Microscopia Eletrônica em Biologia Márcia Attias Instituto de Biofísica UFRJ [email protected] 1 Um pouco de história 2 Amostras biológicas e o ME Células: Frágeis Hidratadas Muito espessas para o feixe de elétrons Ambiente no interior do ME: vácuo e calor 3 4 Porque as células não podem ser observadas vivas no Microscópio Eletrônico ? Não pode haver água na coluna do microscópio As células têm de ser resistentes ao feixe As células precisam apresentar contraste As células têm de ser cortadas em fatias finas 5 FIXAÇÃO Preservação da integridade morfológica x molecular 6 Fixação de amostras Fixar é matar a célula preservando sua estrutura Pode ser Química ou Física: congelamento 7 Fixadores químicos Permanganato de Potássio (KMnO4) 8 Contrastação negativa Estruturas macromoleculares Células vírus 9 Fixadores químicos Formaldeído Instável, preparado a partir de paraformaldeído. Não forma ligações cruzadas. Degrada rapidamente em metanol Preserva antigenicidade da amostra Penetração rápida 10 Fixadores químicos OsO4 – tetróxido de ósmio Liga-se aos ácidos graxos insaturados Age como contrastante Age como mordente Famous first electron micrograph of an intact cell was published in The Journal of Experimental Medicine in March 1945, in "A Study of Tissue Culture Cells by Electron Microscopy," by Keith R. Porter, Albert Claude, and Ernest F. Fullam. The cell is a cultured fibroblast originating from a chick embryo, which was grown by Porter on polyvinyl film, then peeled off and transferred to a wire specimen grid. The cell was fixed with osmium tetroxide, washed and then dried in order to prevent evaporation in the electron microscopeUs vacuum chamber. Magnified 1600 times 11 Fixadores químicos Glutaraldeído (Sabatini, 1963) Forma ligações cruzadas com proteínas Melhor preservação estrutural Penetração mais lenta que o formaldeído 12 13 14 Soluções tampão Os fixadores são sempre diluídos em soluções tampão para Manter o equilíbrio osmótico do material Manter o pH próximo ao fisiológico Tampões mais comuns Fosfato de Sódio Cacodilato de Sódio 15 Perguntas mais frequentes Que fixador usar? Fixar por imersão ou por perfusão? Qual a concentração de Glutaraldeído, formaldeído, tetróxido de ósmio? Recomenda-se adicionar o ferrocianeto de potássio na pósfixação? Sacarose, NaCl, ácido tânico. Qual seu papel na fixação? Quanto tempo se deve deixar a amostra no fixador? Quanto tempo se deve lavar para retirar o fixador? A que temperatura deve ser a fixação? Que tamanho deve ter a amostra? Como selecionar o tampão? 16 Fixação Química por imersão É a mais utilizada. O protocolo padrão compreende as seguintes etapas: 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. fixação primária lavagem pós-fixação (ou fixação secundária) lavagem desidratação infiltração em resina polimerização da resina 17 Passo a passo da fixação ? 18 Amostras precisam ser bem pequenas 19 Palavra chave: DIFUSÃO 20 Proteção contra vapores e soluções 21 Pós-Fixação 22 DESIDRATAÇÃO 23 Desidratação A amostra é passada por concentrações crescentes de etanol ou acetona 24 Infiltração em resina Em seguida, o fluido de transição será substituído por uma resina líquida. Resina no estado líquido Este processo é feito gradualmente ao longo de 24 horas. 25 Tipos de resina EPOXI Hidrofóbicas Polímeros de trama mais fechada Polimerização a 60oC METACRILATOS Hidrofílicas Polímeros de trama mais aberta Polimerização a baixa temperatura sob U.V. 26 • Quando as amostras estiverem completamente infiltradas na resina elas serão distribuídas em moldes e levadas à estufa... 27 Na estufa a resina se solidificará. Os blocos contendo as amostras podem ser retirados e desenformados. 48 horas 60oC 28 Em seguida, os blocos são preparados para serem cortados em fatias ultrafinas. Número de identificação amostra 29 Ultramicrotomia As amostras precisam ser cortadas em seções ultrafinas para que o feixe de elétrons possa atravessá-las. Isto é feito num ultramicrótomo 30 braço bloco espelho d´água diamante O bloco é preso no braço do instrumento. A cada oscilação do braço, há um pequeno avanço. Ao passar pelo gume de diamante da faca, uma fina fatia flutua sobre o espelho d´água 31 32 33 Os cortes flutuam sobre um espelho d´água Cortes ultrafinos (60 a 100 nm) 34 Os cortes são recolhidos em telas de cobre Cada tela tem 3 mm de diâmetro ! 35 A grade é então inserida no microscópio eletrônico de transmissão 36 37 1965 38 Considerações sobre fixação química De acordo com os fixadores e soluções utilizados é possível identificar seletivamente espécies moleculares ou proteínas, havendo metodologias específicas para a localização ou realce de vários componentes celulares. 39 Princípios da Fixação a frio Congelamento “instantâneo” do momento celular Evita: sofrimento, difusão de solutos, deformação osmótica, alteração bioquímica Problemas: velocidade de fixação em função da espessura da amostra 40 Métodos de congelamento Criofratura 41 42 43 Métodos de congelamento Plunge Freezing 44 Métodos de congelamento Congelamento por Alta pressão (High pressure freezing) 45 Crio-Substituição (freeze substitution) 46 Crio-eletronmicroscopia 47 48 49