RODRIGO DA SILVA NUNES BARRETO
OCORRÊNCIA E MECANISMOS DO MICROQUIMERISMO
FETAL EM GESTAÇÕES BOVINAS
São Paulo
2011
RODRIGO DA SILVA NUNES BARRETO
OCORRÊNCIA E MECANISMOS DO MICROQUIMERISMO FETAL EM
GESTAÇÕES BOVINAS
Dissertação apresentada ao Programa de
Pós-Graduação em Anatomia dos Animais
Domésticos e Silvestres da Faculdade de
Medicina Veterinária e Zootecnia da
Universidade de São Paulo para obtenção
do título de Mestre em Ciências
Departamento:
Cirurgia
Área de Concentração:
Anatomia dos Animais Domésticos e
Silvestres
Orientador:
Prof. Dr. Flávio Vieira Meirelles
São Paulo
2011
Autorizo a reprodução parcial ou total desta obra, para fins acadêmicos, desde que citada a fonte.
DADOS INTERNACIONAIS DE CATALOGAÇÃO-NA-PUBLICAÇÃO
(Biblioteca Virginie Buff D’Ápice da Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia da
Universidade de São Paulo)
T.2462
FMVZ
Barreto, Rodrigo da Silva Nunes
Ocorrência e mecanismos do microquimerismo fetal em gestações
bovinas / Rodrigo da Silva Nunes Barreto. -- 2011.
68 f. : il.
Dissertação (Mestrado) - Universidade de São Paulo. Faculdade de
Medicina Veterinária e Zootecnia. Departamento de Cirurgia, São Paulo,
2011.
Programa de Pós-Graduação: Anatomia dos Animais Domésticos e
Silvestres.
Área de concentração: Anatomia dos Animais Domésticos e Silvestres.
Orientador: Prof. Dr. Flávio Vieira Meirelles.
1. Microquimerismo fetal. 2. Invasão trofoblástica. 3. Placentação bovina.
4. Células trofoblásticas gigantes. 5. TSPY. I. Título.
Folha de avaliação
Nome: BARRETO, Rodrigo da Silva Nunes
Título:
Dissertação apresentada ao Programa de
Pós-Graduação em Anatomia dos Animais
Domésticos e Silvestres da Faculdade de
Medicina Veterinária e Zootecnia da
Universidade de São Paulo para obtenção
do título de Mestre em Ciências
Data: ___/___/_____
Banca Examinadora
Prof. Dr.
Instituição:
____
Assinatura:
Julgamento:
____
Prof. Dr.
Instituição:
____
Assinatura:
Julgamento:
____
Prof. Dr.
Instituição:
____
Assinatura:
Julgamento:
____
DEDICATÓRIA
A Deus, pois tudo só é possível pela
vontade Dele.
Ao meu pai, José Nunes Barreto, e minha
mãe, Nilcéa da Silva Nunes Barreto.
Vocês são minha base, meu porto seguro;
sem vocês não teria concluído nem uma
ínfima parte de meus sonhos.
AGRADECIMENTOS
À Fundação de Amparo a Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP) pelo
auxílio financeiro para o desenvolvimento deste projeto de pesquisa.
Ao Prof. Dr. Flávio Vieira Meirelles, pela confiança depositada durante o
desenvolvimento do projeto e pela orientação concedida durantes esses últimos
anos, sempre me norteando nos momentos necessários.
À Profª Drª Flávia Thomaz Verechia Pereira, antes de tudo pela amizade e por
todos os ensinamentos durante esses anos. Lembre-se sempre, de que grande
parte das minhas conquistas têm a sua participação.
À Profª Drª Maria Angélica Miglino e aos Professores Doutores Carlos
Eduardo Ambrósio (Caju), Felipe Perecin, Heidge Fukumasu pelos muitos
esclarecimentos.
À Fabiana Fernandes Bressan (Martini), por ter me acolhido no LMMD, me
ensinado, pelas discussões e diversas dúvidas esclarecidas, permitindo que meu
projeto saísse do papel.
À Dra Lilian Jesus de Oliveira, pela ajuda fundamental para o desenvolvimento
dessa dissertação; por todas as madrugadas a fio no laboratório, principalmente na
fase de finalização do projeto, por todas as “broncas” mais do que merecidas e pelas
diversas injeções de ânimo.
À Dra Lígia Garcia Mesquita, pela grande ajuda na parte final do projeto, que
juntamente com o Prof. Dr. Luis Felipe Prada e Silva, permitiu a utilização do
laboratório de Genômica Funcional.
À Profª Drª Ester Silveira Ramos, e suas alunas Cristiana Libardi Miranda
Furtado, Flávia Gaona de Oliveira Gennaro e Hélida Regina Magalhães.
À Marília Mondin Thomaz Verechia pela indispensável revisão do manuscrito.
Aos meus amigos: Kelly, Juliano, Rafa, Fernanda, Annie, Anna e Celina por
toda a ajuda, incentivo e companhia durante todos esses anos de mestrado.
À enorme equipe de amigos do LMMD, Naira, Juliana, Nina, Vanessa, Aline,
Thiago, Reno, Marquinhos, Lindsay, Pedrinho, Laís, por toda companhia, apoio e
incentivo.
Aos técnicos dos LMMD, Nilton, Márcia e Sílvia, por todo o apoio.
A todos os alunos de Pós-Graduação do Programa de Anatomia dos Animais
Domésticos e Silvestres, pela convivência durante o cumprimento das disciplinas no
campus da Universidade de São Paulo.
Por fim obrigado a todos, pois tem um pouco da ajuda de cada um nas
páginas dessa dissertação.
RESUMO
BARRETO, R. S. N. Ocorrência e mecanismos do microquimerismo fetal em
gestações bovinas [Occurrence and mechanisms of fetal microchimerism in bovines
pregnancies]. 2011. 68f. Dissertação (Mestrado em Ciências) – Faculdade de
Medicina Veterinária e Zootecnia, Universidade de São Paulo, São Paulo, 2011.
O sucesso da gestação depende da adequada comunicação materno-fetal, que em
algumas espécies têm um contato mais íntimo devido à capacidade migratória de
populações de células trofoblásticas. Nos bovinos esse mecanismo é realizado pelas
células trofoblásticas gigantes (CTGs), com invasão limitada até a lâmina basal do
epitélio materno. Apesar dessa leve invasão das CTGs, é possível encontrar células
fetais
circulantes
no
sangue
periférico
da
vaca
gestante,
levando
ao
microquimerismo fetal. Além de toda uma sinalização local e sistêmica e mudanças
conformacionais, a migração das CTGs também é dependente da tolerância
imunológica do epitélio materno que possui uma baixa expressão de MHC de classe
I. Em contrapartida, o trofoblasto expressa MHC de classe Ib para impedir a ativação
das células natural killers uterinas (uNK) contra ele mesmo. Neste contexto, o
objetivo desse trabalho foi estudar a ocorrência e contribuir para o entendimento dos
mecanismos da migração celular na placenta bovina, com marcadores exclusivos do
cromossomo Y e de um modelo de clone transgênico expressando a proteína GFP.
A hipótese testada foi que o microquimerismo fetal observado mediante a detecção
do gene TSPY no sangue periférico da vaca gestante de embrião macho, e de GFP
nos tecidos placentários maternos, associado à expressão de MHC classe 1b (Qa2)
na interface materno-fetal. Para tanto, 153 embriões produzidos por fertilização in
vitro (FIV) foram transferidos, resultando em 34 embriões machos e 31 fêmeas no
dia 62 de gestação, quando foi realizada a coleta de sangue periférico da receptora.
Dentre estas gestações, foram selecionadas de 25 machos, 4 fêmeas e 5 perdas
gestacionais (confirmadas no D39 por ultrassonografia) para detecção de TSPY.
Também foram produzidas gestações de clones transgênicos, expressando GFP
com 30, 60 e 90 dias que foram utilizadas para a detecção de mRNA e a proteína
GFP. Nas gestações de FIV 60% dos embriões machos, 50% das fêmeas e 40% das
perdas gestacionais foram positivos para TSPY. A detecção de TSPY nas gestações
de fêmeas possivelmente é resultante da persistência do microquimerismo de
gestações anteriores. Nas gestações de clones transgênicos, observou-se a
presença de mRNA e proteína GFP no endométrio, também indicando migração
nesta região ou o transporte da GFP, e outros conteúdos do trofoblasto, para o
epitélio materno. Nos placentônios, usando anticorpo anti-GFP pode-se ver a
marcação positiva tanto no trofoblasto como no epitélio materno, possivelmente
decorrente de liberação das CTGs no estroma endometrial após a fusão. As CTGs,
quando em formação sincicial, têm a sua expressão de GFP diminuída, o que
também foi observado, utilizando-se anticorpo anti-Qa2 (antígeno murino para MHC
classe Ib). O epitélio materno e o trofoblástico também foram marcados para Qa2.
Mediante as técnicas utilizadas, observamos que o microquimerismo pôde ser
identificado nas gestações analisadas com o uso dos marcadores TSPY no sangue
e o GFP nos tecidos placentários maternos. Este estudo mostra que na placenta
bovina ocorre uma migração de células fetais além do epitélio materno e abre novas
perspectivas para estudos das características da interação materno-fetal ainda
pouco explorada nos bovinos.
Palavras-chave:
Microquimerismo fetal, invasão trofoblástica, placentação bovina,
células trofoblásticas gigantes, TSPY
ABSTRACT
BARRETO, R. S. N. Occurrence and mechanisms of fetal microchimerism in bovines
pregnancies [Ocorrência e mecanismos do microquimerismo fetal em gestações
bovinas]. 2011. 68f. Dissertação (Mestrado em Ciências) – Faculdade de Medicina
Veterinária e Zootecnia, Universidade de São Paulo, São Paulo, 2011.
The pregnancy success depends of adequate materno-fetal communication, that in
some species are have a more intimate contact due migratory capacity of
trophoblastic cells populations. In bovines, this mechanism is realized by trophoblast
giant cells (TGC) with limited invasion until basal lamina of maternal epithelium.
Besides this light invasion of TGCs, is possible to encounter circulate fetal cells in
peripheral blood of pregnant cow, leading to fetal microchimerism. Beyond local and
systemic sinalization and conformational changes, TGC migration is also dependent
of immunologic tolerance of maternal epithelium that possess a downregulation of
classe I MHC. In complement, the trophoblast express classe Ib MHC to inhibit
natural killers cells activation. In this context, the objective of this work was to study
the occurrence and contribute for knowledge cellular migration mechanisms in bovine
palcenta, with Y-specific markers and a model of transgenic clone expressing GFP.
The tested hypothesis was that fetal microchimerism observed by detection od TSPY
gene in peripheral blood of cow pregnant of male embryo, and of GFP in maternal
placental tissues associated by expression of class Ib MHC (Qa2) in materno-fetal
interface. For this, 153 embryos produced by in vitro fertilization (IVF) were
trasnfered, resulting in 34 male embryos and 31 female in day 62 of pregnancy, when
recipient peripheral blood was collected. Among these pregnancies, 25 males, 4
females and 5 pregnancy losses (confirmed at 39 days of pregnancy by
ultrassonography) was selected for TSPY detection. Also were produced
pregnancies of transgenic cloned, embryos expressing GFP, with 30, 60 and 90 days
of pregnancy that utilized for GFP mRNA and protein detection. In IVF pregnancies,
60% of male embryos, 50% of females and 40% of pregnancy losses were positive
for TSPY. The detection of TSPY in female pregnancies possible is resultant of
persistence of microchimerism of anterior pregnancies. In transgenic cloned
pregnancies, was observed presence of GFP mRNA and protein in endometrium,
also indicating migration in this region or GFP transport, and another trophoblast
content, to maternal epithelium. In placentomes, using anti-GFP antibody, could be
observed positive immunolabeling in trophoblast and maternal epithelium, possible
due CTGs liberation in endometrial stroma after fusion. The CTGs, in syncytium
formation, have a downregulation of GFP, that also be observed, utilizing anti-Qa2
antibody (murine antigen of classe Ib MHC). The maternal and trophoblastic
epithelium also was Qa2 immunolabed. By utilized techniques, microchimerism could
be indentified in analyzed pregnancies with use of markers for TSPY in maternal
blood and GFP in maternal placental tissues. This study show that in bovine placenta
occurs fetal cell migration further maternal epithelium and show new perspectives for
studies of materno-fetal interaction characteristics until under explored in bovines.
Key words:
fetal microchimerism, trophoblast invasion, bovine placentation,
trophoblast giant cells, TSPY.
LISTA DE FIGURAS
Figura 1- Árvore filogenética dos mamíferos eutérios. Os eutérios são a união
ramos Laurasiatheria (verde), Euarchontoglires (amarelo), Xenarthra e
Afrotheria, os marsupiais são um grupo externo. Inscrições em azul são
eutérios com placentação histiotrófica e em preto hemotrófica. Modelo
filogenético adaptado de Vogel (2005). .................................................... 24
Figura 2 - Fotografias “ex situ” em vista dorsal de útero bovino gestante, aos 60
dias, de concepto clonado e transgênico expressando GFP. A e C
fluorescência natural sob luz ultravioleta. B e D mesmo campo de A e C,
porém sob luz natural. .............................................................................. 37
Figura 3 - Expressão relativa do mRNA do gene GFP no cório, placentônio e
endométrio dos úteros gestantes utilizando a diferença entre os Cts (dCt)
do gene GFP e o endógeno GAPDH........................................................ 46
Figura 4 - Western blotting para GFP (32kDa) em tecidos placentários de gestações
transgênicas e clonadas. PPM – padrão de peso molecular; 1- placentônio
30dias; 2- endométrio 90 dias; 3- endométrio D30; 4- endométrio D60; 5placentônio D60........................................................................................ 47
Figura 5 –
Imunohistoquímica para proteína verde fluorescente (GFP) em
placentônio de gestação de concepto bovino transgênico e clonado aos
90 dias. Observar a intensa marcação no trofoblasto (T), e epitélio
materno (Em), mais tênue no mesênquina (M)e negatica no estroma
endometrial (E). Barra = 200µm. .............................................................. 50
Figura 6 - Imunohistoquímica para proteína verde fluorescente (GFP) em
placentônio de gestação de concepto bovino transgênico e clonado. As
setas indicam as células trofoblásticas gigantes fundidas ou em processo
de fusão com as células do epitélio materno (Em). Alguns sincícios são
formados próximos a vasos maternos (Mv), como em d, porém sempre
ocorre remodelamento do epitélio materno. A marcação é positiva para
GFP nos tecidos fetais, sendo mais forte no trofoblasto (T) e mais tênue
no mesênquima (M), mas também pode ser observada no epitélio
materno e marcação negativa no estroma endometrial (E). Observar
marcação positiva mais fraca na gestação de 60 dias (a). Em a e f, 60
dias de gestação. Em b-e, 90 dias de gestação. Em f, controle negativo.
Barra = 20µm............................................................................................ 51
Figura 7 - Imunohistoquímica para proteína verde fluorescente (GFP) em
placentônio de gestação de concepto bovino transgênico e clonado com
90 dias. As células trofoblásticas gigantes (setas) se aproximam e forçam
um remodelamento do epitélio materno (Em), tornando-o pavimentoso ao
invés de colunar (a-c). Observar em a-d a marcação tanto citoplasmática
como no interstício do epitélio materno. Também em f, presença de
células trofoblásticas gigantes (círculo) aparentemente mononucleares,
apresentando o volume citoplasmático maior e o nuclear menor que as
outras células trofoblásticas gigantes. Em a-d,e imunohistoquímica para
proteína verde fluorescente. Trofoblasto (T), estroma endometrial (E),
mesênquima (M) e vaso materno (Vm). Barra = 10µm. ........................... 52
Figura 8 - Fotomicrografia da reação de imunohistoquímica para GFP (a) e Qa2 (b)
em placentônio de gestação de concepto bovino transgênico e clonado
aos 90 dias. Observar o epitélio materno (Em), porém ao centro ocorre a
degradação do epitélio materno (Em) e várias células trofoblásticas
gigantes em profundidades diferentes de invasão no trofoblasto (T). As
células trofoblásticas gigantes em contato direto com o epitélio materno
apresentam marcação negativa tanto para GFP como para Qa2. Barra =
20µm. ....................................................................................................... 53
Figura 9 - Fotomicrografia da reação de imunohistoquímica para Qa2 em
placentônio (a-d) e em cório (e,f) de gestação de concepto bovino
transgênico e clonado. As setas indicam as células trofoblásticas gigantes
fundidas ou em processo de fusão, notar a ausência de marcação para
Qa2 nessas células (a-d). Observar marcação positiva para o epitélio
materno (Em) e o trofoblasto (T) nos placentônios e negativa no
trofoblasto e mesênqüima do cório. Em a-c, 90 dias de gestação; em d-f,
60 dias de gestação. Em e, controle negativo. Barra = 20µm. ................. 54
Figura 10 –
Modelo hipotético da ocorrência de microquimerismo na placentação
bovina. Em a, após fusão a célula trofoblástica gigante com o epitélio
materno, ou a célula híbrida entra no vaso sanguíneo materno ou é
fagocitada por um macrófago (localizado próximo ao epitélio materno) que
entra em recirculação. Em b, a célula trofoblástica gigante degranula seu
conteúdo celular antes da fusão celular. Em c, a célula trofoblástica
gigante transporta parte de seu conteúdo citoplasmática por meio de
exossomos. .............................................................................................. 58
LISTA DE TABELAS E QUADROS
Tabela 1 Número de embriões sexados por ultrassonografia transrretal (US) e
positivos (pos) ou negativos (neg) por expressão de TSPY no sangue periférico da
receptora.
44
Quadro 1 Relação dos pares de primers, sequencia, temperatura para
anelamento e tamanho do fragmento amplificado..................................................... 40
LISTA DE ABREVIATURAS E SIGLAS
bPAG
Glicoproteínas associadas a gestação
bPL
Lactogênio placentário
bPRP1
Proteína relacionada à prolactina 1
cDNA
Ácido desoxirribonucléico complementar
cffDNA
DNA fetal livre de célula, do inglês “cell-free fetal DNA”
CTB
Células trofoblásticas gigantes
DNA -
Ácido desoxirribonucléico
FIV
Fertilização in vitro
GAPDH
Gliceraldeído 3-fosfato desidrogenase
GFP
Proteína verde fluorescente, do inglês “Green Fluorescente Protein”
HLAC
Antígeno leucocitário humano C
HLAE
Antígeno leucocitário humano E
HLAG
Antígeno leucocitário humano G
MHC NC
Molécula não clássica do complexo de histocompatibilidade comum
MHC
Complexo
de
Histocompatibilidade
histocompatibility complex”
mRNA
Ácido ribonucléico mensageiro
NK
Células natural killers
NK
Células natural killers uterinas
P4
Progesterona
PBS
Tampão sódio fosfato
PCR
Reação de polimerase em cadeia
Comum,
do
inglês
“Major
PED
Antígeno de desenvolvimento embrionário de pré-imlantação, do inglês
“Pre-implantation embryo development”
Qa2
Antígeno linfocitário Qa de região 2
SRY
do inglês “sex-determining region”
TBS
Tampão Tris-HCl
TSPY
do inglês “Testis-specific protein, Y-encoded
SUMÁRIO
1 INTRODUÇÃO ....................................................................................................... 19
2. REVISÃO DE LITERATURA ................................................................................ 23
2.1 Evolução Filogenética dos Mamíferos Eutérios .......................................... 23
2.2 Anatomia e Histologia da Placenta ............................................................. 25
2.3 Microquimerismo Fetal ................................................................................ 29
2.4 Imunologia Uterina ...................................................................................... 32
3. MATERIAIS E MÉTODOS .................................................................................... 36
3.1 Obtenção das gestações ............................................................................ 36
3.2 Técnica de Imunohistoquímica ................................................................... 37
3.3 Extração de DNA/RNA ................................................................................ 38
3.4 Reação de Polimerase em Cadeia (PCR) .................................................. 39
3.4.1 Transcrição reversa ...................................................................... 39
3.4.2 PCR quantitativo em Tempo Real ................................................ 39
3.4.2 Western Blotting ............................................................................ 41
4. RESULTADOS E DISCUSSÃO ............................................................................ 43
4.1 Detecção de TSPY no sangue materno ...................................................... 43
4.2. Mapeamento da interação materno-fetal pela GFP ................................... 45
4.2.1. Expressão de GFP nos tecidos materno e fetais............................ 45
5. CONCLUSÕES ..................................................................................................... 56
6. MODELO HIPOTÉTICO ........................................................................................ 58
REFERÊNCIAS......................................................................................................... 59
INTRODUÇÃO
19
1 INTRODUÇÃO
A comunicação adequada entre mãe e feto é crucial para o sucesso da
gestação e ocorre por meio da placenta na maioria dos mamíferos. A placenta é um
órgão transitório que secreta uma grande quantidade de moléculas importantes para
a manutenção da gestação, tais como, estrógeno, progesterona e lactogênio
placentário (MOSSMAN, 1987; BANKS, 1992; LEISER; KAUFMANN, 1994; KUMAR
et al., 2007).
Muito do que sabe sobre os mecanismos envolvidos na comunicação entre
mãe e feto são amplamente estudados em humanos e camundongos. Nestas
espécies, a placenta é caracterizada pela alta capacidade de invasão das células
trofoblásticas em direção ao tecido materno, nas quais os trofoblastos estão
banhados em sangue materno, caracterizando a placenta como hemotrófica
(LEISER; KAUFMANN, 1994).
Em
bovinos,
a
placentação
é
classificada
como
sinepiteliocorial
e
caracterizada por possuir uma população de trofoblasto com propriedade migratória
(WOODING, F. B. P. et al., 1996). Na placenta bovina, células trofoblásticas migram
em direção ao tecido materno, fundindo-se com células do epitélio uterino e
degranulando no estroma endometrial (WOODING, F.B., 1992). No entanto, não
está bem elucidado se a migração de células fetais se limita ao epitélio materno ou
não. A possibilidade de migração celular além do limite do epitélio caruncular e da
membrana basal foi levantada após evidências da presença de DNA que codifica
genes exclusivamente fetais circulantes no sangue materno.
Hiendleder et al.
(2003), mostraram que após aos 80 dias de gestação em bovinos é possível
encontrar DNA mitocondrial fetal circulante na mãe. Em outro estudo, em uma
gestação de embriões machos expressando o transgene caseína β/κ, foram
encontrados tanto DNA da construção (transgene) quanto dos genes SRY (do inglês
“sex-determining region Y”), circulante no sangue de vacas gestantes de embriões
machos sugerindo um possível microquimerismo materno-fetal como descrito em
espécies com placentas mais invasivas (XI et al., 2006; TURIN et al., 2007b; TURIN
et al., 2007a; WANG et al., 2010)
Uma característica das células trofoblásticas é a baixa expressão de
proteínas do complexo de histocompatibilidade maior (MHC, do inglês “Major
histocompatibility complex”) o que as tornam mais susceptíveis à ação das células
20
natural killers (NK). No entanto, a expressão de uma forma menos polimórfica do
MHC de classe I, denominado como MHC de classe Ib ou não-clássico (NC) foi
descrita em algumas espécies (HUNT et al., 1985; GOGOLIN-EWENS et al., 1989;
DONALDSON et al., 1990; KYDD et al., 1991). Em humanos essa molécula é
conhecida como Antígeno Leucocitário Humano G (HLAG, do inglês “Human
leukocyte antigen”) e em murinos como Antígeno de Desenvolvimento Embrionário
de Pré-Implantação (PED, do inglês “Pre-implantation embryo development”). Em
bovinos, genes NC foram descritos (DAVIES et al., 2006) e estes possuem baixos
níveis de expressão nos tecidos estudados, e na placenta têm sua expressão e
função não conhecidas.
A avaliação da capacidade migratória do trofoblasto pode ser estudada com a
utilização de animais transgênicos, nos quais a expressão de um gene exógeno
consegue marcar células de origem fetais que pode ser detectado em vários tecidos
maternos (BRESSAN et al., 2011).
Um exemplo é o cruzamento de fêmeas murinas, tipo selvagem (não
transgênicas) com machos transgênicos expressando a proteína verde fluorescente
(GFP, do inglês “Green fluorescent protein”) para visualização de microquimerismo
fetal e materno. Ainda esse modelo foi eficiente para avaliar o trânsito bidirecional de
células fetais e maternas durante a gestação (VERNOCHET; CAUCHETEUX;
KANELLOPOULOS-LANGEVIN, 2007).
Neste contexto, o objetivo desse trabalho foi estudar os mecanismos de
migração celular na placenta bovina utilizando marcadores exclusivos do
cromossomo Y e do modelo de clone transgênico, expressando a proteína GFP. Os
objetivos específicos desse trabalho, bem como sua hipótese estão descritos abaixo:
1. Detectar o gene TSPY no sangue periférico materno aos 60 dias de
gestação em bovinos.
Existem células fetais circulantes no sangue periférico materno aos 60
dias de gestação, indicando que o microquimerismo fetal já está instalado
nesta fase crítica ao desenvolvimento fetal.
2. Identificar a proteína e mRNA do gene exógeno GFP nos tecidos
placentários aos 60 e 90 dias.
Proteínas de origem fetal estão presentes nos tecidos maternos
mostrando a interação materno-fetal placentomal e interplacentomal
21
íntima,
semelhante
a
encontrada
em espécies
com placentação
consideradas invasivas.
3. Detectar a expressão de MHC classe 1b nos epitélio materno e
trofoblástico, de placentônios de gestações transgênicas entre os dias 60
e 90 de gestação.
As células trofoblásticas gigantes têm uma maior expressão de MHC
classe 1b do que as demais células trofoblásticas.
REVISÃO DE LITERATURA
23
2. REVISÃO DE LITERATURA
Este capítulo tem como finalidade revisar a literatura recente sobre o
microquimerismo fetal em bovinos, elucidando a anatomia e histologia uterina
básica, o mecanismo migratório e os aspectos imunológicos relacionados à
placentação bovina.
2.1 EVOLUÇÃO FILOGENÉTICA DOS MAMÍFEROS EUTÉRIOS
Os animais eutérios tiveram origem em um ancestral comum que apresentava
uma placenta com potencial múltiplo, hemotrófica e histiotrófica (VOGEL, P., 2005).
Deste ancestral ocorreu a evolução de quatro ramos, Afrotheria, Xenarthra,
Euarchontoglires e Laurasiatheria (VOGEL, P., 2005). Na figura 1, os dois ramos
inferiores (Afrotheria e Xenarthra) da evolução dos eutérios são compostos apenas
por mamíferos com placentação hemotrófica (na qual a mãe tem pouco ou não tem
controle do aporte sanguíneo fetal), enquanto nos dois ramos superiores
(Euarchontoglires e Laurasiatheria) existem representantes tanto da placentação
hemotrófica e como da histiotrófica (na qual os vasos maternos permanecem
intactos e a mãe pode controlar o aporte sanguíneo direcionado ao feto) (VOGEL,
P., 2005). O aparecimento de uma placenta epitéliocorial provavelmente ocorreu em
resposta à pressão de evolução para o desenvolvimento de uma placenta menos
invasiva e com transporte de substâncias entre mãe e feto de forma mais eficiente
(LEISER et al., 1997), na qual há um aumento do controle materno do suprimento
sanguíneo para o concepto (MESS; CARTER, 2007). Ainda a placenta epitéliocorial
seria uma melhor barreira imunológica diminuindo a sensibilização do sistema imune
materno a antígenos fetais (MOFFETT; LOKE, 2006).
Os mecanismos genômicos que induziram a diversificação nos eutérios ainda
são desconhecidos, porém os genes que regulam o desenvolvimento são bastante
conservados filogeneticamente entre os tipos placentários (KNOX; BAKER, 2008).
Em camundongos, durante a gestação inicial, a decídua e o disco placentário
expressam principalmente genes de origem ancestral dos eucariotos. Na gestação
24
mais tardia, a expressão gênica é mais específica de roedores. Na placenta humana,
em semelhança, durante a gestação inicial há a expressão de genes ancestrais e
mais tardiamente genes específicos de primatas (KNOX; BAKER, 2008).
Uma avaliação global, resultante dos projetos genoma, indicou que o genoma
bovino é 21% mais semelhante ao humano quando comparado ao murino (THE
BOVINE GENOME SEQUENCING AND ANALYSIS CONSORTIUM et al., 2009). Em
adição, uma análise comparando os genes preferencialmente expressos na
placenta, apesar da diferença na classificação placentária, humanos e bovinos
apresentam 23 genes expressos comumente contra 16 entre camundongos e
humanos (BARRETO et al., 2011). Dos 23 genes comuns entre humanos e bovinos,
22 tem ontologias associadas à atividade hormonal (BARRETO et al., 2011).
Figura 1-
Árvore filogenética dos mamíferos eutérios. Os eutérios são a união ramos
Laurasiatheria (verde), Euarchontoglires (amarelo), Xenarthra e Afrotheria, os marsupiais
são um grupo externo. Inscrições em azul são eutérios com placentação histiotrófica e
em preto hemotrófica. Modelo filogenético adaptado de Vogel (2005).
25
A análise de grupos de genes de expressão placenta-específica mostrou que
a distância relativa entre bovinos e murinos em relação aos humanos é similar,
apesar de todas as diferenças morfológicas dos tipos placentários encontrados entre
as espécies (BARRETO et al., 2011). Esta análise indica que, durante a evolução, a
morfologia placentária se adaptou para uma melhor comunicação entre mãe e feto,
sem alterar a expressão de genes cruciais ao sucesso da prenhez.
2.2 ANATOMIA E HISTOLOGIA DA PLACENTA
Nos mamíferos a diversidade morfológica da placenta é maior do que em
qualquer outro órgão (MOSSMAN, 1987).
2.2.1 Placentação bovina
Quanto a sua anatomia macroscópica, a placenta bovina é caracterizada
como cotiledonária, devido à presença de unidades funcionais chamadas
placentônios, onde os tecidos maternos e fetais estão intimamente conectados
(MOSSMAN, 1987; LEISER; KAUFMANN, 1994).
Nas regiões placentomais, a
interdigitação materno-fetal é vilosa, típica de ruminantes, as quais mergulham em
criptas correspondentes formadas nas carúnculas (MOSSMAN, 1987; LEISER;
KAUFMANN, 1994).
Nas regiões interplacentomais, a conexão materno-fetal é menos íntima, uma
vez que o cório liso fica apenas em aposição ao epitélio uterino (LEISER;
KAUFMANN, 1994). Por possuir uma maior conexão entre os tecidos, o placentônio
é o local predominante de trocas de nutrientes e gases entre mãe e feto (MIGLINO;
DIDIO, 1992). A placenta bovina inicialmente apresenta uma vascularização
concorrente até o final do processo de placentação, passando para contracorrente
ao longo da gestação (MIGLINO; DIDIO, 1992). A vascularização contracorrente é
mais eficiente para as trocas difusionais que ocorrem na interface materno-fetal
(KAUFMMAN e BURTON, 1994), visto que ocorre em animais cuja área contato é
26
pequena em relação ao feto (LEISER; KAUFMANN, 1994). Esse tipo de
vascularização pode explicar a troca eficiente de substâncias entre a mãe e o feto
mesmo em regiões da placenta com conexão menos íntima, como na
interplacentomal (MARQUES et al., 2007).
A placenta bovina pode ser classificada como sinepiteliocorial em virtude da
presença de células com perfil migratório que ultrapassa a barreira epitelial, forma
sincício com as células do epitélio uterino e, desta forma, aumenta o contato entre os
tecidos maternos e fetais (MOSSMAN, 1987; LEISER; KAUFMANN, 1994).
A ampla aplicação de biotécnicas da reprodução na produção animal,
especialmente a clonagem, demonstrou que a placentação é um dos processos mais
comprometidos em conseqüência ao uso destas biotécnicas (MIGLINO et al., 2007).
Por exemplo, durante a placentação de embriões bovinos clonados ocorrem
marcantes alterações anatômicas que provavelmente contribuem para suas baixas
taxas de nascimentos (em torno de 5%) (MIGLINO et al., 2007; MEIRELLES et al.,
2010). A maioria das perdas gestacionais de conceptos bovinos clonados ocorre
entre 30 e 60 dias de gestação (WELLS, 2005). Frequentemente, estas perdas
estão associadas a deficiências placentárias. Exatamente nesse período (de 40-60
dias de gestação), ocorre a transição da nutrição fetal vitelínica para placentária,
sendo crucial para a sobrevivência do feto em desenvolvimento (ASSIS NETO et al.,
2009). Ainda, em animais gestando embriões clonados, tanto no decorrer (HILL et
al., 2000) como no final da gestação (HEYMAN et al., 2002), a placenta apresenta
uma diminuição da vascularização, áreas hemorrágicas, hipoplasia placentária
(MIGLINO et al., 2007), alterações no número, tamanho e formato dos placentônios,
presença de hidroalantóide, e de malformações do cordão umbilical que são via de
regra associados ao bezerro macrossômico (“Large offspring syndrome”) (YOUNG;
SINCLAIR; WILMUT, 1998; DE SOUSA et al., 2001).
2.2.2 Placentação sinepiteliocorial
A placenta epiteliocorial é caracterizada pela presença de todas as seis
camadas de tecidos entre o sangue materno e o fetal, sendo elas: endotélio
materno, estroma endometrial, epitélio materno, trofoblasto, mesênquima e endotélio
27
fetal (LEISER; KAUFMANN, 1994; DANTZER, 1999). Diferentemente deste padrão,
na placenta hemocorial encontrada em humanos, o trofoblasto é banhado pelo
sangue materno em conseqüência da invasão de células trofoblásticas que
ultrapassam a camada endotelial materna (LEISER; KAUFMANN, 1994).
Algumas adaptações encontradas em espécies com placenta epiteliocorial
podem ser desenvolvidas no sentido de melhorar a comunicação entre mãe e feto.
Por exemplo, a presença de pequenas áreas fagocitárias nos suínos e ruminantes e
as células de origem fetal que invadem o epitélio uterino em éguas e ruminantes
(CARTER; ENDERS, 2004; CARVALHO et al., 2006; CAZERTA et al., 2007;
MIGLINO et al., 2007; PEREIRA et al., 2009).
Ainda, na placenta sinepiteliocorial é caracterizada a presença de migração
de
células
trofoblásticas
gigantes
mono
ou
binucleadas
em
direção
ao
compartimento materno (WOODING, F. B. P. et al., 1996; DANTZER, 1999; 2002;
CARTER; ENDERS, 2004; CARVALHO et al., 2006). Uma vez no compartimento
materno, essas células se fundem com células do epitélio uterino formando um
sincício (WOODING, F.B., 1992). A função e as conseqüências dessa migração
ainda não são bem esclarecidas, porém sabe-se que essas células migratórias têm
síntese específica de algumas moléculas cruciais ao sucesso da gestação
(WOODING, F. B. P. et al., 1996; DANTZER, 1999; 2002; CARTER; ENDERS, 2004;
CARVALHO et al., 2006).
2.2.3 Células trofoblásticas binucleadas e migração celular em bovinos
A presença de células trofoblásticas gigantes (CTG) é observada em estágios
desde o dia 16 de gestação e persiste até o final (WOODING, F. B. P. et al., 1996).
Essas células compõem 20% do epitélio coriônico fetal e originam-se a partir de
células do trofoblasto mononuclear por mitose acitoquinética (WOODING, F. B. P. et
al., 1996; LANG et al., 2004). A migração das células trofoblásticas binucleadas
inicia-se durante a janela de implantação, ou seja, por volta dos 19-20 dias e
persiste por todo o desenvolvimento até o termo (MACINTYRE et al., 2002).
As CTBs têm como principal função a síntese de esteróides, tais como,
progesterona (P4) (VANSELOW; FURBASS; TIEMANN, 2008) e prostanóides e de
28
proteínas, como lactogênio placentário (bPL) (WOODING, F. B.; BECKERS, 1987),
proteína relaciona à prolactina 1 (bPRP1) e glicoproteínas associadas à gestação
(bPAG) (ZOLI et al., 1992), fatores cruciais para a manutenção da gestação
(WOODING, F. B. P.; FLINT, 1994; WOODING, F. B. P. et al., 1996).
Durante a migração, as CTB, assim como de todas as células epiteliais,
seguem uma trajetória predeterminada limitada por alguns componentes da matriz
extracelular (ALBERTS et al., 2008). Esse tipo de migração celular é mais complexo
que a das células do tecido conjuntivo, uma vez que para adquirir motilidade devem
previamente ficar independentes do epitélio original. A interação célula-célula nos
epitélios é muito forte visto que estão conectadas à lâmina basal através de
hemidesmossomas (ALBERTS et al., 2008), estrutura caracterizada pela interação
dos filamentos intermediários de queratina ligadas às integrinas - domínio citosólico e as fibrilas de colágeno do tipo IV, existentes na lâmina basal, por meio de laminina
- domínio extracitosólico (ROBERTS; HIB, 1998; ALBERTS et al., 2008). Porém, à
medida que as células se programam e migram, as integrinas são primeiramente
agrupadas na membrana plasmática e então organizadas em adesão focal que
ancora o citoesqueleto de actina na matriz extracelular para regular o formato celular
e migração (ARMANT, 2005). As integrinas normalmente se ligam com baixa
afinidade para que as células não se tornem irreversivelmente unidas à matriz
extracelular e sejam capazes de se mover (ZEILER et al., 2007; ALBERTS et al.,
2008). A ativação da integrina β1 leva à formação de adesões focais no epitélio
caruncular na interface materno-fetal (BRIDGER et al., 2008).
Deste modo, as células trofoblásticas gigantes migram pelas junções
aderentes, que diferentemente do hemidesmossas são conexões célula-célula
através dos filamentos de actina e não dos filamentos intermediários, formando um
anel contráctil na célula e é considerada uma conexão mais instável (ALBERTS et
al., 2008).
Após a migração as células trofoblásticas gigantes se fundem apicalmente
com as células unicelulares do epitélio materno via formação de pseudópodes
formando
um
epitélio
híbrido
materno-fetal
trinucleado,
chamado
sincício
(MACINTYRE et al., 2002). Após a formação do sincício, as células híbridas entram
em um processo de degeneração, reabsorção, ou degranulação do conteúdo
citoplasmático no compartimento materno (NAKANO et al., 2001; MACINTYRE et al.,
2002; PFARRER; HIRSCH; LEISER, 2003; LANG et al., 2004). Esta migração pode
29
ser interpretada como uma invasão trofoblástica “restrita” ao epitélio uterino, não
ultrapassando os limites da membrana basal.
2.3 MICROQUIMERISMO FETAL
A migração de células fetais para o organismo materno, ou seja, o
microquimerismo fetal é um conceito bastante antigo, sendo originalmente descrito
em um estudo publicado no ano de 1893, no qual descrevia a presença de células
trofoblásticas no pulmão de uma gestante após sua morte por eclampsia (BIANCHI;
LO, 2001).
Mais tarde, a presença de células fetais circulantes foi descrita em
mulheres grávidas de fetos masculinos que apresentavam linfócitos, com cariótipo
46, XY, em seu sangue periférico (WALKNOWSKA; CONTE; GRUMBACH, 1969),
confirmando assim a hipótese da ocorrência natural de microquimerismo fetal.
Desde o trabalho de Walknowska et al (1969) muitos outros relataram a
presença de várias populações de células fetais circulantes (eritrócitos nucleados,
células trofoblásticas, leucócitos e células tronco) no sangue periférico de mulheres
gestantes e a persistência destas em alguns órgãos após o parto (LO, 1994;
BIANCHI et al., 1996; BIANCHI et al., 1997; BIANCHI; LO, 2001; FLORI et al., 2004;
GADI; NELSON, 2007; DUBERNARD et al., 2008).
No entanto, a quantidade de células encontradas no sangue periférico é
bastante limitada, podendo variar de 3 a 74 células em um volume de 15 a 40 ml de
sangue, conferindo uma relação de uma célula fetal nucleada para cada 105 – 106
células maternas (BIANCHI et al., 1997).
Apesar do número de células fetais no sangue periférico da mãe ser restrito,
existe uma correlação positiva entre o aumento do número destas células e
gestação aneuplóidica (LO et al., 1994; BIANCHI et al., 1997). Por exemplo, em uma
gestação com aneuploidia para o cromossomo 21, onde 74% das células circulantes
no sangue periférico da mãe eram de origem fetal (LO, 1994), ou mesmo um
aumento de quase nove vezes em relação às gestações normais (BIANCHI et al.,
1997).
Alterações similares da relação entre células fetais e maternas circulantes na
mãe também foram relatadas em gestações com pré-eclampsia, nas quais se pode
30
encontrar um número maior de células trofoblásticas em esfregaços de sangue
venoso uterino (CHUA et al., 1991). O aumento do número de células fetais também
está correlacionado com gestações onde o feto tem restrição de crescimento ou com
presença de poli-hidroâmnio (BIANCHI; LO, 2001), ocorrência muito comum em
gestações de bovinos clonados (MIGLINO et al., 2007).
A persistência dessas células fetais no organismo da mãe pode durar
décadas após a gestação (BIANCHI et al., 1996). Especula-se também a relação
entre o microquimerismo fetal e a prevalência de doenças auto-imune em mulheres
(BIANCHI; LO, 2001). Células fetais são recrutadas para o estroma do tumor de
glândulas mamárias (DUBERNARD et al., 2008) e estão presente nos carcinomas
mamários em mulheres (GADI; NELSON, 2007).
2.3.1 DNA fetal livre de célula
A pequena quantidade de células fetais no sangue materno promoveu a
busca de outra fonte não invasiva de material genético fetal, o DNA fetal livre de
células (cffDNA, do inglês “cell free fetal DNA”) (BIANCHI; LO, 2001). O cffDNA foi
inicialmente detectado no plasma materno utilizando um gene específico do
cromossomo Y (SRY, do inglês “sex-determining region Y”) (LO et al., 1997).
A concentração relativa de cffDNA no plasma materno é relativamente 2 a 3
vezes maior que as células fetais da fração celular no sangue materno (LO et al.,
1998). Todavia, o cffDNA é rapidamente eliminado após o parto, possivelmente
sendo eliminado na filtração renal, uma vez que cffDNA pode ser detectado na urina
(BOTEZATU et al., 2000).
Em humanos, há evidências que suportam a hipótese de que o cffDNA
presente no plasma sanguíneo da mãe é vestígio de células fetais circulantes que
sofreram apoptose na circulação materna (BIANCHI; LO, 2001). Em gestações com
aneuploidia, a taxa de células fetais circulantes em processo apoptótico é duas
vezes maior que em gestações normais e, consequentemente levando a uma maior
quantidade de cffDNA (BIANCHI; LO, 2001).
31
2.3.2. Microquimerismo em bovinos
Apesar da invasão trofoblástica em bovinos ser considerada restrita ao
epitélio uterino, e a possibilidade do microquimerismo fetal em bovinos ter sido
descartada por Kadokawa et al (1996), ele foi originalmente descrito por Xi et al
(2006) e posteriormente confirmado pelo mesmo grupo, usando um número maior de
animais (WANG et al., 2010). Xi et al (2006) e Wang et al (2010) utilizaram o gene
SRY como marcador de cffDNA presente no plasma sanguíneo da vaca em vários
estágios da gestação.
Turin et al (2007b; 2007a) foram os primeiros a descrever a presença de
células fetais circulantes durante e após a gestação de conceptos transgênicos e de
monta natural utilizando como marcador outro gene específico do cromossomo Y, o
Y-S4 (proteína ribossomal ligada ao Y).
Recentemente outro gene específico do cromossomo Y também vem sendo
usado como ferramenta para a sexagem de embriões bovinos (LEMOS et al., 2005).
Esse gene conhecido como TSPY (do inglês “testis-specific protein, Y-encoded”)
possui várias cópias no cromossomo Y, podendo variar 20 a 40 em humanos e de
50 a 200 nos bovinos (JAKUBICZKA; SCHNIEDERS; SCHMIDTKE, 1993;
VERKAAR et al., 2004; HAMILTON et al., 2009). O gene BRY é presumido como
tendo a mesma origem que o TSPY, pois ambos contêm seqüências homólogas,
porém provavelmente pertence a uma subfamília afuncional e apresenta cerca de
1200 cópias nos machos e 100 nas fêmeas (VOGEL, T. et al., 1997b; VOGEL, T. et
al., 1997a; VOGEL, T.; SCHMIDTKE, 1998).
Apesar do grande número de cópias do gene TSPY facilitar a detecção de
pequenas quantidades de material fetal no sangue materno, ele não seria um gene
de eleição para extrapolar a correlação entre quantidade de DNA fetal circulante e
anormalidades fetais ou placentárias em bovinos devido sua variação em número de
cópias mesmo dentre indivíduos de uma mesma raça (HAMILTON et al., 2009).
Em
bovinos,
os
principais
interesses
na
investigação
atual
do
microquimerismo são a sexagem da gestação ou a identificação de material
transgênico em uma receptora de gestação de concepto transgênico. Porém um
novo foco pode ser utilizado para associar a identificação de células fetais
circulantes no sangue periférico da mãe com o sucesso da gestação, assim como
32
em humanos está associado a pesquisas com aneuploidias e pré-eclampsia (LO et
al., 1994; BIANCHI et al., 1997).
2.4 IMUNOLOGIA UTERINA
Pouco se sabe sobre a imunologia uterina em bovinos. Um sistema imune
funcional é necessário, pois o útero é exposto constantemente a microorganismos.
Uma vez que, no lúmen do útero bovino foram encontradas bactérias imediatamente
após o parto em quase todas as vacas (FOLDI et al., 2006).
O útero da vaca é um local imunocompetente que pode gerar uma resposta
imune à infecções recrutando leucócitos e produzindo citocinas (ROSBOTTOM et
al., 2008).
Em ovelhas, com placentação muito semelhante, aloenxertos
expressando MHC clássico foram prontamente rejeitados quando inseridos em
úteros (HANSEN et al., 1989).
Durante o ciclo estral, na vaca, células positivas para o MHC de classe II são
amplamente distribuídas no estroma endometrial (COBB; WATSON, 1995),
apresentando um acúmulo maior, principalmente linfócitos e macrófagos, próximo ao
epitélio luminal do que no estroma glandular. Os macrófagos são limitados ao
estroma endometrial, sendo ausentes no epitélio luminal ou glandular, sendo que o
acúmulo dos macrófagos próximo as glândulas uterinas é raro (COBB; WATSON,
1995). Do meio até ao final da gestação, ocorre um aumento de células expressando
MHC de classe II no endométrio da região interplacentomal comparada à
placentomal (LOW et al., 1990).
Em um modelo de gestação unilateral, onde ovelhas tiveram os conceptos
cirurgicamente restringidos a apenas um corno uterino, houve acúmulo de
macrófagos no corno uterino gestante e no não gestante, mostrando uma
sinalização sistêmica para recrutamento destas células (TEKIN; HANSEN, 2004).
Porém no corno não gestante a quantidade de macrófagos era menor, indicando a
importância de uma sinalização local (TEKIN; HANSEN, 2004).
Não se tem conhecimento se, no endométrio bovino durante a gestação,
ocorre um influxo de células NK como em humanos e camundongos (CROY et al.,
2006; MOFFETT; LOKE, 2006). As células NK uterinas bovinas (NKp46 ou CD335)
33
foram encontradas no septo caruncular e no placentônio após a infecção
experimental por Neospora canis em vacas gestantes (ROSBOTTOM et al., 2008).
No útero de ruminantes, a única evidência funcional da presença de células NK foi a
presença de linfocinas ativadas para função de destruição em linfócitos no epitélio
uterino depois da estimulação por interferon gama (IFNG) e interferon tau (IFNT)
(TEKIN; HANSEN, 2004).
2.4.1 Expressão de MHC no trofoblasto
A expressão de antígenos paternos pelo trofoblasto é geralmente suprimida
em todas as espécies examinadas (HUNT et al., 1985; GOGOLIN-EWENS et al.,
1989; DONALDSON et al., 1990; KYDD et al., 1991). A perda de expressão do MHC
na placenta reduz a exposição do sistema materno a antígenos paternos
(MOFFETT-KING, 2002). Porém torna o trofoblasto susceptível à lise pelas células
NK (HEEMSKERK et al., 2005). Por essa razão, antígenos do MHC não clássicos
são
extremamente
monomórficos
e
expressos
no
trofoblasto
(BULMER;
BILLINGTON; JOHNSON, 1984). Por exemplo, em humanos, o trofoblasto expressa
o HLAC (TILBURGS et al., 2009), HLAE e HLAG (HUNT; PETROFF; BURNETT,
2000; ISHITANI et al., 2003; HVIID, 2006).
Na vaca, o tecido coriônico do placentônio é negativo para o MHC de classe I,
embora o cório da região interplacentomal possa expressar MHC de classe I nos
últimos quatro meses de gestação (LOW et al., 1990; DAVIES; FISHER;
SCHLAFER, 2000; DAVIES et al., 2004).
O melhor entendimento dos efeitos da expressão normal versus a anormal de
MHC teve uma grande contribuição com o desenvolvimento das tecnologias de
reprodução assistidas, como inseminação artificial, produção de embrião in vitro e a
transferência de nuclear de células somática.
Por exemplo, quando há uma expressão anormal de MHC de classe I ocorre
aborto espontâneo, isso é particularmente observado entre os dias 30 a 90 dias de
gestação (EDWARDS et al., 2003), exatamente no período (transição da nutrição
vitelínica para a placentária) onde ocorrem as maiores perdas nesses tipos especiais
de gestação. Nas gestações de fetos clonados, a expressão de MHC de classe I é
34
predominantemente não clássica (DAVIES et al., 2004), e foi detectada aos 36 dias
de gestação (DAVIES et al., 2004; DAVIES et al., 2006). Essas proteínas não
clássicas do MHC de classe I expressas são possivelmente homólogas ao HLAG
humano que pode regular a célula NK e a função do macrófago (LI et al., 2009).
MATERIAIS E MÉTODOS
36
3. MATERIAIS E MÉTODOS
3.1 Obtenção das gestações
Para identificação do gene TSPY, foram transferidos 153 embriões
produzidos por fertilização in vitro em uma central comercial. No dia 62 de gestação,
após a confirmação do sexo por ultrassonografia transrretal, foram coletadas
amostras de sangue da veia caudal das receptoras. Dos 153 embriões transferidos,
65 chegaram aos 62 dias gestação, destes 34 eram machos e 31 fêmeas. Para o
estudo foram então selecionadas 25 gestações de macho, 4 de fêmeas além de 5
perdas gestacionais previamente detectadas ao exame ultrassonográfico aos 39
dias de gestação porém com sexo desconhecido.
As gestações de conceptos bovinos transgênicos foram produzidas por
transferência nuclear de célula somática. As células doadoras de núcleo utilizadas
foram de uma linhagem de fibroblastos de um feto bovino macho transduzidos com
um vetor lentiviral carreando o gene da proteína verde fluorescente. Inicialmente foi
produzida uma gestação de 30 dias e o feto foi utilizado para a cultura de
fibroblastos e realizar a reclonagem e obtenção de mais uma gestação de 30 dias,
três de 60 dias e duas de 90 dias. O lentivírus, métodos de transfecção das células,
clonagem e reclonagem foram realizados segundo Bressan et al. (2011).
Anteriormente
à
recuperação
das
gestações,
por
ovariossalpingohisterectomia, foi coletado sangue da veia caudal de cada receptora.
Os úteros gestantes foram transportados em gelo para o laboratório, onde foi
realizada uma incisão na linha anti-mesometrial do perimétrio e miométrio no terço
médio do corno uterino gestante expondo membranas, endométrio e o embrião/feto.
Foram coletadas amostras de placentônio, carúncula e endométrio (região
intercaruncular), cotilédones, cório liso, alantóide e âmnio (Figura 2). Cada amostra
foi preservada em nitrogênio líquido ou fixados em solução aquosa de
paraformaldeído 4% em tampão sódio fosfato (PBS) a 0,1 M pH 7,4. Após a fixação,
o material foi desidratado em uma série de banhos em solução de etanol em
concentrações crescentes (de 70 a 100%), diafanizado em xilol, seguido de
impregnação e inclusão em resina similar a parafina (Histosec®).
37
Amostras de úteros gestantes de monta natural ou inseminação artificial,
grupo controle, foram coletadas em abatedouros frigoríficos da região de Dracena e
Pirassununga, SP, em períodos gestacionais e quantidades correspondentes às
gestações de conceptos clonados transgênicos, seguindo o mesmo modo de coleta,
preservação e processamento.
Figura 2 -
Fotografias “ex situ” em vista dorsal de útero bovino gestante, aos 60 dias, de concepto
clonado e transgênico expressando GFP. A e C fluorescência natural sob luz ultravioleta.
B e D mesmo campo de A e C, porém sob luz natural.
3.2 TÉCNICA DE IMUNOHISTOQUÍMICA
A identificação da Proteína Verde Fluorescente (GFP) em placentônios de
gestações transgênicas e clonadas com 60 e 90 dias foi realizada utilizando os
anticorpos anti-GFP (Living Colors GFP Monoclonal Antibody – Clontech, cat.#
632375).
A detecção do antígeno do MHC classe 1b específico de murinos foi
realizada usando o anticorpo anti-Qa2 (eBiosciences, cat, # 11-5996).
38
As secções de 4-5µm foram desparafinizados em xilol e reidratados em série
decrescente de etanol. O desmascaramento antigênico foi realizado pelo
aquecimento dos cortes em tampão citrato (0,384g de ácido cítrico monohidratado;
2,352g de citrato de sódio tribásico diidratado; 1L de água destilada, pH 6,0) por 15
minutos em forno de microondas. A atividade de peroxidase tecidual endógena foi
bloqueada pela incubação em solução de peróxido de hidrogênio a 3% em tampão
Tris-HCl 1M, pH 7,5 (TBS, 60,57g de Tris para 500mL de água ultrapura) por 30
minutos. Para o bloqueio de ligações inespecíficas, os cortes foram incubadas com
soro de cabra a 10% em TBS por 30 minutos. O anticorpo primário foi diluído a
0,2mg/mL em tampão TBS contendo 1% de soro de cabra e incubado “overnight” a
4oC em câmara úmida. Paralelamente, cortes foram incubadas na mesma
concentração com anticorpo irrelevante para o controle de isotipo (IgG).
Após incubação com o anticorpo primário e todas as lavagens dos cortes
foram realizadas com TBS contendo 1% de soro de cabra. A reação foi visualizada
por meio do kit polivalente Dako-advance HRP Link (cat. # K4069, Dako, EUA..) de
acordo com a recomendação do fabricante. A reação foi revelada por precipitação
de 3,3’-diaminobenzidine (DAB Peroxidase Substrate Kit, 3,3’-diaminobenzidine, cat.
# SK-4100). Para finalizar os cortes foram contra-corados com hematoxilina,
desidratados, diafanizados e as lâminas montadas para análise sob microscopia de
luz.
3.3 EXTRAÇÃO DE DNA/RNA
O DNA e RNA das amostras de placentônio, carúncula e cório foram extraídas
utilizando o kit Allprep (Qiagen, cat. # 80204) ou RNAeasy (Qiagen, cat. # 74104)
segundo as recomendações do fabricante.
Para as amostras de região intercaruncular a extração do RNA total foi
realizada com homogenatos de Trizol de acordo com as instruções do fabricante.
39
3.4 REAÇÃO DE POLIMERASE EM CADEIA (PCR)
3.4.1 Transcrição reversa
O RNA foi incubado por 5 minutos a 70ºC com 0,5µL de hexâmeros
randômicos (pd(N)6 Random Hexamer, Amershan Biosciences, Piscataway, NJ,
EUA; 0,5 µL) e imediatamente resfriado a 4ºC, para adição de 0,5 µL da enzima de
trasncriptase reversa (SuperScript II, Invitrogen) e reagentes: tampão 5x (2 µL),
MgCl2 (3mM), 0,5 mM de cada dNTP, 0,5 µL de inibidor de RNase (RNase OUT
TM
Recombinant Ribonuclease Inhibitor, InvitrogenTM, 40U/ µL) em volume final de 4,7
µL de solução para 5 µL de RNA. As amostras foram incubadas a 42°C por 60
minutos, aquecidos a 70ºC por 15 minutos para inativação da enzima e
armazenadas a -20ºC até o momento de uso.
3.4.2 PCR QUANTITATIVO EM TEMPO REAL
As amplificações foram realizadas em termociclador para PCR em tempo real
(Applied Biosystems, 7500 Real Time PCR System).
Nas reações para quantificação do gene GFP e gliceraldeído 3-fosfato
desidrogenase (GAPDH), foram utilizados oligonucleotídeos iniciadores e sondas
Taqman®, sintetizadas pela Applied Biosystems. Os oligonucleotídeos iniciadores e
sondas dos referidos genes estão apresentadas no quadro 1. Nas reações de
amplificação, foi utilizado TaqMan® 2x PCR Master Mix (Applied Biosystems, Foster
City, CA, EUA), 0,9 µM de cada oligonucleotídeo iniciador e 0,25 µM de sonda
TaqMan ® em reação de 20 µL. A reação teve início com incubação a 50°C por 2
minutos, seguida de desnaturação a 95°C por 10 minutos e 50 ciclos de 95°C por 2
minutos e 60°C por 1 minuto. Cada amostra foi avaliada em triplicata para cada
gene. Toda reação de PCR continha um controle negativo.
40
A análise estatística realizada para avaliar a expressão relativa de GFP entre
os tecidos placentários foi a do método de 2-ddCT segundo Livak & Schimittegen
(2001).
Para a análise qualitativa do gene TSPY foi utilizada a técnica de PCR
nested, que consiste na realização de duas reações de PCR seguidas, com pares de
primes diferentes para a mesma seqüência.
Na primeira reação foram utilizados 2,5µL de tampão 10X, 0,5µL (10mM) de
dNTPs, 0,75µL (25mM) de Mg2+Cl, 0,5µL de primer senso (TSPYext_s), 0,5µL de
primer consenso (TSPYext_as), 1µL (100 ng/µL) de DNA e 0,2µL
de Taq
polimerase e água DEPC suficiente para completar um volume total de 25µL. As
condições da PCR foram as seguintes: 94ºC por 5 minutos para desnaturação inicial,
35 ciclos de desnaturação a 94ºC por 45 segundos, anelamento a 60ºC por 45
segundos e extensão a 72ºC por 45 segundos, com uma extensão final a 72ºC por
10 minutos. Na segunda reação foi utilizado Power SYBR Green ® OCR MAster Mix
(Applied Biosystems) e 0,5 mM de cada par de nucleotídeos iniciadores , em reação
de 20 µL. As condições de termociclagem incluíram um passo inicial a 50°C por 2
minutos, seguida de desnaturação a 95°C por 10 minutos e 35 ciclos de 95°C por 15
segundos, 57°C por 45 segundos e 60°C por 1 minuto. A curva de dissociação foi
iniciada em 60°C com +0,1°C de incremento até atingir 95°C.
Primer
TSPYext_s
TSPYext_as
TSPYint_s
TSPYint_as
GAPDH_s
GAPDH_as
GAPDH_sonda
eGFP_s
eGFP_as
eGFP_sonda
Sequência (3’→ 5’)
CCCGCACCTTCCAAGTTGTG
AGAAGACGGTGGAGGAGCA
CATCGTGGAGGAGGTGGAGGTT
TTGTCACCAGCAGTTGTCACG
AAGGCCATCACCATCTTCCA
CCACTACATACTCAGCACCAGCAT
AGCGAGATCCTGCCAACATCAAGTGG
CCACATGAAGCAGCACGACTT
TACGTCCAGGACCGCACC
TTCAAGTCCGCCATGCCCGAA
TºC anelamento
60ºC
Tam
325pb
64ºC
152pb
60ºC
75pb
60º
43pb
Quadro 1 - Relação dos pares de primers, sequencia, temperatura para anelamento e tamanho do
fragmento amplificado.
41
3.4.2 Western Blotting
Amostras de endométrio intercaruncular (EIC) foram retiradas do nitrogênio
líquido e pesadas, obtendo-se um total de 2 gramas. Posteriormente, os fragmentos
de EIC, juntamente com a solução de extração (2 gramas da amostra + 20mL de
solução de extração), foram macerados para a solubilização da fração protéica e
centrifugadas para remoção de fragmentos teciduais. A proteína foi quantificada pelo
ensaio colorimétrico “Bradford” e análise de western blotting foi realizada de acordo
com
(JOUSAN;
OLIVEIRA;
HANSEN,
2008)
com
algumas
modificações.
Resumidamente, 100 µg de proteína foi diluída em volume igual de solução tampão
de Tris-HCl 125 mM (pH 6,8) contendo 10% Dodecil Sulfato de sódio (SDS), 20% de
sacarose, e 5% de 2-mercaptoetanol. As amostras foram desnaturadas a 100°C por
5 minutos e separadas em um gel de poliacrilamida (SDS-PAGE) 12% em solução
Tris-HCl e transferidas para uma membrana PVDF (do inglês: Polyvinylidene
Fluoride) por eletroforese. A membrana foi incubada “overnight” em solução de TBST (10 mM Tris pH 7.6, 0.9% de NaCl e 0.3% de Tween-20) contendo 5% de leite em
pó desnatado (TBT-TB). Após as lavagens, a membrana foi incubada com anticorpo
monoclonal anti-GFP (Living Colors GFP Monoclonal Antibody – Clontech, cat.#
632375) diluído a 1:1000 em TBT-TB por 6h em temperatura ambiente, lavada e
incubada com o anticorpo secundário anti-IgG de camundongo conjugado com HRP
(do inglês, “horseradish peroxidase”) por 90 minutos. Após lavagens adicionais, a
reação foi revelada por precipitação de 3,3’-diaminobenzidine (DAB Peroxidase
Substrate Kit, 3,3’-diaminobenzidine, cat. # SK-4100) até o aparecimento das
bandas específicas.
RESULTADOS E DISCUSSÃO
43
4. RESULTADOS E DISCUSSÃO
Para o sucesso da prenhez é essencial o estabelecimento da fina sintonia da
tolerância do sistema imune materno frente aos antígenos fetais. No início da
gestação, a tolerância materna tem que ser alta o suficiente para permitir a
implantação do embrião e a placentogênese, porém sem comprometer a integridade
e saúde da mãe. Esse conceito é a tese central da teoria do conflito parental, onde,
genes expressos paternalmente maximizam o desenvolvimento fetal aumentando o
suporte nutricional do feto em detrimento da saúde da mãe, por exemplo, o fator de
crescimento semelhante à insulina (IGF2) (MOORE; HAIG, 1991). Contrário a isso, a
mãe se protege suprimindo a expressão de genes, em seu alelo, que induzem o
crescimento fetal (MOORE; HAIG, 1991).
Portanto, de uma correta tolerância materno-fetal depende o diálogo entre
mãe e feto por fatores de sinalizações locais e sistêmicas mediadas pelas células da
interface materno-fetal e pela migração de células fetais para o compartimento
materno.
4.1 DETECÇÃO DE TSPY NO SANGUE MATERNO
O microquimerismo fetal é definido pela presença de material fetal no sangue
periférico da mãe durante a gestação, sendo ele, célula fetal circulante ou DNA fetal
circulante livre de célula (cffDNA, do inglês “cell-free fetal DNA”). A ocorrência desse
tipo microquimerismo já foi amplamente descrito em humanos (BIANCHI; LO, 2001);
camundongos
(VERNOCHET;
CAUCHETEUX;
KANELLOPOULOS-LANGEVIN,
2007) e mais recentemente em bovinos (XI et al., 2006).
A ocorrência de microquimerismo fetal em animais com placenta epiteliocorial
é ainda pouco compreendida. No entanto, em bovinos a presença do gene SRY já
foi detectada tanto na fração celular do sangue materno a partir de 150 dias de
gestação até 30 meses após o parto (TURIN et al., 2007b; TURIN et al., 2007a),
como no soro materno na forma de cffDNA entre os dias 30 e 242 de gestação (XI
JF et al., 2006; WANG et al., 2010). Nenhum destes trabalhos concentrou-se em
44
demonstrar o microquimerismo fetal durante um dos períodos críticos para a
manutenção da gestação, ou seja, após o reconhecimento materno-fetal até a
transição da nutrição vitelínica para a placentária (D30 a D50) (ASSIS NETO et al.,
2009).
Com o intuito de testar a ocorrência do microquimerismo fetal, nosso primeiro
experimento foi focado na análise da presença de DNA de origem fetal utilizando
como marcador o gene TSPY, na fração celular do sangue de vacas receptoras de
embriões produzidos por fertilização in vitro (FIV) no dia 62 da gestação.
Tabela 1 -
Número de embriões sexados por ultrassonografia transrretal (US) e
positivos (pos) ou negativos (neg) por expressão de TSPY no sangue
periférico da receptora.
Tipo de Sexagem
Expressão TSPY
Pos
Neg
Tipo de Embrião
N
Perdas Gestacionais
5
–
2 (40%)
3 (60%)
Fêmea
4
4
2 (50%)
2 (50%)
Macho
25
25
15 (60%)
10 (40%)
US
N – número de animais no grupo; US – animais sexados por ultrassonografia transretal; Pos –
positivo para TSPY; Neg – negativo para TSPY.
Na análise das amostras provenientes de receptoras gestando embriões
machos, a presença do TSPY foi encontrada em 60% (15 de 25) dos animais
analisados. Ainda, em nosso laboratório em uma análise da presença do TSPY no
sangue de 5 receptoras gestando animais clonados em idade gestacional entre 30 e
90 dias demonstrou a presença de TSPY a partir do dia 60 da gestação (dados não
mostrados). Turin et al (2007b; 2007a) também tiveram falsos resultados negativos,
porém a menor idade gestacional analisada foi aos 150 dias e usando o gene Y-S4.
Uma explicação para os falsos negativos seria de que o teste não seria sensível o
suficiente para a detecção da ocorrência do microquimerismo em todas as
gestações de machos ou a diferença de intensidade de microquimerismo em cada
gestação.
Duas das quatro (50%) gestações de embriões fêmeas e duas das cinco
(40%) das perdas gestações apresentaram falsos positivos. Amostras de gestações
45
de fêmeas também foram positivas em todas as fases de gestação quando usado o
gene SRY (WANG et al., 2010). Portanto, esse fato sugere a permanência de
microquimerismo fetal de gestação anterior ou da própria gestação mesmo depois
da perda, corroborando com os achados de Turin et al (2007b; 2007a) onde foi
detectado Y-S4 30 meses após o parto.
Nossos resultados juntamente com os resultados da literatura citada sugerem
que há ocorrência de microquimerismo fetal em bovinos, e que estudos sobre os
melhores marcadores desse fenômeno em bovinos, bem como a validação ou
desenvolvimento de testes mais sensíveis seriam importantes.
4.2. MAPEAMENTO DA INTERAÇÃO MATERNO-FETAL PELA GFP
Com o intuito de estudar os mecanismo de microquimerismo fetal, foi
desenvolvido um modelo bovino transgênico para a proteína verde fluorescente
(GFP) para mapear a interação materno-fetal (BRESSAN et al., 2011). Para tanto, o
a expressão de mRNA e da proteína GFP foram examinadas no cório, placentônio e
no endométrio intercaruncular, por meio das técnicas de PCR em tempo real,
Western blotting e imunohistoquímica.
4.2.1. Expressão de GFP nos tecidos materno e fetais
Amostras das gestações de conceptos transgênicos e clonados foram
analisadas segundo sua expressão de GFP. O cório teve a maior expressão relativa
de GFP por ser composto apenas por tecido fetal. O placentônio apresentou uma
expressão intermediária, provavelmente por ser uma região onde há tanto tecido.
materno como fetal. Na região intercaruncular do endométrio, onde o contato
materno fetal ocorre apenas pela aposição do epitélio coriônico com o epitélio
uterino, houve menor expressão relativa (Figura 3)
46
14
12
dCt
10
8,03
8
6
5,71
4
2,68
2
0
Figura 3 -
Expressão relativa do mRNA do gene GFP no cório, placentônio e endométrio dos úteros
gestantes utilizando a diferença entre os Cts (dCt) do gene GFP e o endógeno GAPDH.
Utilizando o cório como calibrador, foi encontrando no endométrio um 2-ddCt de
5,42 podendo-se estimar uma participação de 2,33% de tecido fetal expressando
GFP nesse tipo de amostra.
Para confirmar a expressão, mesmo que pequena, de mRNA do gene
exógeno GFP na região intercaruncular do endométrio, buscamos a presença da
proteína transcrita pelo gene exógeno GFP por meio da análise de Western Blotting.
Como demonstrado na Figura 4, há formação de uma banda específica para GFP
em todas as amostras de placentônio e da região intercaruncular do endométrio. A
pequena concentração da proteína é demonstrada pela fina banda na região de 32
kDa que corresponde ao peso molecular da proteína verde fluorescente. Além disso,
a análise de imunohistoquímica na região intercaruncular não demonstrou marcação
positiva corroborando com o indicativo de baixa freqüência de células de origem
fetal. Está em curso a investigação da presença de DNA do gene exógeno GFP em
amostras da região intercaruncular das fêmeas, gestando fetos transgênicos, o que
poderá permitir identificar se a origem da GFP encontrada é do extravasamento de
conteúdo das células fetais na porção materna, ou da efetiva migração de células
fetais para o endométrio.
47
Figura 4 -
Western blotting para GFP (32kDa) em tecidos placentários de gestações transgênicas e
clonadas. PPM – padrão de peso molecular; 1- placentônio 30dias; 2- endométrio 90
dias; 3- endométrio D30; 4- endométrio D60; 5- placentônio D60.
A presença de GFP no endométrio pode ser explicada por um mecanismo
descrito no sinciciotrofoblasto humano, mas desconhecido em bovinos, que será a
ocorrência de exossomos carreando proteínas e pequenos fragmentos de RNA
(MINCHEVA-NILSSON; BARANOV, 2010), realizando o transporte de tais moléculas
para o epitélio materno.
Para o estudo da invasão das células trofoblásticas gigantes e o transporte de
substâncias, reações imunohistoquímicas para GFP foram realizadas em amostras
de placentônios, onde há uma maior interação entre mãe e feto.
Nossos resultados mostram que as células fetais apresentaram-se positivas
para GFP, sendo que uma marcação mais tênue no mesênquima quando
comparado ao epitélio coriônico (Figura 5).
Neste as células trofoblásticas
mononucleares pequenas apresentaram marcação bem evidente e uma reação
muito intensa foi observada nas células trofoblásticas gigantes (CTG). Foi notado
ainda com o avanço da gestação um aumento na expressão de GFP (Figuras 6a e
6b).
Uma observação interessante foi da presença da GFP no epitélio materno
(Figuras 5-8) sendo que, a maioria das células que compõem o epitélio materno
demonstrou-se positivas para GFP enquanto o estroma endometrial não apresentou
marcação. No epitélio materno vê-se a marcação para a GFP no citoplasma como
também em torno da membrana plasmática indicando uma marcação no interstício
celular (Figura 7).
48
A presença de GFP no epitélio materno corrobora com os achados de
marcação no endométrio mediante a técnica de Western Blotting; esta observação
poderia ser compatível com a hipótese de transferência de substâncias para a mãe,
por meio de exossomos, como já descrito em humanos (MINCHEVA-NILSSON;
BARANOV, 2010).
Em regiões específicas, algumas CTGs aparentemente mononucleadas,
quando em contato com o epitélio materno, apresentaram um volume de citoplasma
maior do que as outras células trofoblásticas gigantes (Figura 7e). Isso indicaria que
essas células estariam em processo degenerativo possivelmente pelo processo de
morte celular programada.
Nas regiões de formação de sincício, as células trofoblásticas gigantes
próximas ao epitélio materno apresentaram uma polarização citoplasmática tendo a
sua marcação de GFP contralateral (Figura 6a). Com a aproximação das CTGs ao
epitélio materno há um processo de remodelamento deste epitélio, tornando-o
pavimentoso ao invés de colunar além de desestruturação próxima ao sincício
(Figura 7 e 8a) de acordo com os modelos de formação sincicial propostos por
Wooding (1992) e Leiser & Kaufmann (1994). Além dessa modificação estrutural, a
reação de imunohistoquímica para GFP pareceu ser menos intensa nessa região
(Figura 8a), provavelmente em conseqüência da degranulação do conteúdo celular
das CTGs anterior à fusão com o epitélio materno (WOODING, F.B., 1992).
Formações sinciciais ocorrem, mas não sempre, próximos a vasos maternos (Figura
6d), o que poderia explicar a ocorrência de DNA fetal na fração celular do sangue
periférico materno.
Essa migração das células trofoblásticas poderia ser um importante
mecanismo de modulação do sistema materno frente aos antígenos fetais, uma vez
que a exposição contínua de antígenos fetais para o sistema imune materno seria
capaz de manter um estado tolerogênico local. Ainda, as CTB, em humanos e
camundongos, expressam uma forma não clássica dos gene de MHC Ib (HLAG e
PED). Com essas informações, levantamos a hipótese de que as CTBs expressam
uma forma não clássica de MHC Ib. Para testar essa hipótese, utilizamos um
anticorpo que reconhece proteínas Qa2 (antígeno linfocitário Qa de região 2) de
camundongos, que são pertencentes ao MHC classe Ib, em reações de
imunohistoquímica.
49
O mesmo padrão de formação sincicial encontrado para o GFP também pôde
ser observado para a marcação com o anticorpo anti-Qa2, mostrando uma
diminuição da expressão da proteína Qa2 nas células trofoblásticas gigantes em
contato direto ao epitélio materno (Figura 8b). Com exceção dessas, as outras
células trofoblásticas gigantes e todo o trofoblasto apresentaram marcação
fortemente positiva para Qa2 (Figura 9).
As células trofoblásticas gigantes, em camundongos, expressam MHC classe
Ib para inibir a ativação células uNK evitando a lise das células fetais devido a sua
baixa expressão de moléculas clássicas de MHC (BULMER; BILLINGTON;
JOHNSON, 1984; HEEMSKERK et al., 2005). O fato das células trofoblásticas
gigantes bovinas terem mostrado a diminuição de expressão durante a formação
sincicial pode indicar um mecanismo de sinalização para a morte celular que
resultaria no transporte de substâncias, e essa sinalização induziria e manteria a
tolerância materna.
Também foi observada neste estudo, uma marcação positiva para Qa2 no
epitélio materno dos placentônios, porém esta mesmo marcação é negativa no
trofoblasto do cório (Figura 9). Hill et al (2000) também encontrou marcação positiva
no epitélio materno e negativa no cório em gestação de clones utilizando anticorpo
anti-MHC classe I bovino (Il A19).
Em contraste, nas gestações de conceptos naturais, a expressão de MHC de
classe I só ocorre na segunda metade da gestação (LOW et al., 1990; DAVIES;
FISHER; SCHLAFER, 2000) tendo uma expressão aumentada no eptélio materno e
no trofoblasto da região interplacentomal e no trofoblasto da região placentomal
(DAVIES; FISHER; SCHLAFER, 2000).
50
Figura 5 –
Imunohistoquímica para proteína verde fluorescente (GFP) em placentônio de gestação
de concepto bovino transgênico e clonado aos 90 dias. Observar a intensa marcação no
trofoblasto (T), e epitélio materno (Em), mais tênue no mesênquina (M)e negatica no
estroma endometrial (E). Barra = 200µm.
51
Figura 6 -
Imunohistoquímica para proteína verde fluorescente (GFP) em placentônio de gestação
de concepto bovino transgênico e clonado. As setas indicam as células trofoblásticas
gigantes fundidas ou em processo de fusão com as células do epitélio materno (Em).
Alguns sincícios são formados próximos a vasos maternos (Mv), como em d, porém
sempre ocorre remodelamento do epitélio materno. A marcação é positiva para GFP nos
tecidos fetais, sendo mais forte no trofoblasto (T) e mais tênue no mesênquima (M), mas
também pode ser observada no epitélio materno e marcação negativa no estroma
endometrial (E). Observar marcação positiva mais fraca na gestação de 60 dias (a). Em
a e f, 60 dias de gestação. Em b-e, 90 dias de gestação. Em f, controle negativo. Barra =
20µm.
52
Figura 7 -
Imunohistoquímica para proteína verde fluorescente (GFP) em placentônio de gestação
de concepto bovino transgênico e clonado com 90 dias. As células trofoblásticas
gigantes (setas) se aproximam e forçam um remodelamento do epitélio materno (Em),
tornando-o pavimentoso ao invés de colunar (a-c). Observar em a-d a marcação tanto
citoplasmática como no interstício do epitélio materno. Também em f, presença de
células trofoblásticas gigantes (círculo) aparentemente mononucleares, apresentando o
volume citoplasmático maior e o nuclear menor que as outras células trofoblásticas
gigantes. Em a-d,e imunohistoquímica para proteína verde fluorescente. Trofoblasto (T),
estroma endometrial (E), mesênquima (M) e vaso materno (Vm). Barra = 10µm.
53
Figura 8 -
Fotomicrografia da reação de imunohistoquímica para GFP (a) e Qa2 (b) em placentônio de gestação de concepto bovino transgênico e clonado
aos 90 dias. Observar o epitélio materno (Em), porém ao centro ocorre a degradação do epitélio materno (Em) e várias células trofoblásticas
gigantes em profundidades diferentes de invasão no trofoblasto (T). As células trofoblásticas gigantes em contato direto com o epitélio materno
apresentam marcação negativa tanto para GFP como para Qa2. Barra = 20µm.
54
Figura 9 -
Fotomicrografia da reação de imunohistoquímica para Qa2 em placentônio (a-d) e em
cório (e,f) de gestação de concepto bovino transgênico e clonado. As setas indicam as
células trofoblásticas gigantes fundidas ou em processo de fusão, notar a ausência de
marcação para Qa2 nessas células (a-d). Observar marcação positiva para o epitélio
materno (Em)
e o trofoblasto (T) nos placentônios e negativa no trofoblasto e mesênqüima do cório. Em a-c, 90
dias de gestação; em d-f, 60 dias de gestação. Em e, controle negativo. Barra = 20µm.
CONCLUSÕES
56
5. CONCLUSÕES
O gene TSPY pôde ser identificado no sangue periférico materno aos 62 dias,
em
gestação
oriunda
de
fertilização
in
vitro,
implicando
em
possível
microquimerismo fetal logo após a transição da nutrição vitelínica para a placentária.
Tanto o cDNA como a proteína GFP foram encontrados em tecidos maternos,
implicando em uma comunicação materno-fetal mais íntima em regiões de poucas
trocas como a interplacentomal. Dois mecanismos de transporte da GFP e, por
conseguinte, de outras substâncias podem ser hipotetizados: a degranulação das
células trofoblásticas gigantes durante a formação sincicial e/ou o transporte para o
epitélio materno por meio de liberação de exossomos pelas células trofoblásticas.
A expressão de MHC de classe 1b, avaliada mediante o anticorpo que
reconhece o antígeno Qa2 murino, pôde ser identificada no trofoblasto,
demonstrando um padrão de diminuição de expressão durante a formação sincicial,
indicando um mecanismo de ativação das células uNK, favorecendo sua lise.
Em conjunto, este estudo mostra que na placenta bovina ocorre uma
migração de células fetais além do epitélio materno e abre novas perspectivas para
estudos de algumas características da interação materno-fetal ainda pouco
explorada nos bovinos.
MODELO HIPOTÉTICO
58
6. MODELO HIPOTÉTICO
B
A
C
Trofoblasto
Epitélio materno
Formação sincicial
Migração
além do
epitélio
materno
Figura 10 – Modelo hipotético da ocorrência de microquimerismo na placentação bovina. Em a, após
fusão a célula trofoblástica gigante com o epitélio materno, ou a célula híbrida entra no
vaso sanguíneo materno ou é fagocitada por um macrófago (localizado próximo ao
epitélio materno) que entra em recirculação. Em b, a célula trofoblástica gigante
degranula seu conteúdo celular antes da fusão celular. Em c, a célula trofoblástica
gigante transporta parte de seu conteúdo citoplasmática por meio de exossomos.
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