da eficiência nutricional na produção das culturas. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental. Campina Grande, v. 2, n. 1, p. 6-16, 1998. FAGERIA, N. K.; BALIGAR, V. C.; MOREIRA, A. Dry bean genotypes evaluation for growth, yield components and phosphorus use efficiency. Journal of Plant Nutrition. New York, v. 33, n. 14, p. 2167–2181, 2010. FERNANDES, C.; MURAOKA, T. Absorção de fósforo por híbridos de milho cultivados em solo de cerrado. Scientia Agricola. Piracicaba, v. 59, n. 4, p.781-787, 2002. FNP CONSULTORIA & COMÉRCIO. Agrinual 2010: anuário da agricultura brasileira. São Paulo, 2007. 516p. FRANZINI, V. I. Eficiência do uso de fósforo por cultivares de arroz e de feijoeiro e da fixação biológica de nitrogênio por cultivares de feijoeiro. 2010.189 p. Tese (Doutorado em solos e nutrição de plantas) - Escola Superior de Agricultura "Luiz de Queiroz", Universidade de São Paulo, Piracicaba – SP, 2010. FURLANI, A. M. C.; MACHADO, C. T. T. Variabilidade e herança da eficiência na absorção e utilização de nutrientes em ambientes marginais, em germoplasma de soja, trigo, arroz e milho. In: ALVAREZ, V. H. V. et al. Tópicos em ciência do solo. Visoça: SBCS, v. 2, 2002. p. 336-391. GAUME, A.; MÄCHLER, F.; LEÓN, C.; NARRO, L.; FROSSARD, E. Low-P tolerance by maize (Zea mays L.) genotypes: Significance of root growth, and organic acids and acid phosphatase root exudation. Plant and Soil. Dordrecht, v. 228, n. 2, p. 253-264, 2001. GOMES, JBV., CURI, N., MOTTA, PEF., KER, JC., MARQUES, JJGSM. and SCHULZE, DG. 2004. Análise de componentes principais de atributos físicos, químicos e mineralógicos de solos do bioma Cerrado. Revista Brasileira de Ciências do Solo. Viçosa, v. 28, n. 1, p. 137-153, 2004. GRAHAM, R.D. Breeding for nutritional characteristics in cereals. In: TINKER, P.B.; LAUCHLI, A. (Ed.) Advances in plant nutrition, New York: Praeger, 1984. p.57-102. HAVLIN, J. L. BEATON, J. D.; TISDALE, S.; NELSON, W. Soil fertility and fertilizers: an introduction to nutrient management. 7. ed. New Jersey: Pearson Prentice Hall, 2005. 515p. HOLFORD, I. C. R. Comments on intensity-quantity aspects of soil phosphorus. Australian journal soil researcher. Victoria, v. 29, p. 11-14, 1991. ISRAEL, D. W.; RUFTY, T. W. Influence of phosphorus-nutrition on phosphorus and nitrogen-utilization efficiencies and associated physiological-responses in soybean. Crop Science. Dordrecht, v. 28, n. 6, p. 954-960, 1988. LARSEN, S. Isotopic exchange of phosphate in paddy soils. Plant and Soil. Dordrecht, v. 27, p. 401-407, 1967. LOPES, A. S.; DAHER, E. Agronegócio e recursos naturais no cerrado: desafios para uma coexistência harmônica. In: FALEIRO, F. G. & FARIAS NETO, A. L. Savanas. Desafios e estratégias para o equilíbrio entre sociedade, agronegócio e recursos naturais. Planaltina. Embrapa Cerrados, 2008. p. 171-209. LOPES, A. S.; GUILHERME, L. R. G. Solos sob cerrado: manejo da fertilidade para a produção agropecuária. São Paulo: ANDA, 1992. 49 p. (Boletim Técnico, 5). LYNCH, J. P. Roots of the second green revolution. Australian Journal of Botany. Victoria, v. 55, n. 5, p. 493-512, 2007. KAPLAN, I. Física nuclear. 2.ed. Rio de Janeiro: Guanabara Dois, 1978. MALAVOLTA, E. Manual de nutrição mineral de plantas. São Paulo: Ceres, 2006. 638p. MALAVOLTA, E.; VITTI, C.G.; OLIVEIRA, S.A. Avaliação do estado nutricional das plantas: princípios e aplicações. Piracicaba: Associação Brasileira para Pesquisa da Potassa e do Fosfato, 1997, 319p. MARANVILLE, J. W.; CLARK, R. B.; ROSS, W. M. NITROGEN EFFICIENCY IN GRAIN-SORGHUM. Journal of Plant Nutrition. New York, v. 2, n. 5, p. 577-589, 1980. MARSCHNER, H. Mineral nutrition of higher plants. 2 ed. London: A. P., 1995, 889. MUELLER, C. C. & MARTHA Jr., G. B. A agropecuária e o desenvolvimento socioeconômico recente do cerrado. In: FALEIRO, F. G. & FARIAS NETO, A. L. Savanas. Desafios e estratégias para o equilíbrio entre sociedade, agronegócio e recursos naturais. Planaltina. Embrapa Cerrados, 2008. p. 104-169. MURAOKA, T.; NEPTUNE, A. M. L.; NASCIMENTO FILHO, V. F. Avaliação da disponibilidade de zinco (65Zn) e manganês (54Mn) do solo para o feijoeiro. I. Zinco. Revista Brasileira de Ciência do Solo. Campinas, v.7, n. 2, p.167-175, 1983. NEPTUNE, A. M. L.; MURAOKA, T. Uso de isótopos em química e fertilidade do solo. Revista Brasileira de Ciência de Solo. Campinas, v. 2, n. 2, p.151-163, 1978. NOVAIS, R.F., SMYTH, T.J. Fósforo em solo e planta em condições tropicais. Viçosa: Universidade Federal de Viçosa, 1999. 399p. NOVAIS, R. F.; ALVAREZ, V.; BARROS, N. F.; FONTES, R. L. F.; CANTARUTTI, R. B.; NEVES, J. C. L. Fósforo. In: NOVAIS, R. F.; ALVAREZ, V. H.; BARROS, N. F.; FONTES, R. L. F.; CANTARUTTI, R. B.; NEVES, J. C. L. Fertilidade do Solo. Viçosa, Sociedade Brasileira de Ciência do Solo, 2007. p.471-550. SANTOS, D. R.; CASSOL, P. C.; KAMINSKI, J.; ANGHINONI, I. In: SANTOS, G. A.; SILVA, L. S. da.; CANELLAS, L. P.; CAMARGO, F. A. O. Fundamentos da matéria orgânica do solo. Porto Alegre: Metropole, 2008. p. 101-112. RAGHOTHAMA, K. G.; KARTHIKEYAN, A. S. Phosphate acquisition. Plant and Soil. Dordrech, v. 274, n. 1-2, p. 37-49, 2005. RAIJ, B. van. Avaliação da fertilidade do solo. Piracicaba: Instituto da Potassa e Fosfato. 142p. SIDDIQI, M. Y.; GLASS, A. D. M. Utilization index: a modified approach to the estimation and comparison of nutrient utilization efficiency in plants. Journal of Plant Nutrition. New York, v. 4, n. 1, p. 289-302, 1981. SILVA, F. C. da; RAIJ, B. van. Disponibilidade de fósforo em solos avaliada por diferentes extratores. Pesquisa Agropecuária Brasileira. Brasília, v. 34, n. 2, p. 267288, fev. 1999. SMITH, F.W. The phosphate uptake mechanism. Plant and Soil. Dordrecht, v. 245, n. 1, p. 105-114, 2002. SYERS, J. K, JOHNSTON, A. E, CURTIN, D. Efficiency of Soil and Fertilizer Phosphorus: Reconciling Changing Concepts of Soil Phosphorus Behaviour with Agronomic Information. FAO, Fertilizer and Plant Nutrition Bulletin 18. Rome, Italy. TEIXEIRA, I. R.; KIKUTI, H.; BORÉM, A. Crescimento e produtividade de algodoeiro submetido a cloreto de mepiquat e doses de nitrogênio. Bragantia, Campinas, v. 67, n. 4, p. 891-897, 2008. VENDRAME, P. R. S.; BRITO, O. R.; GUIMARÃES, M. F.; MARTINS, E. S.; BECQUER, T. Fertility and acidity status of latossolos (oxisols) under pasture in the Brazilian Cerrado. Anais da Academia Brasileira de Ciências. Rio de Janeiro, v. 82, n. 4, p. 1085-1094, 2010. VOSE, P. B. Introduction to nuclear techniques in agronomy plant biology. London: Pergamon Press, 1980. 391p. WANG, X. R.; SHEN, J.; LIAO, H. Acquisition or utilization, which is more critical for enhancing phosphorus efficiency in modern crops?. Plant Science. Amsterdan, v. 179, n. 4, p. 302-306, 2010. YAMADA, T. The Cerrado of Brazil: A success story of production on acid soils. Soil Science and Plant Nutrition. New York, v. 51, n. 5, p. 617-620, 2005. YUN, S. J.; KAEPPLER, S. M. Induction of maize acid phosphatase activities under phosphorus starvation. Plant and Soil. Dordrecht, v. 237, n. 1, p. 109-115, 2001. CAPÍTULO 2 – EFICIÊNCIA DE USO DE FÓSFORO POR VARIEDADES E GENÓTIPOS DE ALGODOEIRO RESUMO - A deficiência de fósforo (P) é a principal limitação para produção agrícola no Cerrado. O algodoeiro (Gossypium spp.) é o principal produto destinado às fibras usadas na cadeia têxtil nacional e mundial. O desenvolvimento de cultivares que possuam maior capacidade de adaptação a solos com baixa disponibilidade de P (“eficiência de fósforo”) é, portanto, necessário. O objetivo desse trabalho foi avaliar a eficiência de absorção e utilização de P por cultivares e genótipos de algodoeiro cultivados em solo da região do Cerrado (Argissolo Vermelho-Amarelo), através da técnica da diluição isotópica, utilizando o radioisótopo 32 P. O experimento foi conduzido em casa de vegetação disposto em delineamento inteiramente casualizado, em fatorial 2 x 17. Como fatores foram considerados dois níveis de P (insuficiente= 20 mg kg-1 e suficiente = 120 mg kg-1) e 17 materiais genéticos de algodoeiro. Os níveis de fósforo influenciaram significativamente na produção de matéria seca da parte aérea, teor e acúmulo de fósforo, atividade específica do 32P, valor L e valor L descontando o fósforo presente na semente pelos cultivares e genótipos de algodoeiro. A análise por agrupamento hierárquico utilizado para verificar as semelhanças entre os cultivares e genótipos de algodoeiro, classificou-os em grupos homogêneos internamente e heterogêneos entre grupos distintos. Os cultivares FMT 523, FM 910 e CNPA GO 2043 foram os mais responsivos a adubação fosfatada no nível suficiente de P, enquanto que o genótipo Barbadense 01 e os cultivares FM 966LL, IPR Jataí, BRS Aroeira e BRS Buriti foram os mais eficientes em absorver fósforo quando cultivados em nível insuficiente. PALAVRAS-CHAVE: Gossypium hirsutum L., Gossypium barbadense L., eficiências nutricionais, radioisótopos. ABSTRACT - Deficiency of phosphorus (P) is a major limitation to agricultural production in the Cerrado. Cotton (Gossypium spp.) is the main product for the fibers used in the textile chain nationally and globally. The development of cultivars that have greater capacity to adapt to soils with low P availability ('phosphorus efficiency') is therefore necessary. The objective of this study was to evaluate the efficiency of absorption and utilization of P by cotton genotypes and cultivars grown in Cerrado soil by the isotopic dilution technique, using the radioisotope 32 P. The soil was a Ultisols, labeled with the radioisotope 32 P.The experiment was conducted in a greenhouse in a completely randomized in factorial 2 x 17. Factors were considered two levels of P (insufficient = 20 mg kg-1 and sufficient = 120 mg kg-1) and 17 genetic materials of cotton. Phosphorus levels have significantly influenced the dry matter production of shoots, content and accumulation of phosphorus, specific activity of the 32P, value L and L value discounting the phosphorus present in the seed cotton by cultivars and genotypes. The hierarchical clustering analysis used to verify the similarities between the cultivars and genotypes of cotton, classified them into internally homogeneous groups and heterogeneous between different groups. Cultivars FMT 523, FM 910 and CNPA GO 2043 were the most responsive to phosphate fertilizer in sufficient level of P, while the genotype barbadense 01 and cultivars FM 966LL, IPR Jataí, BRS Aroeira and BRS Buriti were most efficient at absorbing phosphorus when grown in insufficient level. KEY-WORDS: Gossypium barbadense; G. hirsutum; nutritional efficiency; radioisotope. INTRODUÇÃO Entre os nutrientes requeridos pelas plantas, o fósforo (P) é o que mais limita a produção das culturas em solos da região do Cerrado (NOVAIS et al., 2007). A deficiência de P compromete os processos bioquímicos da planta, resultando na limitação do desenvolvimento vegetativo e reprodutivo (MARSCHNER, 1995). A maior parte do P aplicado via fertilizante em solos do Cerrado são convertidos em formas pouco solúveis, não podendo ser facilmente absorvidos pelas plantas (OZTURK et al., 2005), isso ocorre devido as característica de adsorção, condicionada pelo baixo pH e predomínio de óxidos de ferro e alumínio na fração argila. O desenvolvimento de genótipos e cultivares que possuam maior capacidade de desenvolvimento em solos com baixa disponibilidade de P (“eficiência de fósforo”) é, portanto, necessário. A fibra do algodoeiro (Gossypium spp.) é o principal produto utilizado na cadeia têxtil nacional e mundial, responsável por 50% de toda fibra utilizada nas indústrias. No Brasil, a cotonicultura está concentrada nas grandes áreas de vegetação de Cerrado, as quais possuem solos comumente ácidos e apresentam baixa disponibilidade de nutrientes, principalmente P, limitando dessa maneira a máxima produção dessa cultura, caso não seja realizada adequadamente uma adubação fosfatada (NOVAIS et al., 2007). Quando a cultura do algodoeiro é cultivada em solos deficientes em P, em geral realiza-se a adubação fosfatada com fontes solúveis, uma vez que, a planta de algodão pode não responder a adubações realizadas com fontes pouco solúveis (WANG et al., 2010). No Brasil, recomenda-se a aplicação de P na semeadura, pois devido à sua baixa mobilidade no solo nestes sistemas agrícolas, é fundamental torna-lo disponível em quantidades suficientes nas regiões próximas das raízes (LYNCH, 2007). No entanto, quando plantas são cultivadas em ambiente com baixo teor de P, esta deficiência pode desencadear diversas respostas adaptativas (SHINOZAKI; YAMAGUCHI-SHINOZAKI, 2007), fazendo com que ocorra na natureza diferenças quanto à eficiência de absorção e utilização de P, até mesmo entre cultivares de uma mesma espécie vegetal (BALIGAR et al., 2001). Essas diferenças podem ser atribuídas à morfologia do sistema radicular, densidade de pêlos radiculares e exsudação de prótons e ácidos orgânicos (GEORGE et al., 2006). Desta forma, o emprego de cultivares mais eficientes em absorver e utilizar P, associado às boas práticas de manejo de fertilizantes em áreas produtoras de algodão na região do Cerrado, certamente resultará na diminuição da quantidade de fertilizante fosfatado necessária, tornando assim a produção agrícola mais sustentável ao produtor. A técnica da diluição isotópica tem sido amplamente aplicada em pesquisas que investigam o destino e a disponibilidade de diferentes elementos em solos. A diluição com radioisótopos permite determinar a eficiência de absorção e utilização de um dado elemento qualquer pelas plantas, através da quantificação da atividade específica presente no material vegetal (LARSEN, 1967). Tendo em vista o exposto, o objetivo desse trabalho foi avaliar a eficiência de absorção e utilização de P por cultivares e genótipos de algodoeiro cultivados em solo da região do Cerrado, através da técnica da diluição isotópica, utilizando o radioisótopo 32 P. MATERIAL E MÉTODOS Foi desenvolvido um experimento na casa de vegetação do Centro de Energia Nuclear na Agricultura (CENA), localizado na latitude de 22°42`30`` S, longitude de 47°38`01``a 554 m de altitude, no município de Piracicaba-SP. Caracterização do solo O solo utilizado no experimento, classificado como Argissolo Vermelho Amarelo (EMBRAPA, 2006), foi coletado à profundidade de 0 a 0,2 m no município de Aquidauana – MS (20°28’ S e 55°40’ W). As amostras de solo foram secas ao ar livre, peneirada em malha de 2 mm e homogeneizadas. A análise granulométrica do solo foi realizada conforme preconizado em Camargo et al., (1986), os teores de argila, silte e areia foram respectivamente, 225, 62 e 713 g kg-1. As propriedades químicas foram: pH (0,01 mol L-1 CaCl2) = 4,2; matéria orgânica = 11 g dm-3; P extraído por resina = 3 mg dm-3; K = 2,7 mmolc dm-3, Ca = 15 mmolc dm-3; Mg = 10 mmolc dm-3; H + Al = 34 mmolc dm-3; CTC = 61,9 mmolc dm-3; SB (soma de bases) = 27,7 mmolc dm-3; V (saturação por bases) = 45 %, realizadas conforme metodologia descrita por Raij et al. (2001). Calagem e fertilização Para elevar a saturação por bases a 70% para o cultivo do algodoeiro, cada vaso com 2 kg de solo, recebeu 1,55 g de calcário, seguindo recomendações do Boletim 100 (RAIJ et al., 1997). O calcário utilizado tinha 27,50 % oxido de cálcio (CaO), 18,5 % de oxido de magnésio (MgO) e PRNT 95%. O solo ficou incubado por 30 dias e a umidade foi mantida em aproximadamente 70% da capacidade máxima de retenção de água. Os tratamentos com P foram aplicados na semeadura, utilizando como fonte o super-fosfato triplo, na dose de 20 mg kg-1 de P para o baixo nível (insuficiente) e 120 mg kg-1 de P como de alto nível (suficiente). Para elevar o teor do P total do solo foi aplicado em todos os vasos 200 mg kg-1 de fosfato natural de Gafsa. Para todos os vasos, no momento da semeadura foi aplicado N e K nas doses de 100 mg kg-1 de N como sulfato de amônio ((NH4)2SO4) e 200 mg kg-1 de K como sulfato de potássio (K2SO4). Aos 15 dias após emergência (DAE) foram aplicados 100 mg kg-1 de N como sulfato de amônio. A adubação com micronutrientes foi realizado pela aplicação de solução nutritiva em todos os vasos nas doses 0,5 mg kg-1 de B; 1,5 mg kg-1 de Cu; 1,5 mg kg-1 de Zn e 0,1 mg kg-1 de Mo. Diluição isotópica do 32P A marcação do solo de cada vaso foi realizada pela aplicação 200 ml de solução com o radioisótopo 32 P (8,7 KBq vaso-1) e 0,25 mg kg-1 de P de carregador e água deionizada. Após aplicação os vasos foram mantidos incubados por 20 dias para que ocorresse o equilíbrio isotópico entre o 32P e 31P. Por se tratar de radioisótopo e pelo perigo de contaminação e exposição excessiva pelo mesmo, foram tomados alguns cuidados no seu manuseio. Foram utilizados equipamentos de proteção individual (luvas descartáveis do tipo cirurgia, óculos, máscara de proteção e jaleco de manga longa) e anteparo de acrílico, além do monitoramento da área com medidor de radiação tipo Geiger Muller. Todos os vasos foram revestidos com sacos plásticos de parede grossa para evitar vazamentos. No final do experimento o solo marcado com 32P foi armazenado até que sua atividade decaísse ao nível considerado inofensivo para o meio ambiente, posteriormente descartado. Cultivares de algodoeiro Foram utilizados 15 cultivares de algodoeiro (Gossypium hirsutum) e 2 genótipos de algodoeiro arbóreo (Gossypium barbadense L.) de diferentes centros de melhoramento genético, buscando como objetivo identificar diferenças quanto à eficiência de absorção e utilização de fósforo entre eles. Os cultivares de algodoeiro utilizados no experimento são provenientes da Embrapa Algodão (CNPA), do Instituto Agronômico de Campinas (IAC), do Instituto Agronômico do Paraná (IAPAR), da Fundação Mato Grosso (FMT), cultivares de empresas comerciais (DELTAPINE® e BAYER®), e os genótipos de algodão arbóreo são provenientes da região do ecótono Cerrado/Pantanal. Dentre os cultivares há materiais genéticos classificados como: (i) ciclo precoce; (ii) ciclo médio; (iii) ciclo tardio; (iv) cultivares tradicionais, que são adaptados aos solos do cerrado; (v) cultivares tradicionais que não são adaptados aos solos do cerrado; (vi) materiais genéticos adaptados aos solos pantaneiros (barbadense). Esses cultivares são: BRS - Aroeira; BRS - Buriti; CNPA – GO 2043; IPR – Jataí; IPR – 05 -513; IPR – 140; FMT – 523; FMT – 701; FM – 910; FM – 966LL; FB – 0403; IAC – 25; Nuopal®; Sicala – 40; Barbadense – 01 e Barbadense – 02. Como culturas testemunhas (padrões) foram utilizadas a crotalária juncea (Crotalaria juncea L.) como espécie ineficiente em absorver P (MURAOKA et al. 2006) e o tremoço branco (Lupinus albus L.) como espécie eficiente (HOCKING et al., 1997; FERNANDES; MURAOKA, 2002). Cultivo das plantas O cultivo das plantas foi realizado em vasos de propileno com 2 kg de solo em cada vaso. Foram semeadas cinco sementes por vaso, para todas as cultivares e genótipos de algodoeiro e culturas padrões, aos sete DAE realizou-se o desbaste, mantendo duas plantas por vaso. A umidade do solo foi mantida em aproximadamente 70% da capacidade máxima de retenção de água durante o desenvolvimento do experimento. Os vasos foram irrigados diariamente com água deionizada. Análise química dos materiais vegetais Aos 40 DAE a parte aérea das plantas foi colhida rente ao solo. As amostras vegetais colhidas foram lavadas em água destilada, em seguida secas a 60º C em estufa com circulação de ar forçada por 72 horas, pesadas para determinação matéria seca da parte aérea, moídas em moinho tipo Willey, e o P das amostras foi extraído via digestão nitro-perclórica, sendo a determinação do nutriente realizada por meio do método colorimétrico do metavanadato, seguindo os procedimentos descritos por Malavolta et al. (1997). Amostras de sementes dos cultivares de algodoeiro e culturas padrões utilizadas no experimento foram analisadas quanto ao teor de P presente nas sementes, conforme metodologia descrita por Malavolta et al. (1997). O teor de P das sementes foi descontado no calculo do valor L. Determinação da atividade do 32P No extrato da digestão nítrico-perclórica, a atividade do 32P foi determinada em contador de cintilação liquida através do efeito Cerenkov (Vose, 1980). Delineamento experimental Foi utilizado um delineamento inteiramente casualizado, em fatorial de dois níveis de P, considerados como insuficiente e suficiente (20 mg kg-1 e 120 mg kg-1), 15 cultivares de algodoeiro herbáceo, (Gossypium hirsutum L.), 2 genótipos de algodoeiro arbóreo (Gossypium barbadense L.) e 2 culturas testemunhas (padrões), crotalária juncea (Crotalaria juncea L.), pouco eficiente em absorver P (Fernandes & Muraoka, 2002) e o tremoço branco (Lupinus albus L.), muito eficiente em absorver P (Hocking et al., 1997), com três repetições. Cálculos e análise dos dados PA = [P] x MSPA Em que: PA = fósforo acumulado (mg planta-1) [P] = concentração de fósforo (g kg-1) MSPA = matéria seca da parte aérea (g vaso-1) Atividade especifica do 32P, Valor L e Valor Lsem Com os valores de P acumulado na planta na MSPA e atividade do 32 P foram calculadas a Ae, o valor L e o valor Lsem, conforme as equações descritas por Larsen (1952) e Hocking et al. (1997). Onde: Ae = atividade especifica do radioisótopo (Bq g-1 P) 32 P = atividade do radioisótopo na planta (Bq) 31 P = teor de fósforo na planta (g kg-1) ( Onde: ) Valor L = valor L (mg de P kg-1 de solo); Ae0 = atividade específica da solução aplicada (DPM g P-1); AeP = atividade específica da planta (DPM g P-1); X = a quantidade do elemento marcado adicionado; ( [ ] ) Onde: Valor Lsem = valor L descontando o P na planta proveniente da semente (mg de P kg-1 de solo); Y = atividade 32P da solução aplicada por vaso (DPM) XT = atividade P total na planta (mg); YT = atividade de 32P na planta (DPM); X = dose de carregador 31P aplicado por vaso (mg) Z = conteúdo de P total proveniente da semente (mg); A eficiência de absorção de P pelas plantas é inversamente proporcional à Ae e diretamente ao Valor L e Valor Lsem. Definições e métodos de cálculo de eficiência nutricional A eficiência nutricional do P pelas plantas pode ser calculada por métodos descritos por Baligar e Fageria (1999), apresentados a seguir: 1 - Eficiência agronômica (EA); Onde: EA = eficiência agronômica g g-1; PAF = produção da parte aérea com fertilização (g); PASF = produção da parte aérea sem fertilização (g); QFA = quantidade de fertilizante aplicado (g); 2 – Eficiência fisiológica (EF); Onde: EF = eficiência fisiológica g g-1; PAF = produção da parte aérea com fertilização (g); PASF = produção da parte aérea sem fertilização (g); AFF = acumulação de fósforo com fertilização (mg kg-1); AFSF = acumulação de fósforo sem fertilização (mg kg-1); 3 – Eficiência de recuperação aparente (ERA); Onde: AFF = acumulação de fósforo com fertilização (mg vaso-1); AFSF = acumulação de fósforo sem fertilização (mg vaso-1); QFA = quantidade de fertilizante aplicado (mg) por vaso; 4 – Eficiência de utilização (EU); Onde: EU = eficiência de utilização; EF = eficiência fisiológica; ER = eficiência de recuperação; Análises estatísticas Os dados foram submetidos a analise de variância (ANOVA), utilizando o pacote estatístico SAS® - “Statistical Analysis System” (SAS Institute, 2001). Foram feitas comparações entre as médias (T-student) para os resultados obtidos de produções de MSPA, concentração de P na MSPA, P acumulado na MSPA, Ae, valor L, valor Lsem, EA, EF, ERA e EU para os dois níveis de fósforo, também foram realizadas análises de correlação de Pearson e agrupamento hierárquico, com o objetivo de agrupar os cultivares e genótipos semelhantes em determinados grupos. Além da significância estatística das correlações, foi levada em conta a importância prática entre as correlações de duas ou mais variáveis para atingir o objetivo do trabalho. A análise de agrupamento hierárquico foi precedida pela padronização dos dados antes do cálculo das distâncias euclidianas, uma vez que, as variáveis estudadas apresentavam escalas diferenciadas. Sendo assim, as médias de cada cultivar para cada variável foram divididas pelo desvio padrão do mesmo, de forma que todas as variáveis passaram a ter o mesmo peso para a análise de agrupamento. Após a padronização, todas as médias ficaram iguais a zero e as variâncias iguais a um (MANLY, 2008). Os resultados finais dos agrupamentos são apresentados na forma de dendogramas. Para facilitar o entendimento e interpretação dos dendogramas foram apresentadas juntamente as tabelas com os valores médios e o coeficiente de variação de todas as variáveis estudadas. RESULTADOS E DISCUSSÃO Os resultados das culturas padrões foram apresentados separadamente dos cultivares e genótipos de algodoeiro. Os valores médios obtidos para as culturas padrões nos dois níveis de P (20 e 120 mg kg-1 de P) estão apresentados na Tabela 1. Tabela 1 – Valores médios da produção de matéria seca da parte aérea (MSPA), concentração de fósforo na planta (Pconc), fósforo acumulado por vaso (Pacum), atividade específica (Ae), valor L e valor L descontando-se o P proveniente da semente (Valor Lsem), Eficiência agronômica (EA), Eficiência fisiológica (EF), Eficiência de recuperação (ER) e Eficiência de utilização (EU) das duas culturas padrões cultivadas em dois níveis de P (120 e 20 mg kg-1). 120 mg kg-1 MSPA Pconc Pacum Ae valor L valor Lsem -1 -1 -1 -1 g g kg mg vaso DPM µg P --------mg kg solo-------Tremoço branco 1,1 5,8 3,8 3,7 1236,2 967,1 Crotalária 6,6 7,1 38,1 8,5 349,9 153,2 20 mg kg-1 Tremoço branco 1,3 3,8 3,4 1,1 3298,0 1627,0 Crotalária 5,7 7,3 21,8 6,5 398,8 199,0 Eficiências Nutricionais EA EF ER EU -1 -1 mg mg mg mg % mg mg-1 Tremoço branco 0,1 299 1,13 0,1 Crotalária 3,6 51,3 6,8 4,5 Os valores médios da produção de MSPA, Pconc, Pacum dos cultivares e genótipos de algodoeiro nos dois níveis de P (20 e 120 mg kg-1 de P) estão apresentados na Tabela 2. Tabela 2 – Valores médios da produção de matéria seca da parte aérea (MSPA), concentração de fósforo na planta (Pconc) e fósforo acumulado por vaso (Pacum) nos 15 cultivares e 2 genótipos de algodão cultivado em dois níveis de P (120 e 20 mg kg-1). 120 mg kg-1 Cultivar MSPA Pconc -1 20 mg kg-1 Pacum MSPA Pconc g kg mg vaso-1 39,3 7,0 3,7 26,0 4,7 48,7 6,3 4,0 23,7 10,5 4,7 47,0 6,8 4,7 32,3 FM 993 10,6 3,7 38,3 6,6 3,7 26,0 FM 966 LL 10,0 4,0 36,7 6,1 4,3 25,3 BRS Aroeira 13,0 4,7 59,0 10,4 3,3 36,0 BRS Buriti 10,0 4,3 41,0 6,9 3,7 24,3 CNPA GO 2043 14,2 5,0 72,7 9,8 3,7 36,3 IAPAR 40 12,9 4,3 54,7 9,5 3,7 35,0 IPR Jataí 9,9 4,3 41,7 6,0 5,0 28,3 IPR 05-513 10,0 3,7 39,0 6,9 3,7 24,7 Sicala 40 8,5 5,0 42,7 7,0 5,0 33,0 NuOpal 7,1 4,7 32,0 6,9 4,3 29,0 IAC 25 10,5 4,7 43,7 8,0 4,7 34,0 FB 0403 8,3 5,0 41,7 6,4 4,3 27,3 Barbadense 1 9,6 4,7 41,3 8,9 3,0 28,7 Barbadense 2 8,8 4,7 42,3 7,3 3,3 23,0 Média 10,1 4,5 45,0 7,4 4,0 30,0 F 6,4** 2,4* 3,6** 4,8*** 2,0* 2,6** 2,1 0,9 14,6 1,7 0,9 8,2 g kg mg vaso FMT 701 8,9 4,0 FMT 523 9,5 FM 910 DMS -1 Pacum g g -1 CV (%) 12 15 19 12 15 *, **, *** Significativo aos níveis de probabilidade de 5%, 1% e 0,1% pelo Test-T 17 A MSPA foi influenciada significativamente pelos níveis de P, variedades e genótipos de algodoeiro (Tabela 2). No nível insuficiente de P a produção de MSPA de todos os cultivares e genótipos de algodoeiro foi menor. Para os dois níveis de P, a MSPA variou entre 6,0 a 14,4 g, tendo como média de 10,1 para o nível suficiente de P (120 mg kg-1), e 7,4 g para o nível insuficiente (20 mg kg-1) (Tabela 2). No nível suficiente de P os teores de P (Pconc) entre os 15 cultivares e 2 genótipos de algodoeiro variou de 3,7 g kg-1 (FM 993 e IPR 05-513) a 5,0 g kg-1 (CNPA GO 2043 e FB 0403), tendo como média 4,5 g kg-1. Enquanto que no nível insuficiente de P, o Pconc entre os 15 cultivares e 2 genótipos de algodoeiro variou de 3 g kg-1 (Barbadense 01) a 5,0 g kg-1 (IPR Jataí), tendo como média 4,2 g kg-1 (Tabela 2), mostrando com isso que os cultivares de algodoeiro quando submetidos a condições adversas de solos, como a baixa disponibilidade de P, podem apresentar eficiência diferenciada na extração do P (Sant’ana et al., 2003). Já o conteúdo de P (Pacum) no nível suficiente de P, variou entre 72,7 mg vaso-1 (CNPA GO 2043) a 32 mg vaso-1 (NuOpal), tendo como média 45 mg vaso-1 de P acumulado (Tabela 2). Para o nível insuficiente de P, o cultivar CNPA GO 2043 também foi o que apresentou o maior acúmulo de P na MSPA (36,3 mg vaso -1), enquanto que o genótipo Barbadense 02 apresentou o menor acúmulo de P na MSPA (23 mg vaso-1), tendo como média 30 mg vaso-1 de P acumulado (Tabela 2). Resultados semelhantes foram obtidos por Fageria et al. (2010) para genótipos de feijão cultivados em solo de Cerrado, onde observaram que houve grande variação em relação a eficiência em acumular P entre os 20 genótipos de feijão comum, resultante da baixa disponibilidade de P nesses solos. Os métodos de análise por agrupamento hierárquico foram utilizados para verificar as semelhanças entre os cultivares e genótipos de algodoeiro baseado na MSPA, Pconc, Pacum, Ae, valor L, valor Lsem, sendo todas as variáveis consideradas igualmente importantes. Os coeficientes de correlação (matriz de correlação) entre as variáveis MSPA, Pconc, Pacum, Ae, valor L e valor Lsem nos dois níveis de P estão representados na Tabela 3. Além da significância das correlações, considerou-se a importância prática entre as correlações de duas ou mais variáveis para montagem dos dendogramas, sendo assim a apresentação dos resultados foram separadas em duas partes, primeira baseada na MSPA, Pconc e Pacum, a segunda na Ae, valor L e valor Lsem, para ambos níveis de P aplicados. A classificação dos grupos dos cultivares e genótipos de algodoeiro nos dendogramas fundamentaram-se em obter maior homogeneidade dentro de cada grupo e maior heterogeneidade entre os grupos distintos, baseando-se nos valores médios das variáveis em cada agrupamento e nas distâncias euclidianas entre os 15 cultivares e 2 genótipos de algodoeiro (Manly, 2008). Tabela 3 – Coeficientes de correlação entre as variáveis, matéria seca da parte aérea (MSPA), Concentração de fósforo na MSPA (Pconc), fósforo acumulado na MSPA (Pacum), Atividade específica (Ae), valor L e valor L descontando o P na planta proveniente da semente (valor Lsem) dos 15 cultivares e 2 genótipos de algodão nos dois níveis de P (120 e 20 mg kg-1) 120 mg kg-1 Pconc g kg MSPA g vaso-1 g kg-1 Pconc Pacum mg vaso-1 Ae DMP µg P-1 -1 -0,009ns Pacum Ae valor L -1 -1 mg kg solo mg kg-1 solo 0,86*** 0,08ns -0,08ns -0,28ns 0,47ns 0,054ns 0,29ns 0,34ns 0,18ns 0,10ns -0,06ns -0,73*** -0,79*** -1 valor L mg kg solo MSPA g vaso-1 g kg-1 Pconc Pacum mg vaso-1 Ae DMP µg P-1 valor Lsem DMP µg P mg vaso -1 0,76*** -0,49* 20 mg kg-1 0,73*** 0,67*** -0,50* -0,46ns 0,24ns -0,56ns 0,35ns 0,25ns 0,28ns -0,24ns -0,28ns -0,90*** -0,85*** -1 valor L mg kg solo 0,95*** ns , ***, * Não significativo, Significativo ao nível de probabilidade 0,1%, 1% e 5% Para o nível suficiente de P, com base nas variáveis MSPA, Pconc e Pacum, e através da análise de agrupamento, foram considerados quatro grupos no dendograma (Figura 1), e os cultivares e genótipos de algodoeiro foram classificados quanto à responsividade à adubação fosfatada P em grupos de acordo com a seguinte definição: grupo (1) altamente responsivo à adubação com P (alta produção de MSPA, alto Pconc, alto Pacum); (2) responsivo à adubação com P (superior produção de MSPA, superior Pacum); (3) pouco responsivo à adubação com P (produtivo em MSPA); (4) baixa responsividade à adubação com P (baixa produção de MSPA e baixo P acum). Os grupos foram formados pelos seguintes cultivares e genótipos: (1) FMT 523; (2) CNPA GO 2043; (3) Sicala 40 e (4) Barbadense 02, FM 966LL, IAPAR 40, BRS Buriti, IPR 05513, BRS Aroeira, Barbadense 01, IAC 25, FM 993, NUOPAL, FMT 701, IPR Jataí, FM 910 e FB 0403. Figura – 1 Dendograma resultante da análise de agrupamento hierárquico de 15 cultivares e 2 genótipos de algodão, baseado nas variáveis matéria seca da parte aérea (MSPA), Concentração de P (Pconc) e P acumulado (Pacum) para o nível suficiente de P (120 mg kg-1). Para o nível insuficiente de P, os valores de MSPA dos 15 cultivares e 2 genótipos de algodoeiro correlacionaram-se com os valores de Pconc (-0,49*) e com Pacum (0,73***) (Tabela 3). Com base nas variáveis MSPA, Pconc e Pacum e através da análise de agrupamento, foram considerados seis grupos no dendograma (Figura 2). Os cultivares e genótipos de algodoeiro foram classificados quanto à eficiência de absorção e utilização de P em grupos de acordo com a seguinte definição: grupo (1) altamente eficiente na absorção e utilização de P, (elevada produção de MSPA e Pacum); (2) muito eficiente na absorção e utilização de P (alta produção de MSPA e alto Pacum); (3) eficiente na absorção e utilização de P (superior produção de MSPA, alto Pacum); (4) mediamente eficiente na absorção e utilização de P (média produção de MSPA e baixo Pacum); (5) pouco eficiente na absorção e utilização de P (baixa produção de MSPA e baixo Pacum); (6) ineficiente na absorção e utilização de P (baixa produção de MSPA, baixo Pconc, baixo Pacum). Os grupos foram formados pelos seguintes cultivares e genótipos: (1) Barbadense 01; (2) FM 966LL; (3) NuOpal; (4) IPR Jataí; (5) IAPAR 40, FMT 701 e (6) FMT 523, Sicala 40, BRS Aroeira, BRS Buriti, IPR 05-513, IAC 25, FM 993, CNPA GO 2043, FM 910, Barbadense 02 e FB 0403. Figura – 2 Dendograma resultante da análise de agrupamento hierárquico de 15 cultivares e 2 genótipos de algodão, baseado nas variáveis matéria seca da parte aérea (MSPA), concentração de P (Pconc) e P acumulado (Pacum) para o nível insuficiente de P (20 mg kg-1). Os valores médios da Ae, valor L e valor Lsem dos cultivares e genótipos de algodoeiro nos dois níveis de P estão apresentados na Tabela 4. Observa-se que para o nível suficiente de P a variação entre os cultivares e genótipos com relação à Ae não foi significativa, mas os cultivares Sicala 40 e IPR Jataí foram os que apresentaram menores Ae, 4,4 e 5,2 DPM µg P-1, respectivamente, enquanto que os cultivares BRS Buriti e FM 966LL foram os que apresentaram maiores Ae, com valor de 8,5 e 8,9 DPM µg P-1, respectivamente. A média para os 15 cultivares e 2 genótipos de algodoeiro ficou em 6,8 DPM µg P-1. Para o nível insuficiente de P a variação para Ae entre os cultivares e genótipos de algodoeiro foi de 2,8 DPM µg P-1 (FMT 701) e 12 DPM µg P-1 (Barbadense 02), a média para os 15 cultivares e 2 genótipos de algodoeiro foi de 8,5 DPM µg P-1. para as variáveis valor L e valor Lsem, as médias no nível suficiente de P foram 381,7 e 235,5 mg kg-1 solo, respectivamente. Para o nível insuficiente de P os valores médios para valor L e valor Lsem foram de 375,7 e 194,3 mg kg-1 solo, respectivamente (Tabela 4). Tabela 4 – Valores médios da atividade específica (Ae), valor L e valor L descontandose o P proveniente da semente (valor Lsem) dos 15 cultivares e 2 genótipos de algodão cultivado em dois níveis de P (120 e 20 mg kg-1). 120 mg kg-1 Cultivar Ae DPM µg P valor L -1 -1 20 mg kg-1 valor Lsem -1 Ae mg kg solo mg kg solo DPM µg P valor L -1 valor Lsem -1 mg kg solo mg kg-1solo FB 0403 6,0 438,7 303,3 4,2 532,9 265,9 FMT 701 8,3 327,8 163,6 2,8 776,8 495,5 Sicala 40 4,4 516,3 306,7 4,8 547,0 222,7 FM 910 5,4 367,9 319,0 6,9 331,9 197,0 NuOpal 6,8 401,4 267,2 8,7 301,9 150,5 IAC 25 7,1 401,3 200,3 6,7 408 203,5 FM 993 6,4 423,7 211,6 8,3 322,9 160,9 FM 966LL 8,9 342,2 170,6 4,0 414,3 257,1 FMT 523 6,6 414,9 221,9 5,3 506,5 252,3 IPR Jataí 5,2 417,9 268,2 6,4 402,2 200,5 IPR 05-513 7,3 353,3 176,4 9,0 291,0 144,9 BRS Buriti 8,5 340,1 169,7 7,5 347,4 173,5 IAPAR 40 7,4 350,0 174,7 10,0 265,1 132,2 BRS Aroeira 7,7 340,4 170,0 10,9 236,4 118,0 CNPA GO 5,9 433,6 216,5 11,0 243,3 121,5 Barbadense 01 7,6 344,7 164,2 10,7 240,4 97,4 Barbadense 02 6,8 275,5 134,1 12,0 219,5 109,4 Média F DMS 6,8 381,7 235,5 8,5 375,7 194,3 O,7ns 1,3ns 1,2ns 8,5*** 11,1*** 4,2** 4,1 145,0 140,1 2,7 126,0 131,1 CV (%) 17,8 14,9 36,9 33,8 39,1 48,4 Não significativo, *, **, *** Significativo aos níveis de probabilidade de 5%, 1% e 0,1% pelo Test-T ns A maior eficiência de absorção de P pode ser determinada pela Ae do 32 P presente na planta, ou seja, quanto menor a Ae maior a eficiência do cultivar ou genótipo em absorver o P pouco disponível do solo, e quanto maior a Ae menor a eficiência de absorção. Se todos cultivares e genótipos de algodoeiro fossem idênticos quanto à eficiência na absorção de P, eles deveriam apresentar a mesma atividade específica, tendo uma relação DPM µg-1 de P iguais (Hocking et al., 1997). Para o nível suficiente de P (120 mg kg-1), os valores da Ae dos 15 cultivares e 2 genótipos de algodoeiro correlacionaram-se com o valor L e valor Lsem, - 0,73*** e 0,79***, respectivamente, já o valor L correlacionou-se valor Lsem (0,76***) (Tabela 3). Através da análise de agrupamento foram considerados quatro grupos no dendograma (Figura 3), em um ambiente rico em P, os cultivares e genótipos de algodoeiro foram classificados quanto à eficiência de absorção e utilização de P em grupos de acordo com a seguinte definição: grupo (1) altamente eficiente na absorção de P (baixa Ae, elevado valor L e valor Lsem); (2) muito eficiente na absorção de P (baixa Ae, alto valor L e valor Lsem); (3) mediamente eficiente na absorção de P (superior valor L e valor Lsem); (4) pouco eficiente na absorção de P (alta Ae, baixo valor L e valor Lsem). Os grupos foram formados pelos seguintes cultivares e genótipos: (1) FM 910; (2) CNPA GO 2043; (3) IPR Jataí; (4) FM 966LL, BRS Buriti, IAC 25, Nuopal, FM 993, FMT 701, Barbadense 02, FMT 523, Sicala 40, IPR 05-513, BRS Aroeira, IAPAR 40, Barbadense 01 e FB 0403. Figura – 3 Dendograma resultante da análise de agrupamento hierárquico de 15 cultivares e 2 genótipos de algodão, baseado nas variáveis atividade específica (Ae), valor L (valor L) e valor L descontando o P da planta proveniente da semente (valor Lsem) para o nível suficiente de P (120 mg kg-1). Figura – 4 Dendograma resultante da análise de agrupamento hierárquico de 15 cultivares e 2 genótipos de algodão, baseado nas variáveis atividade específica (Ae), valor L (valor L) e valor L descontando o P da planta proveniente da semente (valor Lsem) para o nível insuficiente de P (20 mg kg-1). Os valores médios de de EA, EF, ERA e EU dos cultivares e genótipos de algodoeiro estão apresentados na Tabela 5. Para as variáveis EA, EF, ERA e EU dos 15 cultivares e 2 genótipos de algodoeiro, EA correlacionou-se significativa e positivamente com EF e EU, 0,53* e 0,70*, respectivamente. A EF correlacionou-se significativa e positivamente com o EU (0,95***) (Tabela 6). Tabela 5 – Valores médios das variáveis, Eficiência agronômica (EA), Eficiência fisiológica (EF), Eficiência de recuperação aparente e Eficiência de utilização (EU) dos 15 cultivares e 2 genótipos de algodão Cultivar EA EF ERA EU -1 -1 mg mg mg mg % mg mg-1 9,85 184,04 9,33 11,50 FB 0403 12,13 147,97 9,85 5,43 FMT 701 7,53 133,35 3,81 6,20 Sicala 40 18,27 218,18 9,93 21,38 FM 910 1,53 58,71 2,85 1,53 NuOpal 17,18 272,09 6,25 17,18 IAC 25 19,57 262,83 6,30 19,57 FM 993 19,45 407,18 5,75 19,45 FM 966LL 16,35 209,93 16,88 16,35 FMT 523 13,03 347,91 3,48 13,03 IPR Jataí 20,53 285,30 3,48 13,28 IPR 05-513 39,65 244,30 8,28 15,58 BRS Buriti 16,95 171,77 10,02 16,95 IAPAR 40 13,02 126,47 7,25 10,70 BRS aroeira 22,82 127,15 18,18 22,82 CNPA GO 3,38 62,45 7,25 3,38 Barbadense 01 7,90 89,40 9,57 7,90 Barbadense 02 Média 13,5 194,3 4,20 67,4 F 3,21** 2,54* 1,90* 3,21** DMS 8,16 196 6,18 8,17 CV (%) 45 49 53 45 ns Não significativo, *, **, Significativo aos níveis de probabilidade de 5% e 1% pelo Test-T Tabela 6 – Coeficientes de correlação entre as variáveis, Eficiência agronômica (EA), Eficiência fisiológica (EF), Eficiência de recuperação aparente (ERA) e Eficiência de utilização (EU) dos 15 cultivares e 2 genótipos de algodão EF ERA EU -1 mg mg % mg mg-1 -1 mg mg 0,53* 0,26ns 0,70*** EA -1 ns mg mg -0,22 0,60*** EF % 0,43 ns ERA ns * *** , , Não significativo, Significativo ao nível de probabilidade de 0,5 e 0,1% Para as variáveis EA, EF, ERA e EU, foram considerados três grupos no dendograma (Figura 5), e os cultivares e genótipos de algodoeiro foram classificados quanto às eficiências nutricionais em grupos de acordo com a seguinte definição: Grupos: (1) muito eficiente na absorção de P (elevada produção de MSPA por unidade de P aplicado, alto rendimento biológico por unidade de P absorvido, alta capacidade de recuperação do P aplicado e alta eficiência de utilização do P aplicado); (2) eficiente na absorção de P (alta produção de MSPA por unidade de P aplicado, superior rendimento biológico por unidade de P absorvido, superior capacidade de recuperação do P aplicado e superior eficiência de utilização do P aplicado); (3) pouco eficiente na absorção de P (baixa produção de MSPA por unidade de P aplicado, baixo rendimento biológico por unidade de P absorvido, baixa capacidade de recuperação do P aplicado e baixa eficiência de utilização do P aplicado). Figura – 5 Dendograma resultante da análise de agrupamento hierárquico de 15 cultivares e 2 genótipos de algodão, baseado nas variáveis eficiência agronômica (EA), eficiência fisiológica (EF), eficiência de recuperação aparente (ERA) e eficiência de utilização (EU). Os grupos foram formados pelos seguintes cultivares e genótipos: (1) Barbadense 02; (2) CNPA GO 2043, Barbadense 01, FMT 523, FM 966LL e FM 993; (3) IPR Jataí, NuOpal, IAC 25, FMT 701, BRS Buriti, IPR 05-513, Sicala 40, IAPAR 40, FM 910, BRS Aroeira e FB 0403. Observando-se a Figura 5 e os valores médios apresentados na Tabela 4, os genótipos e cultivares Barbadense 02, CNPA GO 2043, Barbadense 01, FMT 523, FM 966LL e FM 993 foram os mais eficientes em relação às eficiências nutricionais, apresentando assim maior produção de MSPA por unidade de P aplicado, elevado rendimento biológico por unidade de P absorvido, alta capacidade de recuperação do P aplicado e alta eficiência de utilização do P aplicado. Os valores médios das variáveis EA, EF, ERA e EU para os cultivares e genótipos de algodão apresentaram grande variação (Tabela 5). A EA variou entre 39,65 (BRS Buriti) e 1,53 (NuOpal) mg de MSPA produzida por mg de P aplicado ao solo, com média de 13,5 mg de MSPA produzida por mg de P aplicado ao solo. O valor médio entre os cultivares e genótipos para EF foi de 194,3 mg de produção de MSPA por mg de P aplicado ao solo. A eficiência de recuperação aparente (ERA) dos cultivares e genótipos de algodão apresentaram valor médio de 4,2%, variando entre 2,85 (NuOpal) e 18,18 % (CNPA GO 2043). A faixa média para recuperação da adubação fosfatada varia entre 10 a 15% para culturas anuais (Malavolta, 2006). Para a variável eficiência de utilização (EU) os cultivares e genótipos de algodão variaram entre 1,53 (NuOpal) e 22,82 (CNPA GO 2043) mg mg-1, tendo como média 13,5 mg mg-1. Culturas Padrões Como as duas espécies padrões foram cultivadas nas mesmas condições, e tiveram acesso à mesma fonte de P, logo, as atividades específicas de 32 P na MSPA podem ser comparadas, mesmo que a concentração e acúmulo de P sejam diferentes (Larsen, 1952). Consequentemente, a menor Ae apresentada pelo tremoço branco nos dois níveis de P, indica a maior capacidade dessa espécie em absorver o P pouco disponível para a maioria das plantas (Hocking et al. 1997). Vários trabalhos têm relatado que tremoço branco é considerado uma planta modelo em relação à superação aos efeitos do estresse de deficiência de P (Hocking et al., 1997 & Shane et al., 2008). Comparando a eficiência do uso de P por híbridos de milho, e utilizando o tremoço branco como planta referência, Fernandes & Muraoka (2002) relataram que essa espécie apresentou maior eficiência que todos os híbridos, apresentando uma Ae 2,3 vezes menor que o híbrido mais eficiente em absorver e utilizar P. Mesma observação pode ser feita no presente estudo, onde comparando as espécies padrões com os cultivares e genótipos de algodoeiro, observa-se que o tremoço branco foi mais eficiente em absorver e utilizar P para ambos os níveis de P, apresentando menor Ae, e superiores valor L e valor Lsem (Tabelas 1 e 4). A formação de raízes proteoides pode ser uma das explicações para o tremoço branco ser mais eficiente em absorver P pouco disponível do solo, sendo que os investimentos dessa espécie na formação desse tipo de raiz podem variar de 30 a 80% do total do peso do sistema radicular, aumentando a superfície específica e eficiência na absorção de água e nutrientes (Richard et al., 2009). Avaliando sete espécies vegetais quanto à eficiência de absorção de P, Hocking et al. (1997) observaram que após quatro semanas de cultivo o tremoço branco apresentou um sistema radicular com 45% formado por raízes proteoides, considerando essa característica como uma adaptação da espécie a baixa disponibilidade de P no solo. Outra característica favorável do tremoço branco é a exsudação de compostos orgânicos na rizosfera, responsáveis por mudanças na solubilidade, transporte e absorção de P (Fageria & Moreira, 2011). Cultivares e Genótipos Observando a Figura 1, juntamente com os valores médios apresentados na Tabela 2, verificou-se que os cultivares CNPA GO 2043 e FMT 523 foram os que apresentaram melhores resultados para as variáveis estudadas, mostrando que quando cultivados em nível suficiente de P (120 mg kg-1), esses dois cultivares apresentaram maior responsividade à adubação fosfatada. A produção de MSPA pode ser considerada como bom indicador do rendimento econômico máximo, portanto, pode ser utilizada como critério de seleção e avaliação de variedades e genótipos quanto à eficiência nutricional (Fageria et. al., 2010). A redução na MSPA devido à deficiência de P também pode ser considerada um parâmetro útil na avaliação relativa da tolerância dos cultivares de algodoeiro às condições de baixa fertilidade de P no solo (Ahmad et al., 2001). De acordo com Wang et al. (2008) níveis de P (0 – 20 mg kg-1) influenciaram significativamente na produção da MSPA do algodoeiro, indicando diferença em relação aos níveis de P aplicado ao solo, os mesmos autores também verificaram que quando o algodoeiro foi cultivado em nível adequado de P, houve um aumento de 38% na produção de MSPA em relação ao nível inadequado. A variação na produção MSPA entre os cultivares e genótipos (Tabela 2), indica que houve diferenciação entre os materiais genéticos para acumular MSPA, quando cultivados em diferentes níveis de P no solo. A baixa redução na produção de MSPA devido à deficiência de P é um parâmetro útil na avaliação relativa de cultivares e genótipos de algodoeiro, podendo classificá-los como mais eficientes em relação ao estresse sofrido pela deficiência de P (Baligar et al., 2001). Cultivares que apresentam diminutas reduções em relação à alta e baixa fertilização de P, conjuntamente com boas produtividades em ambos ambientes, são considerados adequados ao cultivo em regiões que a concentração de P é limitante, indicando variações de adaptabilidade as condições de baixo nível de P (Ahamad et al., 2001). Em condições de insuficiência de P são relatados que a menor produção de MSPA pode ocorrer devido à baixa expansão foliar, ocasionada pelos efeitos inibitórios que comprometem a condutância hidráulica das raízes (Ahmad et al., 2001). Comparando dois genótipos de colza (Brassica napus) (eficiente e ineficiente), em dois níveis de P (5 µM e 1000 µM), Hu et al. (2010) relataram que no nível baixo de P o genótipo eficiente apresentou uma produção de MSPA 80,5% maior que o genótipo ineficiente, também foi observado que a variação da MSPA entre os níveis de P para o genótipo ineficiente foi maior do que o genótipo eficiente, confirmando assim que o genótipo eficiente possui maior tolerância ao estresse causado pela deficiência de P. A diferenciação de cultivares e genótipos em relação ao acúmulo de P são atribuídos à adequação das características morfológicas das plantas, ocorrendo de forma a superar o estresse causado pela deficiência de P. Essa adequabilidade da planta pode estar ligada na máxima e continua exploração do solo através da proliferação e extensão de todos os tipos de raízes, preferencialmente raízes que sejam metabolicamente mais eficientes em absorver P (proteoides) (Baligar et al., 2001; Lynch & Ho, 2005). De acordo com Wang et al. (2008) plantas de algodão em condição de campo não tiveram capacidade de liberar ácidos orgânicos através das raízes, não ocorrendo dessa forma modificação da química na rizosfera para imobilização de P, sendo assim a absorção de P pelas plantas de algodão se baseia principalmente através da exploração das raízes nas camadas de solos (Wang et al., 2011). O cultivar CNPA GO 2043 se destacou em relação ao acúmulo de P, mas comparando entre os dois níveis de P, observa-se que esse cultivar apresentou uma redução de 51% no P acumulado, essa redução pôde ser observada para maioria dos cultivares e genótipos. Possivelmente a redução está ligada ao estresse causado pela deficiência de P, uma vez que a deficiência de P reduz a divisão celular no ápice meristemático da parte aérea (Akhtar et al., 2009), limitando assim o crescimento quando submetidas ao nível inadequado de P no solo (Tabela 2). A diluição isotópica com 32 P também foi utilizada para avaliar 30 híbridos de milho recomendados para a região do Cerrado quanto à eficiência de absorção de P pouco disponível em um solo com baixo teor de P, sendo que através da Ae foram classificados 7 híbridos como eficientes em absorver P, por apresentarem menores Ae (Fernandes & Muraoka, 2002). A maior eficiência de absorção de P pode ser atribuída a vários fatores, como formação de raízes proteoides, observadas em plantas eficientes em absorver P (Tremoço branco), liberação de ácidos orgânicos de baixo peso molecular pelo sistema radicular, acidificação da rizosfera, que não é o caso do algodão (Wang et al., 2008), ou ainda mudanças adaptativas na rizosfera de natureza fisiológica, bioquímica e molecular (Raghothama & Karthikeyan, 2005), atividade da fosfatase ácida e mudança na arquitetura radicular (Clair & Lynch, 2010). Um cultivar ou genótipo eficiente é aquele que possui a capacidade de absorver quantidades relativamente altas de nutrientes do solo e fertilizante, ter um alto rendimento de produção por unidade de nutriente absorvido, e ter baixo armazenamento de nutrientes na palhada (Fageria et al., 2008). Como a planta não faz distinção no momento da absorção de P entre as formas isotópicas e não isotópicas presentes na solução do solo, a atividade específica do 32 P na planta deverá ser idêntico ao P disponível na solução do solo, sendo assim alguns autores caracterizam o valor L como a eficiência de absorção da planta (Larsen 1952). A avaliação da eficiência de disponibilidade de fontes de P para as plantas está sujeito à hipótese de que a absorção total de P por uma planta é idêntico à quando não se aplica P, podendo ou não haver resposta da planta a fertilização fosfatada. Em um estudo onde foram utilizados os radioisótopos 32 P e 33 P, Dorahy et al. (2008) confirmaram que mais de 95% do P presente nas plantas de algodão eram oriundos do solo e somente 5% do fertilizante aplicado. Com isso fica evidente que a absorção de P pelas plantas de algodão, em condições de campo, baseia-se principalmente na exploração das raízes com relação ao P orgânico ou relativamente fontes lábeis de P inorgânico do solo. A identificação de cultivares e genótipos de algodoeiro que apresentem maior eficiência de absorção e utilização é uma estratégia com o objetivo de diminuir a dose de P aplicada nas adubações, além de possibilitar o cultivo desses cultivares e genótipos em regiões que apresentem solos pobres em P, sem, contudo reduzir significativamente a produção esperada para a cultura do algodão (Fageria & Baeta, 2008). Em um experimento em condições de campo, Dorahy et al. (2004) observaram que a recuperação aparente do fertilizante fosfatado pela cultura do algodão variou entre 2 a 15% até o inicio da floração, e aumentou para 24 a 64% para fase de capulho. Na aquisição de P pelas plantas, as características mais relevantes para o aumento da eficiência de recuperação aparente (ERA) de P são as características morfológicas do sistema radicular, isto demonstra que variações genotípicas para a ERA pode ocorrer por mudanças na arquitetura radicular da planta (Wang et al., 2010). A eficiência de utilização do nutriente pela planta é resultado da influência mútua entre os processos de absorção, transporte, redistribuição e metabolismo (Malavolta, 2006). Várias características fisiológicas e bioquímicas estão envolvidas no aumento da eficiência de P pelas culturas, algumas dessas adaptações são: i) aumento na relação raiz/parte aérea; ii) mudanças na arquitetura e morfologia radicular; iii) aumento do número e elongação dos pelos radiculares; iv) associações com fungos micorrízicos; v) redução no efluxo de P; vi) secreção de ácidos orgânicos e prótons, e vii) secreção de fosfatase ácida (Ramaekers et al., 2010). CONCLUSÕES 1. Os cultivares e genótipos de algodão diferem quanto à capacidade de absorção e utilização de fósforo. 2. Os cultivares FMT 523, FM 910 e CNPA GO 2043 foram os que apresentaram melhores resposta a aplicação de fósforo. 3. O genótipo Barbadense 01 e os cultivares FM 966LL, IPR Jataí, BRS Aroeira e BRS Buriti foram os mais eficientes em absorver P quando cultivados em baixa disponibilidade de P. 4. O genótipo Barbadense 02 e o cultivar CNPA GO 2043 foram os mais eficientes em relação às eficiências nutricionais. REFERÊNCIAS AHMAD, Z.; GILL, M. A.; QURESHI, R. H.; R. H. U.; MAHMOOD, T. Phosphorus nutrition of cotton cultivars under deficient and adequate levels in solution culture. Communications in Soil Science and Plant Analysis. New York, v. 32, n. 1-2, p. 171187, 2001. AKHTAR, M. S.; OKI, Y.; ADACHI, T. Genetic Variations of Brassica Cultivars for P Acquisition in a P Stress Environment and Comparison of P Sources for Sustainable Crop Management. Communications in Soil Science and Plant Analysis. New York, v. 40, p. 3023-3045, 2001. BALIGAR, V. C.; FAGERIA, N. K. Plant nutrient efficiency: towards the second paradigm. In: SIQUEIRA, J. O.; MOREIRA, F. M. S.; LOPES, A. S.; GUILHERME, L. R. G.; FAQUIN, V.; FURTINI-NETO, A. E.; CARVALHO, J. G. (Ed.). Interrelação fertilidade, biologia do solo e nutrição de plantas. Viçosa, MG: SBCS, Lavras: UFLA / DCS, 1999. p.183-204. BALIGAR, V. C.; FAGERIA, N. K.; HE, Z. L. Nutrient use efficiency in plants. Communications in Soil Science and Plant Analysis. New York, v. 32, p. 921-950, 2001. CAMARGO, O. A.; MONIZ, A. C.; JORGE, J. A. & VALADARES, J. M. A. S. Métodos de análise química, mineralógica e física de solos do Instituto Agronômico de Campinas. Campinas, Instituto Agronômico de Campinas, 1986. 94p. (Boletim Técnico, 106). DORAHY, C. G.; ROCHESTER, I. J.; BLAIR, G. J. Response of field – grown cotton (Gossypium hirsutum L.) to phosphorus fertilization on alkaline soils in eastern Australia. Australian Journal of Soil Research. Victoria, v. 42, p. 913-920, 2004. EMBRAPA. Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária. Centro Nacional de Pesquisa de Solos. Manual de métodos de análises de solo. 2.ed. Rio de Janeiro, 1997. 212p. EMBRAPA. Empresa Brasileira de Pesquisa Agropecuária. Centro Nacional de Pesquisa de Solos. Sistema brasileiro de classificação de solos. Rio de Janeiro, 2006. 306p. FAGERIA, N. K.; BALIGAR, V. C.; MOREIRA, A.; PORTES, T. A. Dry bean genotypes evaluation for growth, yield components and phosphorus use efficiency. Journal of Plant Nutrition. New York, v. 33, n. 14, p. 2167-2181, 2010. FAGERIA, N. K.; MOREIRA, A. The role of mineral nutrition on root growth of crop plants. Advances in Agronomy. San Diego, v. 110, p. 251-331, 2011. FERNANDES, C. Eficiências de diferentes culturas e híbridos de milho quanto à utilização de fósforo em solos de cerrado. 2001. 61 p. Dissertação (Mestre em solos e nutrição de plantas) - Escola Superior de Agricultura "Luiz de Queiroz", Universidade de São Paulo, Piracicaba-SP, 2001. FERNANDES, C.; MURAOKA, T. Absorção de fósforo por híbridos de milho cultivados em solo de cerrado. Scientia Agricola. Piracicaba, v.59, n.4, p.781-787, 2002. FRANZINI, V. I. Eficiência do uso de fósforo por cultivares de arroz e de feijoeiro e da fixação biológica de nitrogênio por cultivares de feijoeiro. 2010.189 p. Tese (Doutorado em solos e nutrição de plantas) - Escola Superior de Agricultura "Luiz de Queiroz", Universidade de São Paulo, Piracicaba, 2010. GEORGE, T. S.; TURNER B. L.; GREGORY P. J.; CADE-MENUN B. J.; RICHARDSON A. E. Depletion of organic phosphorus from Oxisols in relation to phosphatase activities in the rhizosphere. European Journal of Soil Science. Oxford, v. 57, n. 1, p. 47-57, 2006. HOCKING, P.J.; KEERTHISINGHE, G.; SMITH, F.W.; RANDALL, P.J. Comparation of the ability of different crop species to access poorly-available soil phosphorus. In: ANDO, T.; FUGITA, K.; MAE, T.; MATSUMOTO, H.; MORI, S.; SEKIYA, J. Plant nutrition – for sustainable food production and environment. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, 1997. p.305-308. HU, Y.; YE, X.; SHI, L.; DUAN, H.; XU, F. Genotypic differences in root morphology and phosphorus uptake kinetics in brassica napus under low phosphorus supply. Journal of Plant Nutrition. New York, v. 33, p. 889-901, 2010. LARSEN, S. The use of 32P in studies of the uptake of phosphorus by plants. Plant and Soil, The Hague, v. 4, p 1-10, 1952. LYNCH, J. P.; BROWN, K. M. Topsoil foraging - an architectural adaptation of plants to low phosphorus availability. Plant and Soil. Dordrecht, v. 237, n. 2, p. 225-237, 2001. LYNCH, J. P. Roots of the second green revolution. Australian Journal of Botany. Victoria, v. 55, n. 5, p. 493-512, 2007. LOPES, A. S.; COX, F. R. Survey of fertility status of surface soils under cerrado vegetation in Brazil. Soil Science Society of America Journal. Madison, v. 41, n. 4, p. 742-747, 1977. MALAVOLTA, E. Manual de nutrição mineral de plantas. São Paulo: Ceres, 2006. 638p. MALAVOLTA, E.; VITTI, C.G.; OLIVEIRA, S.A. Avaliação do estado nutricional das plantas: princípios e aplicações. Piracicaba: Associação Brasileira para Pesquisa da Potassa e do Fosfato, 1997, 319p. MANLY, B. J. F. Métodos estatísticos multivariados: uma introdução. 3. ed. Porto Alegre: Bookman, 2008. 229p. MENDES, F. L. Eficiências de absorção de fósforo por diversas espécies de adubos verdes e aproveitamento desse nutriente pelas culturas de cana-de-açúcar e de arroz. 2010. 118 p. Tese (Doutorado em solos e nutrição de plantas) - Escola Superior de Agricultura "Luiz de Queiroz", Universidade de São Paulo, Piracicaba, 2010. OZTURK, L.; EKER, S.; TORUN, B.; CAKMAK, I. Variation in phosphorus efficiency among 73 bread and durum wheat genotypes grown in a phosphorus-deficient calcareous soil. Plant and Soil. Dordrecht, v. 269, n. 1-2, p. 69-80, 2005. RAIJ, B. van; CANTARELLA, H.; QUAGGIO, J. A.; FURLANI, A. M. C. Recomendação de adubação e calagem para o Estado de São Paulo. 2.ed. Campinas: Instituto Agronômico e Fundação IAC, 1997. 285p. (Boletim Técnico, 100). RAIJ, B. van; ANDRADE, J. C.; CANTARELLA, H.; QUAGGIO, J. A. Análise química para avaliação da fertilidade de solos tropicais. Campinas: Instituto Agronômico, 2001. 285p. RAGHOTHAMA, K. G.; KARTHIKEYAN, A. S. Phosphate acquisition. Plant and Soil. Dordrecht, v. 274, n. 1, p. 37-49, 2005. RAMAEKERS, L.; REMANS, R.; RAO, I. M.; BLAIR., M. W.; VANDERLEYDEN, J. Strategies for improving phosphorus acquisition efficiency of crop plats. Field Crops Research. Amsterdan, v. 117, n. 1, p. 169-176, 2010. RICHARDSON, A. E.; HOCKING, P. J.; SIMPSON, R.; GEORGE, T. S. Plant mechanisms to optimise access to soil phosphorus. Crop & Pasture Science. Victoria, v. 60, n. 2, p. 124-143, 2009. SANT'ANA, E. P.; SANT'ANA, E. V. P.; FAGERIA, N. K.; FREIRE, A. B. Utilização de fósforo e características do sistema radicular e da parte aérea da planta de arroz. Ciência e Agrotecnologia. Lavras, v.27, p.370-381, 2003. SAS INSTITUTE, SAS user´s guide: statistics. Versão 8.2 Cary: SAS Institute, 2001. SHANE, M.W., LAMBERS, H., CAWTHRAY, G.R., KUHN, A.J.; SCHURR, U. Impact of phosphorus mineral source (Al-P or Fe-P) and pH on cluster-root formation and carboxylate exudation in Lupinus albus L. Plant and Soil. Dordrecht, v. 304, n. 12, p. 169-178, 2008. SHINOZAKI, K.; YAMAGUCHI-SHINOZAKI, K. Gene networks involved in drought stress response and tolerance. Journal of Experimental Botany. Oxford, v. 58, n. 2, p. 221-227, 2007. VOSE, P. B. Introduction to nuclear techniques in agronomy plant biology. London: Pergamon Press, 1980. 391p. WANG, X.; TANG, C.; GUPPY, C. N.; SALE, P. W. G. Phosphorus acquisition characteristics of cotton (Gossypium hirsutum L.), wheat (Triticum aestivum L.) and white lupin (Lupinus albus L.) under P deficient conditions. Plant and Soil. Dordrecht, v. 312, n. 1-2, p. 117-128, 2008. WANG, X. R.; SHEN, J.; LIAO, H. Acquisition or utilization, which is more critical for enhancing phosphorus efficiency in modern crops?. Plant Science. Amsterdan, v. 179, n. 4, p. 302-306, 2010.